Summary

Utarbeidelse av nøytralt-ladet, pH-responsive polymer nanopartikler for cytosolic siRNA levering

Published: May 02, 2019
doi:

Summary

Metoder for å forberede og karakterisere fysikalsk egenskaper og bioactivity av nøytralt-ladet, pH-responsive siRNA nanopartikler er presentert. Kriterier for vellykkede siRNA-nanomedisiner som størrelse, morfologi, overflate ladning, siRNA-lasting og gendeaktivering diskuteres.

Abstract

Suksessen til siRNA som en målrettet molekylær medisin er avhengig av sin effektive cytosolic levering til celler i vevet i patologi. Klinisk suksess for behandling av tidligere ‘ undruggable ‘ lever sykdoms mål med siRNA har blitt oppnådd. Men effektiv tumor siRNA levering nødvendiggjør ytterligere farmakokinetiske design hensyn, inkludert lang sirkulasjon tid, Evasion av klaring organer (f. eks, lever og nyrer), og tumor penetrasjon og oppbevaring. Her beskriver vi utarbeidelse og in vitro fysikalsk/biologisk karakterisering av polymer nanopartikler designet for effektiv siRNA levering, spesielt til ikke-hepatic vev som svulster. Den siRNA nanopartikler er utarbeidet av elektrostatisk kompleks av siRNA og diblokk kopolymer Poly (etylen glykol-b-[2-(dimetylamino) etanol akrylat-co-butyl AKRYLAT]) (PEG-DB) for å danne polyion komplekser ( polyplexes) der siRNA er sequestered innenfor polyplex kjernen og PEG danner en hydrofile, nøytralt-ladet Corona. Videre DB blokken blir membran-lytisk som blemmer av endolysosomal veien acidify (< pH 6,8), utløser endosomal rømme og cytosolic levering av siRNA. Metoder for å karakterisere de fysikalsk egenskapene til siRNA nanopartikler som størrelse, overflate ladning, partikkel morfologi og siRNA-lasting er beskrevet. Bioactivity av siRNA nanopartikler måles ved hjelp av luciferase som en modell gen i en rask og høy gjennomstrømming gen demping analysen. Tegninger hvilke admission card disse Initial prøver (som PEG-DB-basert polyplexes) er betraktet som passende for oversettelse å prekliniske dyr studier vurderingen leveringen av siRNA å svulst eller annet steder av patologi.

Introduction

Fordi siRNAs hemme oversettelsen av proteiner fra mRNA sekvenser, kan de teoretisk brukes til narkotika alle kjente patologi1,2,3,4,5. Bruken av siRNA i medisin er imidlertid begrenset av den omfattende, fattige farmakokinetiske profilen til siRNA molekyler6,7. Når injisert intravenøst, siRNAs er raskt tømmes gjennom nyrene og/eller degradert av nukleaser8,9. På grunn av sin store størrelse og negative ladning, kan siRNA ikke gå inn i celler eller unnslippe endolysosomal veien for å få tilgang til RNA-indusert demping kompleks (RISC) som ligger i stoffer10,11,12, 13 i år. Dermed har omfattende innsats fokusert på design og implementering av siRNA leveranse strategier14. Dette arbeidet har i stor grad fokusert på utvikling av lipid-og polymer-baserte nanopartikler som pakke siRNA, beskytte den fra klarering og degradering in vivo, og initiere cellulær opptak og endosomal flykte gjennom ionebyttermembraner, kationiske Amin grupper. Mange pre-klinisk suksesser har blitt rapportert og sist, den første kliniske suksessen er rapportert for nanopartikkel-baserte hepatic siRNA levering til behandling arvelig transthyretin-mediert (hATTR) amyloidose15.

Det er mange kreftfremkallende gener som for tiden er “undruggable” av konvensjonelle farmakologi (dvs. små molekyl narkotika), motiverende utformingen av polymer siRNA nanopartikler (si-NPs) for å behandle kreft16. Det finnes imidlertid et eget sett med utformings parametere som må vurderes for ikke-hepatic siRNA-levering. Leveringssystemet må skjerme kationiske ladning av polyplex som forårsaker Agglutinasjon innenfor systemisk sirkulasjon17,18,19. For tumor levering, spesielt, si-np stabilitet er viktig å gi gave lang sirkulasjon og dermed økt akkumulering innen svulster via forbedret permeabilitet og oppbevaring (EPR) effekt20,21. Videre er kontroll over si-NP størrelse viktig siden bare nanopartikler ca 20-200 NM diameter i størrelse utnytte EPR22, og mindre si-NPs (~ 20-50 NM diameter) utstillingen forbedret tumor penetrasjon over større størrelser nanopartikler og mikropartikler23.

For å håndtere disse ekstra design begrensningene for systemisk tumor levering av siRNA etter intravenøs administrering, er det utviklet nøytralt pH-responsiv si-NPs (figur 1)24. Disse si-NPs er pegylert, eller sist, Zwitterionated25, for nøytral overflate ladning og resistens mot absorpsjon av protein og opsonization i sirkulasjon. Siden de ikke kan stole utelukkende på kationiske karakter for å kjøre intracellulære levering, er ekstremt effektiv endosomal å unnslippe avgjørende for å oppnå potent gen-deaktivering. Følgelig er kjernen i disse si-NPs består av en svært endosomolytic kjerne som er inert på ekstracellulære pH (7,4), men som utløses i en Switch-lignende måte i de surgjort forholdene i endolysosomal veien [pH 6,8 (tidlig endosomes)-5,0 ( lysosomer)]. Endelig, en blanding av kationiske og hydrofobe innhold i kjernen av si-NPs gir både elektrostatisk og Van der Waals stabilisering styrker, forbedre stabiliteten i si-NPs i blodet i forhold til bare kationiske systemer.

Integreringen av mange funksjoner i en relativt enkel design er mulig ved hjelp av reversibel tillegg-fragmentering kjeden Transfer (RAFT) kontrollerte polymerisering å produsere polymerer med kompleks arkitektur og presis sammensetning. Å produsere si-NPs med nøytral overflate ladning, pH-respons, og NP stabilitet, er FLÅTEN som brukes til å syntetisere Poly (etylen glykol-b-[2-(dimetylamino) etanol akrylat-co-butyl AKRYLAT]) (PEG-DB; Figur 1a). PEG-DB er elektrostatisk complexed med siRNA, forming si-NPs med en PEG Corona og DB/siRNA kjerne (figur 1B). PEG danner et inert, nøytralt hydrofile lag på si-NP Corona. DB-blokken består av en 50:50 molar ratio på 2-(dimetylamino) etanol akrylat (DMAEMA) og butyl akrylat (BMA). Kationiske DMAEMA elektrostatisk komplekser negativt ladet siRNA. BMA Self-Associates i NP-kjernen av van der Waals interaksjoner, økende NP stabilitet. Sammen, DMAEMA og BMA meddele pH-avhengig lipid bilayer-lytisk oppførsel til DB polymer blokk. Ved ekstracellulære pH er DB-blokken sequestered til si-NP-kjernen og er inert til lipid bilayers. Under Sure forhold, slik som de i endolysosomal veien, ionebyttermembraner DMAEMA innenfor DB blokken Letter Proton svamp effekt, der endosomal bufring fører til osmotisk hevelse og brudd26. I tillegg hydrofobe BMA andeler i DB-blokken aktivt integreres i og lyse lipid bilayers, noe som resulterer i potent endosomolysis. Således, siRNA er complexed med PEG-DB å blankett si-NPs det er nøytralt-ladet og høylig stabile for ekstracellulære pH bortsett fra hvilke avbryte lipid bilayers for syrlig pH, forsikrer cytosolic leveranse av det siRNA payload.

Heri beskrives de eksperimentelle prosedyrene for å produsere si-NPs fra PEG-DB. Metoder for å karakterisere fysikalsk parametre og bioactivity av si-NPs er presentert og diskutert. For å raskt kunne vurdere si-NP-bioactivity, brukes luciferase som modell gen for knockdown studier. Firefly luciferase er proteinet som er ansvarlig for “gløden” av ildfluene27. Følgelig, pattedyrceller transfekterte med Firefly luciferase genet produsere en Puerto Mosquito “glød” som kan fanges opp ved hjelp av en luminometeret å kvantifisere nivåer av luciferase uttrykk. Her bruker vi luciferase å vurdere bioactivity av si-NPs ved å levere siRNA mot luciferase og kvantifisere tilsvarende reduksjon i bioluminesens i luciferase-uttrykker celler i forhold til celler som mottar en forvrengt siRNA.

Protocol

1. klargjøring og karakterisering av si-NPs si-NP Forberedelse Oppløse polymer i 10 mM sitronsyre buffer (pH 4,0) ved 3,33 mg/mL. Polymer kan først oppløses ved 10x konsentrasjon i etanol for å sikre oppløsning.Merk: polymer kan oppløses ved lavere konsentrasjoner, men bruk ved konsentrasjoner over 3,33 mg/mL kan forhindre homogen NP-dannelse. Legg til siRNA (50 μM i di2O) for å resultere i N+:P- forhold på 10. Bland polymer og siRNA løsninger g…

Representative Results

Noen viktige egenskaper ved effektiv si-NPs for in vivo siRNA levering er riktig størrelse (~ 20-200 NM diameter), siRNA emballasje, og gendeaktivering bioactivity. Selv om dette ikke er en uttømmende liste (som omtalt i diskusjonen), bør disse grunnleggende egenskapene bekreftes før du vurderer videre testing av en formulering. Figur 2 illustrerer karakterisering av si-np størrelse og overflat…

Discussion

Si-NPs beskrevet her er dannet av elektrostatisk sammenslutning av anioniske siRNA og kationiske polymerer i polyion komplekser (polyplexes). Elektrostatisk kompleks av siRNA og kationiske DB blokk av PEG-DB polymerer er tilrettelagt ved å blande ved lav pH (4,0). Ved pH 4,0, er DMAEMA svært protonerte, og følgelig DB blokken er svært ladet. Dette sikrer at polymerer oppløses som unimers i løsning i motsetning til forming miceller og at DB komplekser effektivt med siRNA. Deretter justeres pH-verdien til nøytral (p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne er takknemlige for DRS. Craig Duvall og Rebecca Cook for tilgang til data og laboratorie ressurser for å gjennomføre denne forskningen. Forfatterne er takknemlige for Vanderbilt Institute for nanoskala Science and Engineering (VINSE) for tilgang til DLS og TEM (NSF EPS 1004083) instrumenter. Forfatterne er takknemlige for National Science Foundation for å støtte Graduate Research Fellowship Program (NSF # 1445197). Forfatterne er takknemlige for National Institutes of Health for økonomisk støtte (NIH R01 EB019409). Forfatterne er takknemlige for Department of Defense Congressionally regissert Medical Research program for økonomisk støtte (DOD CDMRP OR130302).

Materials

0.45 mm pore-size syringe filters Thermo Fisher Scientific F25133 17 mm diameter, PTFE membrane
0-14 pH test strips Millipore Sigma P4786
10x TAE buffer Thermo Fisher Scientific/Invitrogen AM9869
6-7.7 pH test strips Millipore Sigma P3536
96-well black walled plates Corning 3603 Tissue-culture treated
Agarose Powder Thermo Fisher Scientific/Invitrogen 16500
Citric acid monohydrate Millipore Sigma C1909
dibasic sodium phosphate dihydrate Millipore Sigma 71643
D-luciferin Thermo Fisher Scientific 88294 Monopotassium Salt
DMEM Gibco 11995065 High glucose and pyruvate
Ethanol Millipore Sigma 459836
ethidium bromide Thermo Fisher Scientific/Invitrogen 15585011
FBS Gibco 26140079
loading dye Thermo Fisher Scientific/Invitrogen R0611
Luciferase siRNA IDT N/A Antisense Strand Sequense: GAGGAGUUCAUUAUCAGUGCAAUUGUU Sense Strand Sequense: CAAUUGCACUGAUAAUGAACUCCT*C* *DNA bases
MDA-MB-231 / Luciferase (Bsd) stable cells GenTarget Inc SC059-Bsd Luciferase-expressing cells sued to assess si-NP bioactivity
monobasic sodium phosphate monohydrate Millipore Sigma S9638
Scarmbled siRNA IDT N/A Antisense Strand Sequense: AUACGCGUAUUAUACGCGAUUAACGAC Sense Strand Sequense: CGUUAAUCGCGUAUAAUACGCGUA*T* *DNA bases
square polystyrene cuvettes Fisher Scientific 14-955-129 4.5 mL capacity
TEM grids Ted Pella, Inc. 1GC50 PELCO Center-Marked Grids, 50 mesh, 3.0mm O.D., Copper
Trisodium citrate dihydrate Millipore Sigma S1804
uranyl acetate Polysciences, Inc. 21447-25

References

  1. Fire, A., et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).
  2. Elbashir, S. M., et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells. Nature. 411 (6836), 494-498 (2001).
  3. Soutschek, J., et al. Therapeutic silencing of an endogenous gene by systemic administration of modified siRNAs. Nature. 432 (7014), 173-178 (2004).
  4. Hannon, G. J. RNA interference. Nature. 418, 244 (2002).
  5. Dykxhoorn, D. M., Palliser, D., Lieberman, J. The silent treatment: siRNAs as small molecule drugs. Gene Therapy. 13 (6), 541-552 (2006).
  6. Wittrup, A., Lieberman, J. Knocking down disease: a progress report on siRNA therapeutics. Nature Reviews Genetics. 16 (9), 543 (2015).
  7. Li, H. E., Nelson, C. C., Evans, B., Duvall, C. Delivery of Intracellular-Acting Biologics in Pro-Apoptotic Therapies. Current Pharmaceutical Design. 17 (3), 293-319 (2011).
  8. Bartlett, D. W., Davis, M. E. Effect of siRNA nuclease stability on the in vitro and in vivo kinetics of siRNA-mediated gene silencing. Biotechnology and Bioengineering. 97 (4), 909-921 (2007).
  9. Zuckerman, J. E., Choi, C. H., Han, H., Davis, M. E. Polycation-siRNA nanoparticles can disassemble at the kidney glomerular basement membrane. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 109 (8), 3137-3142 (2012).
  10. Dominska, M., Dykxhoorn, D. M. Breaking down the barriers: siRNA delivery and endosome escape. Journal of Cell Science. 123 (Pt 8), 1183-1189 (2010).
  11. Gilleron, J., et al. Image-based analysis of lipid nanoparticle–mediated siRNA delivery, intracellular trafficking and endosomal escape. Nature Biotechnology. 31 (7), 638 (2013).
  12. Sahay, G., et al. Efficiency of siRNA delivery by lipid nanoparticles is limited by endocytic recycling. Nature Biotechnology. 31 (7), 653-658 (2013).
  13. Wittrup, A., et al. Visualizing lipid-formulated siRNA release from endosomes and target gene knockdown. Nature Biotechnology. 33 (8), 870-876 (2015).
  14. Kanasty, R., Dorkin, J. R., Vegas, A., Anderson, D. Delivery materials for siRNA therapeutics. Nature Materials. 12 (11), 967-977 (2013).
  15. Adams, D., et al. Patisiran, an RNAi Therapeutic, for Hereditary Transthyretin Amyloidosis. New England Journal of Medicine. 379 (1), 11-21 (2018).
  16. Dang, C. V., Reddy, E. P., Shokat, K. M., Soucek, L. Drugging the ‘undruggable’ cancer targets. Nature Reviews Cancer. 17 (8), 502 (2017).
  17. Alexis, F., Pridgen, E., Molnar, L. K., Farokhzad, O. C. Factors affecting the clearance and biodistribution of polymeric nanoparticles. Molecular Pharmaceutics. 5 (4), 505-515 (2008).
  18. Verbaan, F. J., et al. The fate of poly(2-dimethyl amino ethyl)methacrylate-based polyplexes after intravenous administration. International Journal of Pharmaceutics. 214 (1-2), 99-101 (2001).
  19. Lv, H., Zhang, S., Wang, B., Cui, S., Yan, J. Toxicity of cationic lipids and cationic polymers in gene delivery. Journal of Controlled Release. 114 (1), 100-109 (2006).
  20. Shi, J., Kantoff, P. W., Wooster, R., Farokhzad, O. C. Cancer nanomedicine: progress, challenges and opportunities. Nature Reviews Cancer. 17 (1), 20 (2016).
  21. Torchilin, V. Tumor delivery of macromolecular drugs based on the EPR effect. Advanced Drug Delivery Reviews. 63 (3), 131-135 (2011).
  22. Duncan, R. The dawning era of polymer therapeutics. Nature Reviews Drug Discovery. 2 (5), 347 (2003).
  23. Tang, L., et al. Investigating the optimal size of anticancer nanomedicine. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 111 (43), 15344-15349 (2014).
  24. Nelson, C. E., et al. Balancing Cationic and Hydrophobic Content of PEGylated siRNA Polyplexes Enhances Endosome Escape, Stability, Blood Circulation Time, and Bioactivity in vivo. ACS Nano. 7 (10), 8870-8880 (2013).
  25. Jackson, M. A., et al. Zwitterionic Nanocarrier Surface Chemistry Improves siRNA Tumor Delivery and Silencing Activity Relative to Polyethylene Glycol. ACS Nano. , (2017).
  26. Akinc, A., Thomas, M., Klibanov, A. M., Langer, R. Exploring polyethylenimine-mediated DNA transfection and the proton sponge hypothesis. The Journal of Gene Medicine. 7 (5), 657-663 (2005).
  27. de Wet, J. R., Wood, K. V., DeLuca, M., Helinski, D. R., Subramani, S. Firefly luciferase gene: structure and expression in mammalian cells. Molecular and Cellular Biology. 7 (2), 725-737 (1987).
  28. Aggarwal, P., Hall, J. B., McLeland, C. B., Dobrovolskaia, M. A., McNeil, S. E. Nanoparticle interaction with plasma proteins as it relates to particle biodistribution, biocompatibility and therapeutic efficacy. Advanced Drug Delivery Reviews. 61 (6), 428-437 (2009).
  29. Geng, Y., et al. Shape effects of filaments versus spherical particles in flow and drug delivery. Nature Nanotechnology. 2 (4), 249 (2007).
  30. Chauhan, V. P., et al. Fluorescent nanorods and nanospheres for real-time in vivo probing of nanoparticle shape-dependent tumor penetration. Angewandte Chemie International Edition. 50 (48), 11417-11420 (2011).
  31. Chu, K. S., et al. Plasma, tumor and tissue pharmacokinetics of Docetaxel delivered via nanoparticles of different sizes and shapes in mice bearing SKOV-3 human ovarian carcinoma xenograft. Nanomedicine. 9 (5), 686-693 (2013).
  32. Werfel, T. A., et al. Selective mTORC2 Inhibitor Therapeutically Blocks Breast Cancer Cell Growth and Survival. Cancer Research. 78 (7), 1845-1858 (2018).
  33. Sarett, S. M., et al. Lipophilic siRNA targets albumin in situ and promotes bioavailability, tumor penetration, and carrier-free gene silencing. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 114 (32), E6490-E6497 (2017).
  34. Williams, M. M., et al. Intrinsic apoptotic pathway activation increases response to anti-estrogens in luminal breast cancers. Cell Death and Disease. 9 (2), 21 (2018).
  35. Evans, B. C., et al. Ex Vivo Red Blood Cell Hemolysis Assay for the Evaluation of pH-responsive Endosomolytic Agents for Cytosolic Delivery of Biomacromolecular Drugs. Journal of Visualized Experiments. (73), e50166 (2013).
  36. Werfel, T., et al. Combinatorial Optimization of PEG Architecture and Hydrophobic Content Improves siRNA Polyplex Stability, Pharmacokinetics, and Potency In vivo. Journal of Controlled Release. , (2017).
  37. Kilchrist, K. V., Evans, B. C., Brophy, C. M., Duvall, C. L. Mechanism of Enhanced Cellular Uptake and Cytosolic Retention of MK2 Inhibitory Peptide Nano-polyplexes. Cellular and Molecular Bioengineering. 9 (3), 368-381 (2016).
  38. Kilchrist, K. V., et al. Gal8 Visualization of Endosome Disruption Predicts Carrier-Mediated Biologic Drug Intracellular Bioavailability. ACS Nano. , (2019).
check_url/59549?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hendershot, J., Smith, A. E., Werfel, T. A. Preparation of Neutrally-charged, pH-responsive Polymeric Nanoparticles for Cytosolic siRNA Delivery. J. Vis. Exp. (147), e59549, doi:10.3791/59549 (2019).

View Video