Summary

Effektiv differentiering av humana pluripotenta stamceller till leverceller

Published: June 11, 2019
doi:

Summary

Detta protokoll specificerar en monolayer, serum fri metod för att effektivt generera hepatocyte-liknande celler från humana pluripotenta stamceller (hPSCs) i 18 dagar. Detta innebär sex steg som hpscs sekventiellt differentieras till mellanliggande cell-typer såsom primitiva strimma, definitiva endoderm, posterior framtarmen och lever bud stamceller innan de bildar hepatocyte-liknande celler.

Abstract

Levern avgiftar skadliga ämnen, utsöndrar vitala proteiner, och utför viktiga metaboliska aktiviteter, vilket upprätthåller livet. Följaktligen, leversvikt — som kan orsakas av kronisk alkoholintag, hepatit, akut förgiftning, eller andra förolämpningar — är ett allvarligt tillstånd som kan kulminera i blödning, gulsot, koma, och så småningom döden. Emellertid, metoder för att behandla leversvikt, samt studier av leverfunktion och sjukdom, har varit omintetgörs delvis av avsaknaden av ett rikligt utbud av mänskliga leverceller. Detta protokoll specificerar därför en effektiv differentiering av humana pluripotenta stamceller (hPSCs) i hepatocyte-liknande celler, vägledda av en utvecklingsplan som beskriver hur lever ödet specificeras i sex på varandra följande differentierings steg. Genom att manipulera utvecklingsmässiga signalering vägar för att främja levern differentiering och att uttryckligen undertrycka bildandet av oönskade cell öden, denna metod genererar effektivt populationer av mänskliga leverbud stamceller och hepatocyte-liknande celler av dagar 6 respektive 18 i PSC-differentiering. Detta uppnås genom en temporally-exakt kontroll av utvecklingsmässiga signaleringsvägar, som utövas av små molekyler och tillväxtfaktorer i ett serumfritt odlingsmedium. Differentiering i detta system sker i enskiktslager och ger hepatocyte-liknande celler som uttrycker karakteristiska hepatocyte enzymer och har förmågan att att en musmodell av kronisk leversvikt. Förmågan att effektivt generera ett stort antal humana leverceller in vitro har förgreningar för behandling av leversvikt, för läkemedels screening, och för mekanistiska studier av leversjukdom.

Introduction

Syftet med detta protokoll är att effektivt differentiera humana pluripotenta stamceller (hPSCs) till anrikade populationer av lever buds stamledare och hepatocyte-liknande celler2. Tillgång till en färdig försörjning av mänskliga leverprogenitorer och hepatocyte-liknande celler kommer att påskynda arbetet med att undersöka leverfunktion och sjukdom och kan möjliggöra nya cellulära transplantations terapier för leversvikt3,4, 5. Detta har visat sig utmanande tidigare eftersom hPSCs (som omfattar embryonala och inducerade pluripotenta stamceller) kan differentiera till alla cell-typer av människokroppen; Följaktligen har det varit svårt att uteslutande särskilja dem till en ren population av en enda cell-typ, såsom leverceller6.

För att exakt differentiera hPSCs till leverceller, först är det viktigt att förstå inte bara hur leverceller specificeras utan också hur icke-lever cell-typer utvecklas. Kunskap om hur icke-leverceller utvecklas är viktigt att logiskt undertrycka bildandet av icke-lever linjer under differentiering, därmed uteslutande vägleda hPSCs mot en lever öde2. För det andra är det viktigt att avgränsa de flera utvecklings steg genom vilka hPSCs differentierar mot ett lever öde. Det är känt att hpscs sekventiellt differentieras till flera cell-typer som kallas primitiva Streak (APS), definitiva endoderm (de), posterior framtarmen (PFG) och lever bud progenitorer (lb) innan de bildar hepatocyte-liknande celler (HEP). Tidigare arbete avslöjade de signaler som specificerar levern öde och de signaler som undertryckt bildandet av alternativa icke-lever cell-typer (inklusive mage, bukspottkörtel, och intestinal progenitorer) vid varje utvecklingsmässiga Lineage val2, 7 , 8.

Kollektivt, dessa insikter har gett upphov till en serum-fri, enskiktslager metod för att differentiera hpscs mot primitiv strimma, definitiv endoderm, posterior foregut, lever bud progenitorer och slutligen, hepatocyte-liknande celler2. Sammantaget metoden innebär sådd av hpscs i en enskiktslager på en lämplig densitet, förbereda sex cocktails av differentiering media (som innehåller tillväxtfaktorer och små molekyler som reglerar olika utvecklings-signalering vägar), och sekventiellt lägga dessa medier för att inducera differentiering under loppet av 18 dagar. Under processen behövs ingen passaging av celler. Notera, eftersom denna metod uttryckligen omfattar signaler som hämmar bildandet av icke-lever cell-typer, denna differentiering metod1 mer effektivt genererar lever stamceller och hepatocyte-liknande celler i jämförelse med bevarade differentierings metoder2,9,10,11,12. Dessutom möjliggör det protokoll som beskrivs i denna text snabbare generering av hepatocyter som i slutändan uttrycker högre nivåer av levertranskriptionsfaktorer och enzymer än de som produceras av andra protokoll9,10 , elva , 12.

Det protokoll som beskrivs här har vissa fördelar jämfört med aktuella differentierings protokoll. För det första innebär det enskiktslager differentiering av hpscs, vilket är tekniskt enklare jämfört med tredimensionella differentiering metoder, såsom de som förlitar sig på embryoid organ13. För det andra utnyttjar denna metod ett senare förskott varigenom definitiva endoderm-celler (en tidig föregångare till leverceller) effektivt och snabbt kan genereras inom 2 dagar efter hpsc-differentiering på2,7, vilket möjliggör efterföljande produktion av hepatocyter med ökad renhet. För det tredje, i Side-by-side jämförelser, de hepatocyte-liknande celler som produceras av denna metod2 producerar mer albumin och uttrycker högre nivåer av levertranskriptionsfaktorer och enzymer jämfört med hepatocyter som produceras på andra metoder10, 11,12.

Protocol

1. beredning av differentierings medier Anmärkning: Se tabellen med material för tillverkarens information om de material och reagenser som används. Beredning av bas kemiskt definierade medier (CDM)Anmärkning: CDM2, CDM3, CDM4 och CDM5 är kemiskt definierade medier som används som bas medier för att differentiera hPSCs till leverceller i olika stadier. Sammansättningen av dessa medier finns i tabell 1.<o…

Representative Results

Efter 24 h av APS differentiering, kolonier kommer i allmänhet att anta en annan morfologi än odifferentierade kolonier samtidigt med en förlust av den ljusa gränsen som typiskt uppställer hpsc kolonier. Morfologiskt, primitiva strimma celler har i allmänhet trasiga gränser och är mer spridda och mindre kompakta än hPSCs-detta är suggestivt av en epitelial-till-mesenkymala övergång som pluripotenta epiblast celler differentierar och tränger in i den primitiva streck in vivo. …

Discussion

Denna metod möjliggör generering av anrikade populationer av lever bud progenitorer, och därefter hepatocyte-liknande celler, från hPSCs. Förmågan att generera berikade populationer av mänskliga leverceller är viktigt för den praktiska användningen av sådana celler. Tidigare metoder för att generera hepatocyter från hPSCs gav oren cellpopulationer som innehåller både lever och icke-leverceller som, vid transplantation till gnagare, gav Ben och brosk förutom levervävnad15. Därför…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Bing lim för diskussioner och Stanford Institutet för stamcellsbiologi & regenerativ medicin för infrastrukturstöd. Detta arbete stöddes av California Institute for Regenerative Medicine (DISK2-10679) och Stanford-UC Berkeley Siebel Stem cell Institute (till L.T.A. och K.M.L.) och Stanford Beckman Center för molekylär och genetisk medicin samt den anonyma, Baxter och DiGenova familjer (till K.M.L.).

Materials

 Geltrex Thermofisher Scientific A1569601
1:1 DMEM/F12 Gibco 11320033
0.2 μm pore membrane filter Millipore GTTP02500
mTeSR1 Stem Cell Technologies 5850
Thiazovivin Tocris Bioscience 3845
 Accutase Gibco or Millipore  Gibco A11105, Millipore  SCR005
IMDM, GlutaMAX™ Supplement Thermofisher Scientific 31980030
Ham's F-12 Nutrient Mix, GlutaMAX™ Supplement Thermofisher Scientific 31765035
KOSR, Knockout serum replacement Thermofisher Scientific 10828028
Poly(vinyl alcohol) Sigma-Aldrich   P8136
Transferrin  Sigma-Aldrich   10652202001
Chemically Defined Lipid Concentrate Thermofisher Scientific 11905031
human Activin R&D 338-AC
CHIR99201 Tocris 4423
PI103 Tocris 2930/1
human FGF2 R&D 233-FB
DM3189 Tocris 6053/10
A83-01 Tocris 2939/10
Human BMP4 R&D 314-BP
C59 Tocris 5148
TTNPB Tocris 0761/10
Forskolin Tocris 1099/10
Oncostatin M R&D 295-OM
Dexamethasone Tocris 1126
Ro4929097 Selleck Chem S1575
AA2P Cayman chemicals 16457
human recombinant Insulin Sigma-Aldrich   11061-68-0

References

  1. Bernal, W., Wendon, J. Acute Liver Failure. New England Journal of Medicine. 369, 2525-2534 (2013).
  2. Ang, L. T., et al. A Roadmap for Human Liver Differentiation from Pluripotent Stem Cells. Cell Reports. 22, 2190-2205 (2018).
  3. Fisher, R. A., Strom, S. C. Human Hepatocyte Transplantation: Worldwide Results. Transplantation. 82, 441-449 (2006).
  4. Dhawan, A. Clinical human hepatocyte transplantation: Current status and challenges. Liver transplantation. 21, S39-S44 (2015).
  5. Salama, H., et al. Autologous Hematopoietic Stem Cell Transplantation in 48 Patients with End-Stage Chronic Liver Diseases. Cell Transplantation. 19, 1475-1486 (2017).
  6. Tan, A. K. Y., Loh, K. M., Ang, L. T. Evaluating the regenerative potential and functionality of human liver cells in mice. Differentiation. 98, 25-34 (2017).
  7. Loh, K. M., et al. Efficient Endoderm Induction from Human Pluripotent Stem Cells by Logically Directing Signals Controlling Lineage Bifurcations. Cell Stem Cell. 14, 237-252 (2014).
  8. Loh, K. M., et al. Mapping the Pairwise Choices Leading from Pluripotency to Human Bone, Heart, and Other Mesoderm Cell Types. Cell. , 451-467 (2016).
  9. Zhao, D., et al. Promotion of the efficient metabolic maturation of human pluripotent stem cell-derived hepatocytes by correcting specification defects. Cell Research. 23, 157-161 (2012).
  10. Si Tayeb, K., et al. Highly efficient generation of human hepatocyte-like cells from induced pluripotent stem cells. Hepatology. 51, 297-305 (2010).
  11. Carpentier, A., et al. Hepatic differentiation of human pluripotent stem cells in miniaturized format suitable for high-throughput screen. Stem Cell Research. 16, 640-650 (2016).
  12. Avior, Y., et al. Microbial-derived lithocholic acid and vitamin K2 drive the metabolic maturation of pluripotent stem cells-derived and fetal hepatocytes. Hepatology. 62, 265-278 (2015).
  13. Ogawa, S., et al. Three-dimensional culture and cAMP signaling promote the maturation of human pluripotent stem cell-derived hepatocytes. Development. 140, 3285-3296 (2013).
  14. Rostovskaya, M., Bredenkamp, N., Smith, A. Towards consistent generation of pancreatic lineage progenitors from human pluripotent stem cells. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 370, 20140365 (2015).
  15. Haridass, D., et al. Repopulation Efficiencies of Adult Hepatocytes, Fetal Liver Progenitor Cells, and Embryonic Stem Cell-Derived Hepatic Cells in Albumin-Promoter-Enhancer Urokinase-Type Plasminogen Activator Mice. The American Journal of Pathology. 175, 1483-1492 (2009).
check_url/58975?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Loh, K. M., Palaria, A., Ang, L. T. Efficient Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Liver Cells. J. Vis. Exp. (148), e58975, doi:10.3791/58975 (2019).

View Video