Summary

生体共焦点顕微鏡を用いてリンパ節構造と細胞局在化を可視化

Published: August 09, 2019
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Summary

このプロトコルは、臓器構造に変化を起さずにリンパ節を排出する異なる細胞集団を画像化する技術を説明する。

Abstract

リンパ節(LN)は体内に広がる器官であり、自然免疫応答が適応免疫とつながる。実際、LNはリンパ管の経路に戦略的に介入され、LN内のすべての常駐免疫細胞と組織抗原との親密な接触を可能にする。したがって、ex vivo全体LNイメージングを用いて細胞組成、分布、位置および相互作用を理解することは、身体が局所的および全身性免疫応答をどのように調整するかに関する知識を追加する。このプロトコルは、従来の共焦点顕微鏡およびストック試薬を用いて非常に再現性が高く、実行しやすい方法論を可能にする蛍光標識抗体の生体内投与に続くex vivoイメージング戦略を示す。抗体の皮下注射を通じて、従来の免疫蛍光顕微鏡技術によって損傷を受ける可能性のある組織構造に影響を与えることなく、RNを排出する異なる細胞集団に標識することができる。

Introduction

リンパ節(LN)は、自然免疫応答と適応免疫応答を橋渡しする重要な機能を持つ全身に広く存在する卵形の器官である。LNは、それらに対する免疫応答をマウントするために異物粒子および癌細胞を同定するためにリンパを濾過する1.抗原提示細胞(APC)、T細胞およびB細胞は、抗原特異的抗体(体液性免疫)および細胞傷害性リンパ球(細胞性免疫)を生成するために一緒に働き、外来粒子および癌細胞2を排除する。したがって、リンパ系に存在する免疫細胞のダイナミクスを理解することは、ワクチン開発とがん免疫療法に重要な意味を持つであろう。

新しい共焦点顕微鏡と超解像顕微鏡を含む強力な顕微鏡の出現は、異なる免疫細胞集団が彼らのネイティブ環境でどのように振る舞うかを理解する上で並外れた進歩を可能にしました3。特定の標的4、5の制御下で蛍光タンパク質を発現する遺伝子組み換えマウスとのプローブの組み合わせを用いて、複数の同時細胞サブタイプを画像化することが可能となった。実際、質量サイトメトリーやマルチパラメトリックフロー解析などの高次元技術は、健康と疾患における異なる免疫細胞の区画化と機能性に関する知識を拡大するために重要であり、7.しかし、これらの技術のためのサンプルを調用するために、組織は消化を必要とし、細胞は細胞懸濁液で分析される自然なmilieuから分離される。これらの制限を超え、生物学のより良い翻訳を可能にするために、ここで提案されるプロトコルの目標は、改善された速度、組織の利点を持つストック共焦点顕微鏡を使用して、画像ex vivo全リンパ節に簡単な方法論を適用することです。構造保存、および従来の免疫蛍光染色と比較した細胞生存率。このアプローチを用いて、病原体4に対する宿主早期防御に関与するTリンパ球のサブタイプであるγδ T細胞に対するマウス欠損が、野生型マウスと比較して卵胞およびT細胞ゾーンを損なっていることを示すことができた。これらの知見により、βT細胞がリンパ球器官の恒常性と体液性免疫応答4の恒常性において重要な役割を果たすことを実証した研究を行うことが可能となった。さらに、このプロトコルは、プローブと抗体がリンパ節に到達するための生理学的経路を提供し、皮下に投与され、組織リンパ循環を通じて消散するので、その場標識で使用された以前の報告に基づいて構築するリンパ系関連構造8、9、胚中心ダイナミクス10、11、12、および血流に容易にアクセス可能な標的を可視化する抗体を用いて13 、14、15.

Protocol

このプロトコルは、ハーバード大学医学部とブリガム・アンド・ウィメンズ病院の動物常任委員会(プロトコル2016N000230)によって承認されました。 1. 実験に使用したマウス 抗体ミックスを投与するためにB6の背景に8週齢の雄および雌マウスを使用する。 CX3CR1GFP/WTCCR2RFP/WTマウスを使用して、抗体ミックスを投与せずにレポーターマウスにもe…

Representative Results

この原稿は、これらの器官の特定の細胞集団を染色するために蛍光標識抗体を注入した後、その構造を損傷することなく鼠径およびポピライトリンパ節を除去する技術を示しています(図1および図2)). BV421抗CD4およびBB515抗CD19および共焦点イメージング解析を用いたLN細胞の免疫標識の強力な組み合わせは、鼠径およびポピュラ?…

Discussion

イメージングと分子生物学や高次元免疫表現型を含む他の技術との組み合わせは、免疫細胞をネイティブの文脈で調べる能力を高めています。実際、他のアプローチでは組織の消化と細胞の単離が必要になる場合がありますが、組織の完全性を失う可能性がありますが、生体内またはex vivoイメージングを使用すると、地理的な方法で異なる細胞サブタイプを調査する上で大…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品はNIH(R01 AI43458~H.L.W.)によってサポートされました。

Materials

BV421 anti-CD4 BD Horizon 562891 GK1.5; 0.2 mg mL-1
BB515 anti-CD19 BD Horizon 564509 1D3; 0.2 mg mL-1
BB515 Rat IgG2a, κ Isotype Control BD Horizon 564418 R35-95; 0.2 mg mL-1
BV421 Mouse IgG2b, K Isotype Control BD Horizon 562603 R35-38 0.2 mg mL-1
Cellview culture dish Greiner-Bio 627861 35×10 mm with glass bottom
Insulin syringes BD Plastipak Insulin U-100
Kimwipes Kimtech Science Brand 7557 size 21 x 20 cm / 100 sheets per box
Microsurgery curved forceps WEP Surgical Instruments custom made 12.5 cm
Microsurgery curved scissors WEP Surgical Instruments custom made 11.5 cm
Needle BD PrecisionGlide 30 gauge × ½ inch
Nikon Eclipse Te + A1R confocal head Nikon loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm)
PE anti-F4/80 BD Pharmigen 565410 T45-2342; 0.2 mg mL-1
PE Rat IgG2a, κ Isotype Control BD Pharmigen 553930 R35-95; 0.2 mg mL-1
Zeiss LSM 710 confocal microscope Zeiss loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm)

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Cite This Article
Rezende, R. M., Lopes, M. E., Menezes, G. B., Weiner, H. L. Visualizing Lymph Node Structure and Cellular Localization using Ex-Vivo Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (150), e59335, doi:10.3791/59335 (2019).

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