Summary

태아와 신생아 뮤 린 긴 뼈를 배양 하 고 측정

Published: April 26, 2019
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Summary

여기서, 우리는 생체 내 과정을 다시 캡처하는 동안 제어 된 조건에서 뼈 및 연골 발달 및 항상성 분석에 적합 한 태아 및 신생 단계에서 긴 뮤 린 뼈의 생체 내 배양을 위한 방법을 제시 한다.

Abstract

긴 뼈는 복잡 하 고 동적인 구조, 연골 중간을 통해 endochondral 골 화에서 발생 하는. 건강 한 인간의 뼈에 대 한 제한 된 액세스는 특히 마우스와 쥐와 같은 포유류 모델을 사용 하 여 뼈 성장과 항상성의 다양 한 측면을 살펴 보는 데 유용 합니다. 추가적으로, 쥐에 있는 정교한 유전 공구의 발달은 긴 뼈 성장의 더 복잡 한 연구를 허용 하 고 뼈 성장을 공부 하기 위하여 이용 된 기술의 확장을 요구 합니다. 여기서, 우리는 생체 내 뮤 린 뼈 배양에 대 한 상세한 프로토콜을 제시 하 고,이는 체 내 과정의 대부분을 탈환 하면서 밀접 하 게 통제 된 방식으로 뼈와 연골의 연구를 가능 하 게 한다. 설명 된 방법은 경골, 대 퇴 골 및 중 족 뼈를 포함 한 뼈의 범위의 배양을 허용 하지만, 우리는 여기에 경골 문화에 주로 초점을 맞추고 있다. 더욱이, 타임 랩 스 라이브 이미징 또는 약물 치료와 같은 다른 기술과 조합 하 여 사용 될 수 있다.

Introduction

장기 성장은 성장 장애의 출현을 막기 위해 밀접 하 게 조율 되어야 하며, 신체의 다른 부분 들 사이에서 여러 세포 유형, 분자 통로 및 누화를 조절 하는 것을 수반 한다. 이미징 기법은 정상적인 상태에서 성장 하는 배아에서 시간이 지남에 따라 발생 하는 변화를 해결 하는 데 필수적 이며, 시스템에서 교란이 유도 된 후에도 중요 합니다. 널리 사용 되는 설치류 모델과 같은 자궁내 발달을 가진 배아는, 전 생체 배양 기술을 사용 하 여 부분적으로 극복할 수 있는 살아있는 화상 진 찰 및 약 처리를 위한 추가 도전을 제시 합니다. 생체 내 프로세스를 성공적으로 탈환 하 고 의미 있는 결과를 얻으려면 각 기관이 나 조직에 적합 한 배양 조건을 찾는 것이 중요 합니다.

포유류 해골의 대부분의 뼈는 endochondral 골 화를 통해 자라 며, 여기서 배아 (연골 세포로 구성 됨)는 세로 성장을 유도 하 고 점차적으로 뼈로 대체 됩니다. 이 과정은 3 개의 영역이 구별 될 수 있는 긴 뼈의 끝에 있는 성장 판에서 발생 합니다: 휴식, 증식 및 비 대1,2. 먼저, 휴지기에서의 원형 전구 연골 세포는 증식 영역에서 사이클링 원주 형 연골 세포로 전환 한다. 분화의 다음 단계 도중,이 연골 세포는 비 대 하 하 고 유형 X 교원 질을 은닉 하기 시작 됩니다. 비 대 성 연골 세포는 골 화의 후속 단계를 조율 합니다: 그들은 결합 조직 성장 인자, 뼈 형성 단백질 및 인도 고슴도치와 같은 주요 신호 분자를 분 비 하 고 매트릭스의 미네랄 화를 직접, 모집 혈관을 뼈의 중앙 부분에, 그리고 아 폽 토시 스를 시 킴으로써, 골 아 세포가 매트릭스에 침입 하 여 일차 골 화 중심3,4를 형성 하도록 한다. 광물 화 된 매트릭스는 골 아 세포가 이동 하 여이 저하 된 연골을 뼈 매트릭스5로 대체 하는 혈관의 침투를 촉진 합니다. 대부분의 골 아 세포는 연골 세포 로부터 연골 매트릭스를 침범 하 고, 섬유질 층은6. 대안적으로, 비 대 성 연골 세포의 비율은 조 골 세포를 생존 하 고 트랜스 분화 할 수 있다7,8,9. 뼈의 최종 길이는 일시적인 연골의 축적 된 성장에 기인 하며, 그의 성장 속도는 비 대 성 연골 세포의 수 및 크기, 및 그들의 매트릭스 생산10에 의존 한다. 추가적으로, 최근 비 대 단계의 지속 시간이 뼈 (11)의 최종 길이와 상관 된다는 것이 최근에 나타났다. 따라서, 적절 한 뼈 크기를 보장 하기 위해 이러한 세포의 증식 및 분화의 엄격한 조절이 필요 하다.

조직 및 성장 판의 개발에 년 동안 취득 한 실질적인 지식에도 불구 하 고, 이러한 결론의 대부분은 고정 조직학 섹션의 관찰에 기초한. 조직 절편은이 과정에 대 한 중요 한 정보를 제공 하지만, 기술적 아티팩트를가지고 수 있습니다, 그래서 항상 안정적으로 다른 단계 사이의 형태학 적 또는 크기 변화를 추정 하는 데 사용할 수 없습니다. 또한 뼈 성장이 동적인 과정 이기 때문에 정적 2 차원 (2D) 이미지는 성장 판의 세포 움직임에 대 한 제한적인 통찰력을 제공 하는 반면, 살아있는 조직에 대 한 타임 랩 스 이미징의 행동에 대 한 귀중 한 정보를 제공 할 수 있습니다 성장 판의 연골 세포.

이러한 모든 제한은 생체 내 뼈 배양을 사용 하 여 잠재적으로 해결 될 수 있습니다. 뼈 배양 프로토콜은 얼마 전에 개발 되었지만, 그들은 뮤 린 긴 뼈에 무제한으로 적용 되었습니다. 대부분의 연구는 병아리 모델12,13에 의해 제공 되는 기술적인 이점 때문에 병아리 뼈를 사용 합니다. 유기 형 배양 물 (공기/액체 계면)은 10 일 동안 배양에서 유지 되었던 병아리 배아 미 립 기에 적용 되었다14. 마우스에서 사용할 수 있는 정교한 유전 도구는이 모델을 ex vivo 뼈 문화에서 사용 되는 매우 매력적으로 만듭니다. 뼈 성장에 마우스를 사용 하는 연구는 대부분 중 족 뼈 (15)와 함께 일했다, 아마 그들의 작은 크기와 배아 당 얻은 더 큰 숫자 때문에16. 전통적으로 긴 뼈로 여겨 졌으 나, 중 족은 생체 내 다른 긴 뼈 보다 더 일찍 노화 (성장 판 (17)의 증식 및 인 볼륨 감소를 특징으로 하며, 따라서 이들의 지속적인 성장은 전 생체 실제로 생체 내 프로세스를 다시 캡처합니다. 이 기사의 목적상 근 위 및 중간 팔 다리 영역의 골격에 긴 골격 이라는 용어를 사용 합니다. 몇몇 이전 연구는 tibia와 같은 긴 뮤 린 뼈를 사용 하 여, 전 생체 내 배양에서 연골의 실질적인 성장을 관찰 하지만, 작은 골 화18. 우리는 또한 최근 연골 세포 역학 (19)을 연구 하기 위해, 경골 문화를 사용 했다. 다른 연구 들은 배양21에 대 한 대 퇴 골의 말단 부에만 젊은 쥐 (20 ) 로부터 넓 적으로 대 퇴 머리를 사용 하였다. 일부 더 최근의 작품은 성공적으로 살아있는 마우스 조직22,23에 있는 연골 세포의 3 차원 (3d) 영화를 획득 하기 위해 전체 뼈의 전 생체 배양을 타임 랩 스 이미징과 결합 한다. 저자는 뼈 ex vivo 문화의 잠재적인 적용의 좋은 예에 있는 증식 영역 (23 )에 연골 세포의 재배열에서 이전에 주목 이벤트를 관찰 하기 위해 관리. 대체, 즉 정적 이미지 분석에는 간접적이 고 복잡 한 기법이 필요 합니다. 이것은 연골 성장에 대 한 transversally 중심의 클론의 중요성을 평가 하는 최근의 연구에 의해 예시 되었으며, 여기서 수학적 모델링과 결합 된 다 색 리포터 마우스 균 주를 사용한 유전 추적이24를 사용 하였다. 따라서, 전 생체 배양은 보다 빠르고 간단한 방법으로 동적 프로세스에 대 한 통찰력을 얻는 데 도움이 될 수 있습니다.

여기에서, 우리는 다른 분자 처리 및/또는 시간 경과 살아있는 화상 진 찰과 결합 될 수 있는 긴 뼈 문화를 뮤 린 위한 방법을 제시 합니다. 이 프로토콜은 이전 보고서15,25에서 사용 된 방법을 조정 하지만 몇 가지 추가 문제를 해결 하 고 중 족 뼈가 아닌 경골과 같은 긴 뼈에 초점을 맞춥니다. 마지막으로, 그것은 다른 물질의 존재에 개별적으로 왼쪽과 오른쪽 뼈를 배양 하 여 통계적으로 강력한 쌍 비교를 사용의 잠재력을 탐구.

Protocol

모든 실험은 실험실 동물의 윤리적 취급에 대 한 지방 정부 및 제도적 지침에 따라 수행 되어야 합니다. 1. 뼈 배양의 날 이전 준비 배아 날 14.5에서 태아와 새끼를 얻기 위해 시간 마우스 짝짓기를 설정 (전자 14.5) 그리고 이후.참고: 긴 뼈의 문화는 다른 마우스 균 주에 성공적으로 적용 될 수 있다; 본 프로토콜에서, 스위스 웹스터 야생 형 마우스의 무법…

Representative Results

뼈 배양은 다른 단계에서 시작 하 여 수행할 수 있습니다. 도 1a에서, 동등한 단계에서 배양 된 경골과 갓 추출한 것 들 사이의 비교가 도시 되어 있다. 제 1 관찰은 최대 2 일간의 배양이 달성 되는 크기는 연골 및 광물 화 된 뼈 모두에 대 한 생체 내 뼈 성장에 필적 하는 것 이다 (도 1a, B, D). 더 긴 배양 ?…

Discussion

뼈 ex 생체 배양 방법은 뼈 성장 (28)의 생물학을 평가 하기 위해 몇 시간 동안 사용 되어 왔으며, 뮤 린 긴 뼈에는 거의 적용 되지 않았다. 이미징 기술의 발달로, 생체 내 뼈 배양은 생체 내 조건과 밀접 하 게 유사한 설정에서 실시간으로 뼈 성장을 연구 할 수 있는 매력적인 방법을 제공 합니다. 이 시나리오에서는 긴 뼈의 성장이 생체 내 성장에 필적 하는 조건을 정의 하는 것이 …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는이 프로토콜이 확립 될 때 그녀의 지원 알렉산드라 Joyner 감사 하 고 싶습니다, Edwina 맥 글 린과 레 틴 산을 공유 하기 위한이 청 창. 호주 재생 의학 연구소는 빅토리아와 호주 정부의 주 정부의 보조금에 의해 지원 됩니다.

Materials

5-Ethynyl-2'-deoxyuridine Santa Cruz CAS 61135-33-9
5-Bromo-2′-deoxyuridine Sigma B5002
50mL Conical Centrifuge Tubes Falcon 352070
60 mm TC-treated Center Well Organ Culture Dish, 20/Pack, 500/Case, Sterile Falcon 353037
Adobe Photoshop Adobe CS4
Ascorbic acid Sigma A92902
Base unit for the scope Zeiss 435425-9100-000
Betaglycerophosphate Sigma G9422
Binocular scope Zeiss STEMI-2000
Bovine Serum Albumin (BSA) fraction v Roche/Sigma 10735086001
DigiRetina 500 camera Aunet
Dissection kit Cumper Robbins PFS00034
DMEM Gibco 11960044
DMSO Sigma D8418
Eppendorf 2-mL tubes Eppendorf 0030120094
Ethanol 96% Merk 159010
Forceps Dumont#5 Inox08 Fine Science Tools T05811
Heracell 150 CO2 incubator Thermo Fisher 51026282
Minimum Essential Medium Eagle Sigma M2279
Multiwell 24 well Falcon 353047
Paraformaldehyde Sigma 158127
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122
Plastic pipettes 1mL Sterile Individually wrapped Thermo 273
Syringe filter 0.2 um  Life Sciences PN4612
Terumo syringe 20 mL Terumo DVR-5174
Tretinoin (retinoic acid) Sigma PHR1187-3X
Trinocular scope Aunet AZS400T

References

  1. Long, F., Ornitz, D. M. Development of the endochondral skeleton. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (1), a008334 (2013).
  2. Mackie, E. J., Ahmed, Y. A., Tatarczuch, L., Chen, K. S., Mirams, M. Endochondral ossification: how cartilage is converted into bone in the developing skeleton. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 40 (1), 46-62 (2008).
  3. Goldring, M. B., Tsuchimochi, K., Ijiri, K. The control of chondrogenesis. Journal of Cellular Biochemistry. 97 (1), 33-44 (2006).
  4. Kronenberg, H. M. Developmental regulation of the growth plate. Nature. 423 (6937), 332-336 (2003).
  5. Mackie, E. J., Tatarczuch, L., Mirams, M. The skeleton: a multi-functional complex organ: the growth plate chondrocyte and endochondral ossification. The Journal of Endocrinology. 211 (2), 109-121 (2011).
  6. Maes, C., et al. Osteoblast precursors, but not mature osteoblasts, move into developing and fractured bones along with invading blood vessels. Developmental Cell. 19 (2), 329-344 (2010).
  7. Park, J., et al. Dual pathways to endochondral osteoblasts: a novel chondrocyte-derived osteoprogenitor cell identified in hypertrophic cartilage. Biology Open. 4 (5), 608-621 (2015).
  8. Yang, L., Tsang, K. Y., Tang, H. C., Chan, D., Cheah, K. S. Hypertrophic chondrocytes can become osteoblasts and osteocytes in endochondral bone formation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (33), 12097-12102 (2014).
  9. Zhou, X., et al. Chondrocytes transdifferentiate into osteoblasts in endochondral bone during development, postnatal growth and fracture healing in mice. PLoS Genetics. 10 (12), e1004820 (2014).
  10. Wilsman, N. J., Bernardini, E. S., Leiferman, E., Noonan, K., Farnum, C. E. Age and pattern of the onset of differential growth among growth plates in rats. Journal of Orthopaedic Research: Official Publication of the Orthopaedic Research Society. 26 (11), 1457-1465 (2008).
  11. Cooper, K. L., et al. Multiple phases of chondrocyte enlargement underlie differences in skeletal proportions. Nature. 495 (7441), 375-378 (2013).
  12. Smith, E. L., Rashidi, H., Kanczler, J. M., Shakesheff, K. M., Oreffo, R. O. The effects of 1alpha, 25-dihydroxyvitamin D3 and transforming growth factor-beta3 on bone development in an ex vivo organotypic culture system of embryonic chick femora. PloS One. 10 (4), e0121653 (2015).
  13. Li, Y., Li, A., Junge, J., Bronner, M. Planar cell polarity signaling coordinates oriented cell division and cell rearrangement in clonally expanding growth plate cartilage. eLife. 6, (2017).
  14. Kanczler, J. M., Smith, E. L., Roberts, C. A., Oreffo, R. O. A novel approach for studying the temporal modulation of embryonic skeletal development using organotypic bone cultures and microcomputed tomography. Tissue Engineering. Part C, Methods. 18 (10), 747-760 (2012).
  15. Houston, D. A., Staines, K. A., MacRae, V. E., Farquharson, C. Culture of Murine Embryonic Metatarsals: A Physiological Model of Endochondral Ossification. Journal of Visualized Experiments. (118), (2016).
  16. Abubakar, A. A., Noordin, M. M., Azmi, T. I., Kaka, U., Loqman, M. Y. The use of rats and mice as animal models in ex vivo bone growth and development studies. Bone & Joint Research. 5 (12), 610-618 (2016).
  17. Lui, J. C., et al. Differential aging of growth plate cartilage underlies differences in bone length and thus helps determine skeletal proportions. PLoS Biology. 16 (7), e2005263 (2018).
  18. Agoston, H., et al. C-type natriuretic peptide regulates endochondral bone growth through p38 MAP kinase-dependent and -independent pathways. BMC Developmental Biology. 7, 18 (2007).
  19. Rosello-Diez, A., Madisen, L., Bastide, S., Zeng, H., Joyner, A. L. Cell-nonautonomous local and systemic responses to cell arrest enable long-bone catch-up growth in developing mice. PLoS Biology. 16 (6), e2005086 (2018).
  20. Marino, S., Staines, K. A., Brown, G., Howard-Jones, R. A., Adamczyk, M. Models of ex vivo explant cultures: applications in bone research. BoneKEy Reports. 5, 818 (2016).
  21. Okubo, N., et al. Prolonged bioluminescence monitoring in mouse ex vivo bone culture revealed persistent circadian rhythms in articular cartilages and growth plates. PloS One. 8 (11), e78306 (2013).
  22. Hirota, K., et al. Live imaging analysis of the growth plate in a murine long bone explanted culture system. Scientific Reports. 8 (1), 10332 (2018).
  23. Romereim, S. M., Conoan, N. H., Chen, B., Dudley, A. T. A dynamic cell adhesion surface regulates tissue architecture in growth plate cartilage. Development (Cambridge, England). 141 (10), 2085-2095 (2014).
  24. Kaucka, M., et al. Oriented clonal cell dynamics enables accurate growth and shaping of vertebrate cartilage. eLife. 6, (2017).
  25. Alvarez, J., et al. TGFbeta2 mediates the effects of hedgehog on hypertrophic differentiation and PTHrP expression. Development (Cambridge, England). 129 (8), 1913-1924 (2002).
  26. De Luca, F., et al. Retinoic acid is a potent regulator of growth plate chondrogenesis. Endocrinology. 141 (1), 346-353 (2000).
  27. Stern, T., et al. Isometric Scaling in Developing Long Bones Is Achieved by an Optimal Epiphyseal Growth Balance. PLoS Biology. 13 (8), e1002212 (2015).
  28. Minkin, C., et al. Skeletal development and formation of osteoclast-like cells from in situ progenitors in fetal mouse metatarsals cultured in chemically defined medium. Bone and Mineral. 12 (3), 141-155 (1991).
  29. Erben, R. G. . Handbook of histology methods for bone and cartilage. , 99-117 (2003).
  30. Hu, D. P., et al. Cartilage to bone transformation during fracture healing is coordinated by the invading vasculature and induction of the core pluripotency genes. Development (Cambridge, England). 144 (2), 221-234 (2017).
  31. Fritton, S. P., McLeod, K. J., Rubin, C. T. Quantifying the strain history of bone: spatial uniformity and self-similarity of low-magnitude strains. Journal of Biomechanics. 33 (3), 317-325 (2000).
  32. Duncan, R. L., Turner, C. H. Mechanotransduction and the functional response of bone to mechanical strain. Calcified Tissue International. 57 (5), 344-358 (1995).
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Cite This Article
Uribe, V., Rosello-Diez, A. Culturing and Measuring Fetal and Newborn Murine Long Bones. J. Vis. Exp. (146), e59509, doi:10.3791/59509 (2019).

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