Summary

Att förbättra hög viskositet extrudering av Mikrokristaller för tid-löst seriell femtosekund Crystallography på röntgen lasrar

Published: February 28, 2019
doi:

Summary

Framgången för en tid-löst seriell femtosekund kristallografi experiment är beroende av effektiva prov leverans. Här beskriver vi protokoll för att optimera extrudering av bacteriorhodopsin microcrystals från en hög viskositet mikro-extrudering injektor. Metodiken bygger på provet homogenisering med en roman trevägs koppling och visualisering med en höghastighetskamera.

Abstract

High-viscosity mikro-extrudering spridare har dramatiskt minskat prov förbrukning i seriell femtosekund kristallografiska experiment (SFX) på röntgen fri elektron lasrar (XFELs). En serie experiment med hjälp av ljus-driven proton pump bacteriorhodopsin har ytterligare etablerat dessa spridare som föredra att leverera kristaller för tid-löst seriell femtosekund crystallography (TR-SFX) att lösa strukturella förändringar av proteiner efter ljusaktivering. För att få flera strukturella ögonblicksbilder av hög kvalitet, är det viktigt att samla in stora mängder data och säkerställa clearance av kristaller mellan varje pump laserpuls. Här beskriver vi i detalj hur vi optimerat extrudering av bacteriorhodopsin microcrystals för våra senaste TR-SFX experiment på Linac koherent ljus källa (LCLS). Målet med metoden är att optimera extrudering för en stabil och kontinuerlig flöde samtidigt som en hög täthet av kristaller för att öka hastigheten på vilka data som kan samlas i en TR-SFX experimentera. Vi uppnår detta mål genom att förbereda lipidic cubic fas med en homogen fördelning av kristaller med en roman trevägs spruta kopplingsanordning följt genom att justera provets sammansättning baserat på mätningar av extrudering stabilitet med ett höghastighetståg kameran setup. Metoden kan anpassas för att optimera flödet av andra microcrystals. Installationen kommer att vara tillgängliga för användare av den nya schweiziska fri elektron Laser-anläggningen.

Introduction

Seriell femtosekund kristallografi (SFX) är en strukturbiologi-teknik som utnyttjar de unika egenskaperna hos röntgen fri elektron lasrar (XFEL) att fastställa rumstemperatur strukturer från tusentals mikrometerstort kristaller medan outrunning de flesta av den strålning skadan ”diffraktion innan förstörelsen” principen1,2,3.

I en tid-löst förlängning av SFX (TR-SFX) används de femtosekund pulserna från XFEL att studera strukturella förändringar i proteiner4,5. Proteinet av intresse aktiveras med en optisk laser (eller en annan aktivitet trigger) strax före att bli skjuten av XFEL i en pump-probe setup. Genom att exakt kontrollera fördröjningen mellan pumpen och sonden pulser, kan Målproteinet fångas i olika stater. Molekylär filmer av strukturella förändringar över elva storleksordningar i tid visar kraften i de nya XFEL källorna att studera dynamiken i flera protein mål6,7,8,9, 10,11,12,13. Huvudsakligen, sammanfogar metoden de dynamiska spektroskopiska och statiska strukturella teknikerna till en, som ger en glimt till protein dynamics på nära atomär upplösning.

Enkla system för TR-SFX kan innehålla en endogen utlösa aktivering med en foto-känslig komponent som retinal bacteriorhodopsin (bR)9,10, chromophores i fotosystem II12,13, fotoaktiva gul protein (PYP)6,7 reversibelt photoswitchable fluorescerande protein11eller en photolyzable kolmonoxid i myoglobin8. Spännande varianter av tekniken fortfarande under utveckling beroende mix och injicera system14,15 för att studera enzymatiska reaktioner eller ett elektriskt fält används för att framkalla strukturella förändringar16. Med tanke på att XFEL källor har bara funnits i några år och extrapolera tidigare framgångar in i framtiden, metoden visar potential som en riktig spel-växlare med avseende på vår förståelse av hur proteiner fungerar.

Eftersom biologiska prover förstörs av en enstaka exponering för en hög effekt XFEL puls, krävdes nya strategier för röntgenkristallografi. Bland dessa förfaranden, möjlighet att odla stora mängder enhetliga microcrystals behövde vara utvecklade17,18,19. För att aktivera datainsamling på en XFEL, måste dessa kristaller levereras, kasseras, och sedan förnyas för varje XFEL puls. Med tanke på att XFELs eld användbara pulser på 10-120 Hz, måste prov leverans vara snabb, stabil och pålitlig, samtidigt också hålla kristallerna intakt och begränsa konsumtion. Bland de mest framgångsrika lösningarna är en hög viskositet mikro-extrudering injektor, som levererar ett musikutbud streaming kolumn i rumstemperatur crystal-lastad lipidic cubic fas (LCP) över de pulsade X-ray balk20. Slumpmässigt orienterade kristaller, inbäddade i LCP-bäcken, som avlyssnas av XFEL pulser scatter röntgen på en detektor där en diffraktionsmönster registreras. LCP var ett naturligt val för ett prov leverans medium som det används ofta som ett odlingsmedium för membran protein kristaller17,21,22,23, ännu andra hög viskositet datamedier 24,25,26,27,28,29,30 och lösliga proteiner31 har också använts i injektorn. SFX med hög viskositet injektorn har varit framgångsrik under strukturbestämning av membranet proteiner13,32 inklusive G-proteinkopplade receptorer (varandra)33,34, 35,36,37, med datakvalitet tillräckligt för infödda fasa38,39 samtidigt vara både tid och prov effektivt. För närvarande är dessa spridare används mer rutinmässigt för rumstemperatur mätningar vid synkrotron källor28,30,40,41 samt under mer tekniskt krävande TR-SFX experiment vid XFELs9,10,13,42.

Jämförbara TR-SFX experiment har utförts med andra typer av injektor som vätskefasen leverans i ett flöde fokuserade munstycke6,7,12, men denna metod kräver protein belopp inte tillgängliga för många biologiskt intressanta mål. För bestämning av statiska strukturer med trögflytande extrudering en genomsnittlig konsumtion av 0.072 mg protein per 10 000 indexerade diffraktionsmönster jämfört med 9,35 mg för flytande jet har munstycken rapporterats (dvs ca 130 gånger fler prov effektiv)20. Hög viskositet injektorn har visat sig vara en livskraftig prov leverans enhet för TR-SFX medan endast offra några av detta prov effektiviteten43. I Nogly et al. (2018)10, till exempel prov konsumtion var ca 1,5 mg per 10 000 indexerade mönster, vilket positivt kan jämföras med liknande TR-SFX experiment med den PYP där genomsnittsprov konsumtion var mycket högre med 74 mg protein per 10 000 indexerade mönster6. Hög viskositet spridare alltså klara fördelar när mängden protein tillgängligt är begränsande eller när kristaller odlas direkt i LCP.

För TR-SFX med hög viskositet spridare ge mest pålitliga data flera tekniska problem behöver åtgärdas: flöde hastighet måste förbli över ett minsta kritiska värde; säljfrekvens bör behållas på en nivå som inte återger datainsamling långsam (t.ex. större än 5%); och prov har levereras utan alltför stora störningar. Helst dessa villkor uppfylls redan långt innan en schemalagd TR-SFX experiment att använda tillgänglig XFEL tid så effektivt som möjligt. Pricipally, en avmattning i LCP-dataströmmen kan sondera kristaller som aktiverades med flera optiska laserpulsen och resultatet i blandade aktiva staterna eller sondera pumpade materialet när umpumped material förväntas i balken. En ytterligare fördel med injektion pre-provande är att driftstopp under datainsamling på en XFEL minimeras som tid förpassas till ersätta tilltäppta munstycken, byta ut icke-strängpressning prover, och andra underhållsuppgifter reduceras.

Här presenterar vi en metod för att optimera prov leverans för TR-SFX datainsamling med en hög viskositet mikro-extrudering injektor. För enkelhetens skull lita de beskrivna metoderna inte på tillgång till en röntgen källa, även om arbetet på en synkrotron beamline29 skulle tillhandahålla ytterligare information om förväntade slå priser och crystal diffraktion. Våra protokoll utvecklades för att optimera experiment för att fånga retinal isomerization i proton-pump bacteriorhodopsin10 och genomförs i två faser börjar med förbereda crystal prover för extrudering följt av övervakning extrudering med en höghastighetskamera setup. I fas ett blandas crystal-lastad LCP med ytterligare LCP, låg övergång temperatur lipider, eller andra tillsatser för att säkerställa den slutliga blandningen är lämplig för leverans i prov miljön utan igensättning eller sakta. En ny tre-vägs spruta coupler utvecklades för att förbättra blandning prestanda och provets homogenitet. Den andra fasen består av en extrudering test registreras av en höghastighetskamera att direkt mäta extrudering hastighet stabilitet. Efter analysen av videodata, justeringar kan göras till protokollet prov förberedelse att förbättra experimentella resultat. Dessa förfaranden kan anpassas för att förbereda andra proteiner för TR-SFX datainsamling, med minimala ändringar, och kommer att bidra till en effektiv användning av begränsade XFEL beamtime. Med nya XFEL faciliteter precis börjat sin drift44,45 och överföring av injektor-baserade seriella datainsamlingsmetoder till synkrotroner28,30,40,41 , de närmaste åren kommer säkert fortsätta att ge spännande nya insikter i den strukturella dynamiken i ett allt större utbud av protein mål.

Protocol

1. protein Crystal provberedning Ca 30 min innan provet är att injiceras, baserat belastning 50 µL av kristall-lastad monoolein LCP i 100 µL spruta. För injektion vid atmosfäriskt tryck: belastning 10 µL av flytande paraffin på baksidan av en andra spruta. Håll sprutan vertikalt, utvisa luftbubblor från sprutan. För injektion i vakuum miljö: last 5 µL av MAG 7,9 och 5 µL av flytande paraffin på baksidan av en andra spruta. Håll sprutan vertikalt, utvisa luftbubblor från sprutan…

Representative Results

Perfekt utgångsmaterial för de förfaranden som beskrivs här (figur 3) är höga tätheter av mikrokristaller införlivas trögflytande datamedium för injektorn. Förfarandet kräver cirka 50 µL av crystal lastade bärare för tillredningen. Dessa kan odlas direkt i LCP som med bR9,10 används här som ett exempel (figur 4), eller tillagas med kristaller odlas i konv…

Discussion

TR-SFX metoden med trögflytande extrudering injektorn har visat sig vara en livskraftig teknik för strukturdynamik studier av bacteriorhodopsin9,10 och fotosystem II13 och nu verkar redo att studera proteiner som kör andra Foto biologiska processer såsom ljus-driven ion transport eller sensorisk perception5,50. De protokoll som beskrivs ovan var utformade för att maximera fram…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkänner Gebhard Schertler, Rafael Abela och Chris Milne för att stödja användningen av hög viskositet spridare på PSI. Richard Neutze och hans team är erkända för diskussioner om tid-löst kristallografi och prov leverans med hög viskositet spridare. För finansiellt stöd, vi erkänner schweiziska National Science Foundation för bidrag 31003A_141235, 31003A_159558 (att J.S.) och PZ00P3_174169 (att P.N.). Detta projekt har beviljats medel från EU: s Horizon 2020 forsknings- och innovationsprogrammet under Marie-Sklodowska-Curie stipendiet avtal nr 701646.

Materials

Mosquito LCP Syringe Coupling TTP labtech store 3072-01050
Hamilton Syringe 1710 RNR, 100 µl Hamilton HA-81065
Hamilton Syringe 1750 RNR, 500 µl Hamilton HA-81265
Monoolein Nu-Chek Prep, Inc. M-239
7.9 MAG Avanti Polar Lipids Inc. 850534O
50% w/v PEG 2000 Molecular Dimensions MD2-250-7
Paraffin (liquid) Sigma-Aldrich 1.07162
High speed camera Photron Photron Mini AX
High magnification lens Navitar 12X Zoom Lens System
Three axis stage ThorLabs PT3/M
Fiber light Thorlabs OSL2
Fused silica fiber Molex/Polymicro TSP-505375
Lite touch ferrule IDEX LT-100
ASU high viscosity injector Arizona State University Purchasable from Uwe Weierstall (weier@asu.edu)
HPLC pump Shimadzu LC-20AD
Electronic gas regulator Proportion Air GP1

References

  1. Neutze, R., Wouts, R., van der Spoel, D., Weckert, E., Hajdu, J. Potential for biomolecular imaging with femtosecond X-ray pulses. Nature. 406 (6797), 752-757 (2000).
  2. Chapman, H. N., et al. Femtosecond X-ray protein nanocrystallography. Nature. 470 (7332), 73-77 (2011).
  3. Barty, A., et al. Self-terminating diffraction gates femtosecond X-ray nanocrystallography measurements. Nature photonics. 6 (December), 35-40 (2012).
  4. Aquila, A., et al. Time-resolved protein nanocrystallography using an X-ray free-electron laser. Optics express. 20 (3), 2706-2716 (2012).
  5. Panneels, V., et al. Time-resolved structural studies with serial crystallography: A new light on retinal proteins. Structural Dynamics. 2 (4), 041718 (2015).
  6. Tenboer, J., et al. Time-resolved serial crystallography captures high-resolution intermediates of photoactive yellow protein. Science. 346 (6214), 1242-1246 (2014).
  7. Pande, K., et al. Femtosecond structural dynamics drives the trans/cis isomerization in photoactive yellow protein. Science (New York, N.Y.). 352 (6286), 725-729 (2016).
  8. Barends, T. R. M., et al. Direct observation of ultrafast collective motions in CO myoglobin upon ligand dissociation. Science (New York, N.Y.). 350 (6259), 445-450 (2015).
  9. Nango, E., et al. A three-dimensional movie of structural changes in bacteriorhodopsin. Science. 354 (6319), 1552-1557 (2016).
  10. Nogly, P., et al. Retinal isomerization in bacteriorhodopsin captured by a femtosecond x-ray laser. Science. 0094 (June), (2018).
  11. Coquelle, N., et al. Chromophore twisting in the excited state of a photoswitchable fluorescent protein captured by time-resolved serial femtosecond crystallography. Nature Chemistry. 10 (1), 31-37 (2017).
  12. Kupitz, C., et al. Serial time-resolved crystallography of photosystem II using a femtosecond X-ray laser. Nature. , (2014).
  13. Suga, M., et al. Light-induced structural changes and the site of O=O bond formation in PSII caught by XFEL. Nature. 543 (7643), 131-135 (2017).
  14. Stagno, J. R., et al. Structures of riboswitch RNA reaction states by mix-and-inject XFEL serial crystallography. Nature. 541 (7636), 242-246 (2017).
  15. Wang, D., Weierstall, U., Pollack, L., Spence, J. C. H. Liquid Mixing Jet for XFEL Study of Chemical Kinetics. Journal of synchrotron radiation. , 1364-1366 (2014).
  16. Hekstra, D. R., White, K. I., Socolich, M. A., Henning, R. W., Šrajer, V., Ranganathan, R. Electric-field-stimulated protein mechanics. Nature. 540 (7633), 400-405 (2016).
  17. Liu, W., Ishchenko, A., Cherezov, V. Preparation of microcrystals in lipidic cubic phase for serial femtosecond crystallography. Nature. 9 (9), 2123-2134 (2014).
  18. Kupitz, C., Grotjohann, I., Conrad, C. E., Roy-Chowdhury, S., Fromme, R., Fromme, P. Microcrystallization techniques for serial femtosecond crystallography using photosystem II from Thermosynechococcus elongatus as a model system. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences. 369 (1647), (2014).
  19. Falkner, J. C., et al. Generation of Size-Controlled, Submicrometer Protein Crystals. Chemistry of Materials. 17 (10), 2679-2686 (2005).
  20. Weierstall, U., et al. Lipidic cubic phase injector facilitates membrane protein serial femtosecond crystallography. Nature communications. 5, 3309 (2014).
  21. Landau, E. M., Rosenbusch, J. P. Lipidic cubic phases: a novel concept for the crystallization of membrane proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (December), 14532-14535 (1996).
  22. Caffrey, M. A comprehensive review of the lipid cubic phase or in meso method for crystallizing membrane and soluble proteins and complexes. Acta Crystallographica Section F Structural Biology Communications. 71 (1), 3-18 (2015).
  23. Cherezov, V. Lipidic cubic phase technologies for membrane protein structural studies. Current Opinion in Structural Biology. 21 (4), 559-566 (2011).
  24. Conrad, C. E., et al. A novel inert crystal delivery medium for serial femtosecond crystallography. IUCrJ. 2 (4), 421-430 (2015).
  25. Sugahara, M., et al. Hydroxyethyl cellulose matrix applied to serial crystallography. Scientific Reports. 7 (1), 703 (2017).
  26. Sugahara, M., et al. Grease matrix as a versatile carrier of proteins for serial crystallography. Nature Methods. 12 (1), 61-63 (2014).
  27. Sugahara, M., et al. Oil-free hyaluronic acid matrix for serial femtosecond crystallography. Scientific Reports. 6 (1), 24484 (2016).
  28. Botha, S., et al. Room-temperature serial crystallography at synchrotron X-ray sources using slowly flowing free-standing high-viscosity microstreams. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography. 71 (2), 387-397 (2015).
  29. Kovácsová, G., et al. Viscous hydrophilic injection matrices for serial crystallography. IUCrJ. 4 (4), 400-410 (2017).
  30. Martin-Garcia, J. M., et al. Serial millisecond crystallography of membrane and soluble protein microcrystals using synchrotron radiation. IUCrJ. 4 (4), 439-454 (2017).
  31. Fromme, R., et al. Serial femtosecond crystallography of soluble proteins in lipidic cubic phase. IUCrJ. 2, 545-551 (2015).
  32. Caffrey, M., Li, D., Howe, N., Shah, S. T. A. “Hit and run” serial femtosecond crystallography of a membrane kinase in the lipid cubic phase. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 369 (1647), 20130621 (2014).
  33. Liu, W., et al. Serial femtosecond crystallography of G protein-coupled receptors. Science (New York, N.Y.). 342 (6165), 1521-1524 (2013).
  34. Zhang, H., et al. Structure of the Angiotensin Receptor Revealed by Serial Femtosecond Crystallography. Cell. 161 (4), 833-844 (2015).
  35. Fenalti, G., et al. Structural basis for bifunctional peptide recognition at human δ-opioid receptor. Nature Structural & Molecular Biology. (February), (2015).
  36. Kang, Y., et al. Crystal structure of rhodopsin bound to arrestin by femtosecond X-ray laser. Nature. 523 (7562), 561-567 (2015).
  37. Ishchenko, A., Cherezov, V., Liu, W. Preparation and Delivery of Protein Microcrystals in Lipidic Cubic Phase for Serial Femtosecond Crystallography. Journal of Visualized Experiments. 9 (115), 2123-2134 (2016).
  38. Batyuk, A., et al. Native phasing of x-ray free-electron laser data for a G protein-coupled receptor. Science Advances. 2 (9), e1600292 (2016).
  39. Nakane, T., et al. Native sulfur/chlorine SAD phasing for serial femtosecond crystallography. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography. 71 (12), 2519-2525 (2015).
  40. Nogly, P., et al. Lipidic cubic phase serial millisecond crystallography using synchrotron radiation. IUCrJ. 2 (2), 168-176 (2015).
  41. Weinert, T., et al. Serial millisecond crystallography for routine room-temperature structure determination at synchrotrons. Nature Communications. 8 (1), 542 (2017).
  42. Tosha, T., et al. Capturing an initial intermediate during the P450nor enzymatic reaction using time-resolved XFEL crystallography and caged-substrate. Nature Communications. 8 (1), 1585 (2017).
  43. Nogly, P., et al. Lipidic cubic phase injector is a viable crystal delivery system for time-resolved serial crystallography. Nature Communications. 7, 12314 (2016).
  44. Abela, R., et al. Perspective: Opportunities for ultrafast science at SwissFEL. Structural Dynamics. 4 (6), 061602 (2017).
  45. Marx, V. Structural biology: doors open at the European XFEL. Nature Methods. 14 (9), 843-846 (2017).
  46. Cheng, A., Hummel, B., Qiu, H., Caffrey, M. A simple mechanical mixer for small viscous lipid-containing samples. Chemistry and Physics of Lipids. 95 (1), 11-21 (1998).
  47. Qiu, H., Caffrey, M. The phase diagram of the monoolein/water system: Metastability and equilibrium aspects. Biomaterials. 21 (3), 223-234 (2000).
  48. James, D. . Injection Methods and Instrumentation for Serial X-ray Free Electron Laser Experiments. , (2015).
  49. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  50. Moffat, K. Femtosecond structural photobiology. Science (New York, N.Y.). 361 (6398), 127-128 (2018).
check_url/59087?article_type=t

Play Video

Cite This Article
James, D., Weinert, T., Skopintsev, P., Furrer, A., Gashi, D., Tanaka, T., Nango, E., Nogly, P., Standfuss, J. Improving High Viscosity Extrusion of Microcrystals for Time-resolved Serial Femtosecond Crystallography at X-ray Lasers. J. Vis. Exp. (144), e59087, doi:10.3791/59087 (2019).

View Video