Summary

Medium-Throughput Screening Tests zur Beurteilung der Auswirkungen auf Ca2 +-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliches Sperma

Published: March 01, 2019
doi:

Summary

Hier, zwei mittleren Durchsatz-Assays für die Bewertung der Auswirkungen auf Ca2 +-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliche Spermien werden beschrieben. Diese Tests können verwendet werden, um schnell und einfach große Mengen von Verbindungen für Auswirkungen auf Ca2 +Bildschirm-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliches Sperma.

Abstract

Ca2 +-Signalisierung ist für normale Spermien Zellfunktion und männliche Fruchtbarkeit. Ebenso ist die Akrosom Reaktion entscheidend für die Fähigkeit einer menschlichen Samenzelle, die Zona Pellucida zu durchdringen und das Ei zu befruchten. Es ist daher von großem Interesse für die Verbindungen (z. B. Umweltchemikalien oder Medikamenten-Kandidaten) für ihre Wirkung auf Ca2 +test-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliches Sperma entweder, die potenziellen negativen Auswirkungen auf menschliche Samenzelle Funktion zu untersuchen oder eine mögliche Rolle als Verhütungsmittel zu untersuchen. Hier werden zwei Medium-Durchsatz-Assays beschrieben: (1) ein Fluoreszenz-basierten Test zur Bewertung der Auswirkungen auf Ca2 +-Signalisierung in menschliche Spermien und (2) ein Bild durchflusszytometrischen Assay für die Bewertung von Akrosom Reaktion in menschliches Sperma. Diese Tests können verwendet werden, um eine große Anzahl von Verbindungen für Auswirkungen auf Ca2 +-Bildschirm-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliches Sperma. Darüber hinaus können die Assays verwendet werden hochspezifische Dosis-Wirkungs-Kurven der einzelnen Verbindungen zu generieren, um festzustellen mögliche Additivität/Synergismus für zwei oder mehr Verbindungen und der pharmakologischen Wirkmechanismus durch wettbewerbsfähige Hemmung zu studieren Experimente mit CatSper-Inhibitoren.

Introduction

Die beiden Assays, die hier beschriebenen soll Auswirkungen auf Ca2 +-Signalisierung und Akrosom Reaktion in menschliches Sperma wie für mehrere Verbindungen in mehreren Publikationen Einsatz dieser assays1,2, 3,4,5,6,7. Ca2 +-Signalisierung und Akrosom Reaktion sind entscheidend für normalen menschlichen Samenzelle Funktion und Fruchtbarkeit des Mannes.

Das übergeordnete Ziel einer menschlichen Samenzelle ist das Ei zu befruchten. Um erfolgreich und natürlich das Ei zu befruchten zu können, müssen die Funktionen der Samenzelle fest während der Fahrt die Samenzelle durch die weiblichen Fortpflanzungsorgane8,9geregelt werden. Viele der Samenzelle Funktionen unterliegen über die intrazelluläre Ca2 +-Konzentration [Ca2 +]ich (z. B. Sperma Motilität, Chemotaxis und Akrosom Reaktion)10. Auch ist ein Reifungsprozess, der Rechtsfähigkeit, die die Samenzellen zur Befruchtung der Eizelle macht, genannt teilweise geregelt [Ca2 +]ich10. Ca2 +-Extrudieren Ca2 +-ATPase-Pumpen-11 erhalten ein ca. 20.000 Fach Ca2 +-gradient über die menschlichen Samenzelle Membran mit einer ruhenden [Ca2 +]ich von 50-100 nM. Wenn Ca2 + erlaubt ist, die Zellmembran zu überqueren (z. B. durch die Öffnung des Ca2 +-Kanäle), ein großer Zustrom von Ca2 + auftritt, was zu einer Höhe von [Ca2 +]ich. Trägt jedoch auch die Samenzelle intrazellulären Ca2 +-Läden, die Ca2 + freisetzen können und daher auch geben [Ca2 +]ich12Höhe steigen. Interessanterweise alle Kanal-vermittelten Ca2 +-Zustrom in menschliche Samenzellen bisher festgestellt wurde, über CatSper (KatzeIonischen Kanal der SpeRm), auftreten, die nur in Spermien11zum Ausdruck kommt. In menschliche Samenzellen CatSper wird aktiviert durch die endogenen Liganden Progesteron und Prostaglandine durch unterschiedliche Ligand verbindliche Sites13,14,15, führt zu einer raschen Ca2 +-Zustrom in die Samenzelle. Zwei Quellen in der Nähe von dem Ei bieten hohes Maß an diesen endogenen Liganden. Eine ist die Follikelflüssigkeit, die hohe Konzentrationen von Progesteron16enthält. Die Follikelflüssigkeit wird aus Reifen Follikeln zusammen mit dem Ei beim Eisprung und vermischt sich mit der Flüssigkeit innerhalb der Eileiter17freigegeben. Die wichtigste Quelle ist die Cumulus-Zellen, die die Eizelle umgeben und lassen hohe Progesteron und Prostaglandine. Die Progesteron-induzierte Ca2 +-Zustrom in die Samenzellen zu vermitteln Chemotaxis gegenüber Ei9,18, Steuern Spermien-Motilität19,20 und stimulieren die Akrosom nachweislich Reaktion21. Auslösung von diesen einzelnen [Ca2 +]ich-regulierten Sperma-Funktionen in der richtigen Reihenfolge und zum richtigen Zeitpunkt ist entscheidend für die Befruchtung der Eizelle8. Im Einklang mit dieser, eine suboptimale Progesteron-induzierte Ca2 +-Zustrom zugeordnet werden reduziert männliche Fruchtbarkeit22,23,24,25,26 gefunden wurde ,27,28,29 und funktionale CatSper ist unabdingbar für männliche Ergiebigkeit26,30,31,32, 33,34,35,36.

Da die Spermien die Eizelle erreichen, eine Abfolge von Ereignissen erfolgen für die Befruchtung auftreten: (1) die Samenzellen müssen dringen in die umliegenden Cumulus Zellschicht, 2) an die Zona Pellucida binden, (3) den acrosomal Inhalt, die sogenannte Akrosom Reaktion exocytose 37, 4) dringen in die Zona Pellucida und 5) verschmelzen mit der Eihülle Befruchtung38abgeschlossen. Um durch diese Schritte zu gehen und das Ei zu befruchten, müssen die Samenzelle zuerst Rechtsfähigkeit11, unterziehen, die beginnt, wenn die Samenzellen verlassen die Samenflüssigkeit enthält “decapacitating” Faktoren39 und in den Flüssigkeiten des Weibchens schwimmen Fortpflanzungsorgane mit hohen Niveaus von Bikarbonat und Albumin37. Rechtsfähigkeit rendert die Spermien in der Lage, Überaktivierung, eine Form der Motilität mit eine kräftige Tracht Prügel der Geissel und Akrosom Reaktion37zu unterziehen. Überaktivierung Motilität ist erforderlich für die Penetration der Zona Pellucida40, und das Akrosom enthält verschiedene hydrolytische Enzyme, die diese Durchdringung Prozess41Hilfe. Darüber hinaus macht Akrosom Reaktion der Samenzellen in der Lage, der Verschmelzung mit dem Ei, indem man bestimmte Membranproteine auf der Sperma-Oberfläche für Sperma-Ei Fusion42notwendig. Folglich die Fähigkeit Überaktivierung und Akrosom Reaktion zu unterziehen sind sowohl für erfolgreiche Befruchtung der Eizelle40,42erforderlich. Im Gegensatz zu dem, was für Maus Samenzellen43,44,45gesehen hat kann nur menschliche Samenzellen, die Akrosom intakt sind an die Zona Pellucida46binden. Wenn die menschliche Samenzellen an die Zona Pellucida gebunden sind haben sie unterziehen die Akrosom Reaktion, die Zona Pellucida41 einzudringen und um bestimmte Membranproteine freizulegen, die für die Verschmelzung mit dem Ei38benötigt werden. Das Timing der Akrosom Reaktion in menschliches Sperma ist somit entscheidend zur Befruchtung auftreten.

Wie oben beschrieben, Ca2 +-Signalisierung ist wichtig für normale Spermien Zelle Funktion8, und es daher von großem Interesse ist in der Lage sein eine Bildschirm große Anzahl von Verbindungen für Auswirkungen auf Ca2 +-Signalisierung in menschliche Samenzellen. Ebenso wie nur menschliche Samenzellen, die Akrosom Reaktion auf den richtigen Zeitpunkt und Ort unterzogen werden können die Zona Pellucida zu durchdringen und die Eier46,47 befruchten, ist es auch von großem Interesse, Verbindungen für ihre Fähigkeit, testen zu können beeinträchtigen Sie die Akrosom Reaktion in menschliche Spermien. Zu diesem Zweck werden zwei Medium Throughput Screening-Tests beschrieben: (1) ein Test für Wirkungen auf Ca2 +-Signalisierung in menschliche Samenzellen und (2) ein Test für die Fähigkeit, Akrosom Reaktion in menschliche Samenzellen zu induzieren.

1-Assay ist ein Medium-Durchsatz Ca2 +-Assay-Signalisierung. Diese Fluoreszenz Platte Leser-basierte Technik überwacht Änderungen in Fluoreszenz als Funktion der Zeit gleichzeitig in mehreren Brunnen. Die Ca2 +-sensible Fluoreszenzfarbstoff, Fluo-4 hat einen K-d für Ca2 +≈ 335 nM und Zelle-permeationsfähigen in AM (Acetoxymethyl) Ester Form ist. Mit Fluo-4, ist es möglich, Änderungen in [Ca2 +]i im Laufe der Zeit und nach der Zugabe von Verbindungen des Interesses zu den Samenzellen zu messen. Der Test wurde von im Labor von Timo Strünker 201113 entwickelt und ist seitdem in mehreren Studien zu Bildschirm Verbindungen für Auswirkungen auf Ca2 +benutzt worden-Signalisierung in menschliches Sperma1,2,3, 4,5. Auch hat eine ähnliche Methode verwendet wurde, mehrere Drogen Kandidaten48auf den Bildschirm. Dieser Test eignet sich darüber hinaus auch für die Beurteilung des pharmakologischen Modus der Aktion1,2,3,4,5, Dosis-Wirkungs-Kurven1, 2,3,4,5, wettbewerbsfähige Hemmung1,2, Additivität1,2und Synergismus3 Verbindungen des Interesses.

Test 2 ist ein Medium-Durchsatz Akrosom Reaktion Assay. Dieses Bild Cytometer-basierten Methode misst die Menge an lebensfähigen Akrosom reagierte Samenzellen in einer Probe, mit drei fluoreszierende Farbstoffe: Propidium Jodid (PI), FITC gekoppelten Lektin Pisum Sativum (FITC-PSA) und Hoechst 33342. Der Test wurde von einer ähnlichen Flow Cytometry-basierte Methode von Zoppino Et Al.49 geändert und wurde in mehreren Studien6,7verwendet. Für die Ca2 +-Signalisierung Assay, Akrosom Reaktion Assays könnte auch verwendet werden, um die Dosis-Wirkungs-Kurven, Hemmung, Additivität und Synergismus der Verbindungen des Interesses zu beurteilen.

Protocol

Die Sammlung und Analyse von menschlichen Samenproben in den Protokollen folgt den Richtlinien der Forschung-Ethik-Kommission der dänischen Hauptstadt Region. Alle Spermaproben haben freiwillige Spender nach Einwilligung eingeholt. Nach der Geburt wurden die Proben vollständig anonymisiert. Für ihre Unannehmlichkeiten erhielt jeder Spender eine Gebühr von 500 DKK (ca. $75 US-Dollar) pro Probe. Die Proben wurden am Tag der Lieferung analysiert und dann sofort nach den Laborversuchen zerstört. <p class="jove_conte…

Representative Results

Vertreter ergibt sich aus einem Experiment testen die Wirkung von 4 Verbindungen (A, B, C und D) zusammen mit einer positiven (Progesteron) und negativ (Puffer) Kontrolle auf [Ca2 +]i in menschlichem Samen mit der Medium-Durchsatz Ca2 +-Signalisierung Assay sehen in Abbildung 4a. In Abbildung 4 bzeigt eine Dosis-Antwort-Kurve von Progesteron die Spitze ΔF/F0 (%) abgeleitet wurde, Daten…

Discussion

Die mittleren Durchsatz Ca2 + Signalisierung Assay basiert auf Messungen der Fluoreszenz von einzelnen Mikrovertiefungen enthält etwa 250.000 Samenzellen. Das aufgenommene Signal wird von allen einzelnen Samenzellen in den Brunnen gemittelt. Der Test bietet somit, dass keine räumlichen Informationen, wo speziell in der Samenzelle [Ca2 +]ich geändert wird, wie groß ein Anteil der Spermien, die eine Änderung der [Ca2 +]i findet, oder wie heterogen ist die Antwort …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren möchten im Labor von Timo Strünker Überwachung der AR und DLE während ihrer Aufenthalte in seinem Labor bestätigen. Darüber hinaus möchten wir unseren Kolleginnen und Kollegen an der Abteilung für Wachstum und Reproduktion, Copenhagen University Hospital, Rigshospitalet für ihre Unterstützung bei der Einrichtung dieser beiden Assays danken. Diese Arbeit wurde unterstützt durch Zuschüsse aus dem Innovationsfonds Dänemark (Grant-Nummern 005-2010-3 und 14-2013-4).

Materials

0.2 µm pore filter Thermo Fisher Scientific, USA 296-4545
1 L measuring cylinder Thermo Fisher Scientific, USA 3662-1000
1,4 and 2 mL plastic tubes Eppendorf, Germany 30120086 and 0030120094
12-channel pipette Eppendorf, Germany 4861000813
384 multi-well plates Greiner Bio-One, Germany 781096
15 and 50 mL platic tubes Eppendorf, Germany 0030122151 and 30122178
A2-slide ChemoMetec, Denmark 942-0001
Automatic repeater pipette Eppendorf, Germany 4987000010
CaCl2
Centrifuge
Clean wide-mouthed plastic container for semen sample
Dimethyl sulfoxide (DMSO)
FITC-coupled lectin of Pisum sativum (FITC-PSA) Sigma-Aldrich, Germany L0770
Fluo-4 AM Thermo Fisher Scientific, USA F14201
FLUOstar OMEGA fluorescence microplate reader BMG Labtech, Germany
Glucose anhydrous
HEPES
Hoechst-33342 ChemoMetec, Denmark 910-3015
Human serum albumin (HSA) Irvine Scientific 9988 For addition to HTF+
Immobilizing solution containing 0.6 M NaHCO3 and 0.37% (v/v) formaldehyde in distilled water
Incubator
KCl
KH2PO4
Magnetic stirrer
MgSO4
Na-Lactate
NaCl
NaHCO3
NC-3000 image cytometer ChemoMetec, Denmark 970-3003
Pipettes and piptting tips
propidium iodide (PI) ChemoMetec, Denmark 910-3002
Purified water
Rack for placing 50 mL plastic tubes in 45° angle
S100 buffer ChemoMetec, Denmark 910-0101
SP1-cassette ChemoMetec, Denmark 941-0006
Volumetric flasks of appropriate sizes
Vortexer

References

  1. Schiffer, C., et al. Direct action of endocrine disrupting chemicals on human sperm. EMBO reports. , (2014).
  2. Rehfeld, A., Dissing, S., Skakkebæk, N. E. Chemical UV Filters Mimic the Effect of Progesterone on Ca(2+) Signaling in Human Sperm Cells. Endocrinology. 157 (11), 4297-4308 (2016).
  3. Brenker, C., et al. Synergistic activation of CatSper Ca2+ channels in human sperm by oviductal ligands and endocrine disrupting chemicals. Human Reproduction (Oxford, England). 33 (10), 1915-1923 (2018).
  4. Brenker, C., et al. The CatSper channel: a polymodal chemosensor in human sperm. The EMBO Journal. 31 (7), 1654-1665 (2012).
  5. Brenker, C., et al. Action of steroids and plant triterpenoids on CatSper Ca2+ channels in human sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), E344-E346 (2018).
  6. Rehfeld, A., et al. Chemical UV filters can affect human sperm function in a progesterone-like manner. Endocrine Connections. , (2017).
  7. Egeberg Palme, D. L., et al. Viable acrosome-intact human spermatozoa in the ejaculate as a marker of semen quality and fertility status. Human Reproduction. , (2018).
  8. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  9. Publicover, S. J., et al. Ca2+ signalling in the control of motility and guidance in mammalian sperm. Frontiers in Bioscience. 13, 5623-5637 (2008).
  10. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  11. Lishko, P. V., et al. The control of male fertility by spermatozoan ion channels. Annual Review Of Physiology. 74, 453-475 (2012).
  12. Morris, J., et al. Cell-penetrating peptides, targeting the regulation of store-operated channels, slow decay of the progesterone-induced [Ca2+]i signal in human sperm. Molecular Human Reproduction. 21 (7), 563-570 (2015).
  13. Strünker, T., et al. The CatSper channel mediates progesterone-induced Ca2+ influx in human sperm. Nature. 471 (7338), 382-386 (2011).
  14. Lishko, P. V., Botchkina, I. L., Kirichok, Y. Progesterone activates the principal Ca2+ channel of human sperm. Nature. 471 (7338), 387-391 (2011).
  15. Miller, M. R., et al. Unconventional endocannabinoid signaling governs sperm activation via the sex hormone progesterone. Science (New York, N.Y.). 352 (6285), 555-559 (2016).
  16. Revelli, A., et al. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reproductive Biology And Endocrinology RB&E. 7, 40 (2009).
  17. Lyons, R. A., Saridogan, E., Djahanbakhch, O. The effect of ovarian follicular fluid and peritoneal fluid on Fallopian tube ciliary beat frequency. Human Reproduction. 21 (1), 52-56 (2006).
  18. Eisenbach, M., Giojalas, L. C. Sperm guidance in mammals – an unpaved road to the egg. Nature reviews. Molecular Cell Biology. 7 (4), 276-285 (2006).
  19. Alasmari, W., et al. The clinical significance of calcium-signalling pathways mediating human sperm hyperactivation. Human Reproduction. 28 (4), 866-876 (2013).
  20. Alasmari, W., et al. Ca2+ signals generated by CatSper and Ca2+ stores regulate different behaviors in human sperm. The Journal of Biological Chemistry. 288 (9), 6248-6258 (2013).
  21. Tamburrino, L., et al. The CatSper calcium channel in human sperm: relation with motility and involvement in progesterone-induced acrosome reaction. Human Reproduction. 29 (3), 418-428 (2014).
  22. Krausz, C., et al. Intracellular calcium increase and acrosome reaction in response to progesterone in human spermatozoa are correlated with in-vitro fertilization. Human Reproduction. 10 (1), 120-124 (1995).
  23. Oehninger, S., et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia. Fertility and Sterility. 61 (2), 349-354 (1994).
  24. Shimizu, Y., Nord, E. P., Bronson, R. A. Progesterone-evoked increases in sperm [Ca2+]i correlate with the egg penetrating ability of sperm from fertile but not infertile men. Fertility and Sterility. 60 (3), 526-532 (1993).
  25. Falsetti, C., et al. Decreased responsiveness to progesterone of spermatozoa in oligozoospermic patients. Journal of Andrology. 14 (1), 17-22 (1993).
  26. Williams, H. L., et al. Specific loss of CatSper function is sufficient to compromise fertilizing capacity of human spermatozoa. Human Reproduction. 30 (12), 2737-2746 (2015).
  27. Forti, G., et al. Effects of progesterone on human spermatozoa: clinical implications. Annales d’Endocrinologie. 60 (2), 107-110 (1999).
  28. Krausz, C., et al. Two functional assays of sperm responsiveness to progesterone and their predictive values in in-vitro fertilization. Human Reproduction. 11 (8), 1661-1667 (1996).
  29. Kelly, M. C., et al. Single-cell analysis of [Ca2+]i signalling in sub-fertile men: characteristics and relation to fertilization outcome. Human Reproduction. 33 (6), 1023-1033 (2018).
  30. Brown, S. G., et al. Homozygous in-frame deletion in CATSPERE in a man producing spermatozoa with loss of CatSper function and compromised fertilizing capacity. Human Reproduction. 33 (10), 1812-1816 (2018).
  31. Avenarius, M. R., et al. Human male infertility caused by mutations in the CATSPER1 channel protein. American Journal of Human Genetics. 84 (4), 505-510 (2009).
  32. Smith, J. F., et al. Disruption of the principal, progesterone-activated sperm Ca2+ channel in a CatSper2-deficient infertile patient. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (17), 6823-6828 (2013).
  33. Hildebrand, M. S., et al. Genetic male infertility and mutation of CATSPER ion channels. European Journal of Human Genetics. 18 (11), 1178-1184 (2010).
  34. Avidan, N., et al. CATSPER2, a human autosomal nonsyndromic male infertility gene. European Journal of Human Genetic. 11 (7), 497-502 (2003).
  35. Zhang, Y., et al. Sensorineural deafness and male infertility: a contiguous gene deletion syndrome. BMJ Case Reports. 2009, (2009).
  36. Jaiswal, D., Singh, V., Dwivedi, U. S., Trivedi, S., Singh, K. Chromosome microarray analysis: a case report of infertile brothers with CATSPER gene deletion. Gene. 542 (2), 263-265 (2014).
  37. Visconti, P. E., Krapf, D., de la Vega-Beltrán, J. L., Acevedo, J. J., Darszon, A. Ion channels, phosphorylation and mammalian sperm capacitation. Asian Journal of Andrology. 13 (3), 395-405 (2011).
  38. Wassarman, P. M., Jovine, L., Litscher, E. S. A profile of fertilization in mammals. Nature Cell Biology. 3 (2), E59-E64 (2001).
  39. Leahy, T., Gadella, B. M. Sperm surface changes and physiological consequences induced by sperm handling and storage. Reproduction. 142 (6), 759-778 (2011).
  40. Suarez, S. S. Control of hyperactivation in sperm. Human Reproduction Update. 14 (6), 647-657 (2008).
  41. Liu, D. Y., Baker, H. W. Inhibition of acrosin activity with a trypsin inhibitor blocks human sperm penetration of the zona pellucida. Biology of Reproduction. 48 (2), 340-348 (1993).
  42. Okabe, M. The cell biology of mammalian fertilization. Development. 140 (22), 4471-4479 (2013).
  43. Inoue, N., Satouh, Y., Ikawa, M., Okabe, M., Yanagimachi, R. Acrosome-reacted mouse spermatozoa recovered from the perivitelline space can fertilize other eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (50), 20008-20011 (2011).
  44. Jin, M., et al. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12), 4892-4896 (2011).
  45. Hirohashi, N., Yanagimachi, R. Sperm acrosome reaction: its site and role in fertilization. Biology of Reproduction. 99 (1), 127-133 (2018).
  46. Liu, D. Y., Garrett, C., Baker, H. W. G. Acrosome-reacted human sperm in insemination medium do not bind to the zona pellucida of human oocytes. International Journal of Andrology. 29 (4), 475-481 (2006).
  47. Overstreet, J. W., Hembree, W. C. Penetration of the zona pellucida of nonliving human oocytes by human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 27 (7), 815-831 (1976).
  48. Martins da Silva, S. J., et al. Drug discovery for male subfertility using high-throughput screening: a new approach to an unsolved problem. Human Reproduction. , 1-11 (2017).
  49. Zoppino, F. C. M., Halón, N. D., Bustos, M. A., Pavarotti, M. A., Mayorga, L. S. Recording and sorting live human sperm undergoing acrosome reaction. Fertility and Sterility. 97 (6), 1309-1315 (2012).
  50. Mata-Martínez, E., et al. Measuring intracellular Ca2+ changes in human sperm using four techniques: conventional fluorometry, stopped flow fluorometry, flow cytometry and single cell imaging. Journal of Visualized Experiments. (75), e50344 (2013).
  51. Egeberg, D. L., et al. Image cytometer method for automated assessment of human spermatozoa concentration. Andrology. 1 (4), 615-623 (2013).
  52. Nash, K., et al. Techniques for imaging Ca2+ signaling in human sperm. Journal of Visualized Experiments. (40), (2010).
check_url/59212?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rehfeld, A., Egeberg Palme, D. L., Almstrup, K., Juul, A., Skakkebaek, N. E. Medium-throughput Screening Assays for Assessment of Effects on Ca2+-Signaling and Acrosome Reaction in Human Sperm. J. Vis. Exp. (145), e59212, doi:10.3791/59212 (2019).

View Video