Summary

אנגיוגרפיה פלואורסצנטית עבור הערכה של מפרצת Perfusion ועורק ההורה בתוך החולדה מפרצת הארנב במודלים

Published: July 24, 2019
doi:

Summary

אנו מציגים פרוטוקול כדי להעריך ביעילות את הפרזיה ומפרצת של כלי הקיבול של מפרצת sidewall בחולדות וארנבים, באמצעות fluorescein מבוססי וידאו אנגיוגרפיה וידיאו (FVA). עם ערך ניבוי חיובי של 92.6%, היא שיטה פשוטה אך יעילה מאוד וחסכונית ללא ציוד מיוחד נדרש.

Abstract

טיפול במפרצת במוח מתמקד בהשגת חסימה מלאה, כמו גם שימור זרימת הדם בעורק האב. Fluorescein נתרן ו indocyanine ירוק משמשים כדי לאפשר התבוננות של זרימת הדם ואת מצב זלוף הספינה, בהתאמה. מטרת מחקר זה היא להחיל FVA כדי לוודא זרימת הדם בזמן אמת, מעמד של הספינה וחסימה של האניוסיאמים לאחר האינדוקציה של מחלת העור הצדדית בארנבים וחולדות, כמו גם כדי לאמת את ההליך במינים אלה.

עשרים מילישניות שנוצרו ב -10 ארנבים על ידי הdecellularized נרתיק של כלי קיבול עורקי בעורק הראשי של ארנב תורם. בנוסף, 48 שנוצרו בשנת 48 חולדות. במהלך המעקב בחודש אחד לאחר היצירה, מורכב העורק הראשי/מפרצת היה גזור FVA התבצע באמצעות פלואורוסקופים ורידי (10%, 1 מ ל) הזרקה באמצעות צנתור וריד האוזן בארנבים והעורק הירך ורידים בחולדות. לאחר מכן, היתה הערכה לאחר מכן.

מאקרו, 14 מתוך 16 היורו בארנבים הצביעו על כך שאין שרידים של עורק הורים עם מנורות שאינן מסומנות באופן מוחלט, עם זאת 11 (79%) זוהו על ידי FVA. ארבעה מופרצות לא נכללו עקב בעיות טכניות. בחולדות, הפרזיה שיורית מפרצת הייתה. מאקרופית ב -25 מתוך 48 מקרים מתוך 23 ללא ראיות מאקרוסקופיות של הפרזיה, FVA אישר את השכיחות של 22 היורו (96%). לא היו אירועים לוואי הקשורים FVA. Fluorescein ישימה בקלות, אין צורך בציוד מיוחד. זוהי שיטה בטוחה ויעילה ביותר להערכת שלמות עורק העורקים ומפרצת/שיורית בהגדרה ניסיונית עם ארנבים וחולדות. FVA באמצעות fluorescein כסוכן ניגודיות מופיע להיות יעיל בשליטה על הפטנטיות של אניומיאמים ואת הספינה הבסיסית והוא יכול אפילו להיות מותאם לעקוף את הניתוח.

Introduction

ושלמות עורק ההורה היא. בעלת חשיבות עליונה בניתוח מפרצת קיימות מספר אפשרויות לאישור הדלקת עורקים של עורק ומפרצת, כגון סונגרפיה דופלר, אנגיוגרפיה מוחית (DSA), מחשב טומוגרפיה ממוחשבת (CTA) או אנגיוגרפיה מגנטית (MRA)1, 2. עם זאת, אלו שיטות יקרות וגוזלת זמן שלעיתים קרובות אינן זמינות בסביבה מעבדה. יתר על כן, הם עשויים להיות תופעות לוואי רלוונטיות כגון חשיפה לקרינה או צורך הרגעה נוספת של בעלי חיים ניסיוניים כדי למנוע פריט התנועה.

עם מספר גדל והולך של מכשירים אנדוכלי חדש המתעוררים, יש צורך עוקב עבור בדיקות טרום קליני של מכשירים כאלה. עם זאת, מחקרים אלה מסתמכים לעתים קרובות על ניתוח שלאחר המוות (למשל, פתולוגיה מאקרו והיסטולוגיה) וחוסר מידע על perfusion דינמי. יתרה מזאת, עבור החוקר הוא עשוי להיות חיוני כדי לקבל מידע מיידי ואמין במהלך הליך כירורגי ניסיוני. אנגיוגרפיה פלואורסצנטית היא חסכונית וקל לבצע ויזואליזציה טכניקה1,3,4.

ככזה, indocyanine ירוק (icg) וידאו אנגיוגרפיה משמש לעתים קרובות בהליכים נוירוכירורגית קלינית והוא למד בהרחבה5,6. Fluorescein וידאו אנגיוגרפיה (FVA) היא טכניקה חלופית, עם יתרון נוסף של יצירת אות פלואורסצנטית כי הוא בטווח אורך הגל של החזון האנושי, ולכן ניתן לראות על ידי העין בלתי ללא מצלמה מורחבת הספקטרום אינפרא אדום 7. fluorescein וידאו אנגיוגרפיה משמש פחות לעתים קרובות בניתוח קליני ודוחות על fva בהגדרות ניסיוני נדירים1,4.

מטרת דו ח זה היא להדגים את הכדאיות ואת היקף היישומים של FVA ב החולדה והארנב מחקר הפרה-קלינית מראש.

Protocol

המכרסמים שוכנו במתקן לטיפול בבעלי חיים ובניסויים נבדקו ואושרו על-ידי הוועדה לרווחת בעלי חיים באוניברסיטת ברן, שוויץ (להיות 108/16) ו (BE65/16). כל החיות שמרו על דיאטת מעבדה סטנדרטית עם גישה חופשית למזון ולמים. כל הניסויים בבעלי חיים נערכו תחת שיקול קפדני של 3Rs (החלפה, הפחתה ועידון). עשר נשים שפנים ל?…

Representative Results

קצב הלב ולחץ הדם. היו מנוטרים במהלך הניתוח שיעור לב מרושע היה 193/דקות בארנבים ו-196/מינימום בחולדות. משקל הגוף של הארנבים נעו 3.05-4.18 ק ג, והעכברושים שקלו 335-690 g. הצלחנו לבצע את FVA בשמונה מתוך עשרה ארנבים (איור 1). ארבעה בדיקות מפרצת בשני ארנבים לא נרשמו עם המצלמה עקב ?…

Discussion

FVA היא שיטה מבטיחה מסובכת כדי לבחון את כלי מכרסמים ניתן לבצע עם מכשירים מסחריים וציוד מחוץ למדף. FVA יכול להיות מיושם במהלך כל ניתוח שבו הערכה תוך-אופרטיבית של שלמות כלי נדרש כמו כלי צריך הניתוח המתאים הראשון.

מחברים הזרקת ורידים העדיפו הזרקה העורקים עקב הסיכון הנמוך של אירוע?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר זה היה נתמך בחלקו על ידי מענק מחקר של Kantonsspital Aarau, שוויץ.

Materials

For rabbits
Aluminium foil
Animal shaver
Black tape
Blue filter Thorlabs MF475-35
Body warm plate
Camera Sony NEX-5R
Catheter 22G Vasofix Safety
Disinfictant
Fluorescein sodium Fluorescein Faure 10%
Glas plate
Green filter Thorlabs MF539-43
Incontinence pad
Infusion pump Perfusor Secura
Ketamine hydrochloride any generic products
Needle 25G
Oxygen
Ringer's Solution
Sterile sheets
Surgical instruments micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor
Surgical microscope OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany
Syringe 2ml, 5ml, 50ml
Tape
Three-way-stopcock
Torch light
Xylazin any generic products
For rats
Aluminium foil
Animal shaver
Black tape
Blue filter Thorlabs MF475-35
Body warm plate
Camera Sony NEX-5R
Disinfictant
Fluorescein sodium Fluorescein Faure 10%
Green filter Thorlabs MF539-43
Incontinence pad
Isoflurane
Ketamine hydrochloride any generic products
Medetomidine hydrochloride any generic products
Needle 25G
Oxygen
Plate
Ringer's Solution
Sterile sheets
Surgical instruments micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor
Surgical microscope OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany
Syringe 2ml, 5ml
Tape
Torch light

References

  1. Kakucs, C., Florian, I. A., Ungureanu, G., Florian, I. S. Fluorescein Angiography in Intracranial Aneurysm Surgery: A Helpful Method to Evaluate the Security of Clipping and Observe Blood Flow. World Neurosurgery. 105, 406-411 (2017).
  2. Ajiboye, N., Chalouhi, N., Starke, R. M., Zanaty, M., Bell, R. Unruptured Cerebral Aneurysms: Evaluation and Management. ScientificWorldJournal. 2015, 954954 (2015).
  3. Suzuki, K., et al. Confirmation of blood flow in perforating arteries using fluorescein cerebral angiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 107 (1), 68-73 (2007).
  4. Gruter, B. E., et al. Fluorescence Video Angiography for Evaluation of Dynamic Perfusion Status in an Aneurysm Preclinical Experimental Setting. Operative Neurosurgery. , (2019).
  5. Raabe, A., et al. Prospective evaluation of surgical microscope-integrated intraoperative near-infrared indocyanine green videoangiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 103 (6), 982-989 (2005).
  6. Riva, M., Amin-Hanjani, S., Giussani, C., De Witte, O., Bruneau, M. Indocyanine Green Videoangiography in Aneurysm Surgery: Systematic Review and Meta-Analysis. Neurosurgery. , (2017).
  7. Kuroda, K., et al. Intra-arterial injection fluorescein videoangiography in aneurysm surgery. Neurosurgery. 72, 141-150 (2013).
  8. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving Bioscience Research Reporting: The ARRIVE Guidelines for Reporting Animal Research. PLOS Biology. 8 (6), 1000412 (2010).
  9. Marbacher, S., et al. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Visualized Experiments. (92), e51071 (2014).
  10. Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. American Journal of Neuroradiology. 32 (4), 772-777 (2011).
  11. Shurey, S., et al. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Archives of Plastic Surgery. 41 (3), 201-208 (2014).
  12. Foster, S. D., Lyons, M. S., Runyan, C. M., Otten, E. J. A mimic of soft tissue infection: intra-arterial injection drug use producing hand swelling and digital ischemia. World Journal of Emergency Medicine. 6 (3), 233-236 (2015).
  13. Flower, R. W. Injection technique for indocyanine green and sodium fluorescein dye angiography of the eye. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 12 (12), 881-895 (1973).
  14. Yoshioka, H., et al. Advantage of microscope integrated for both indocyanine green and fluorescein videoangiography on aneurysmal surgery: case report. Neurologia medico-chirurgica (Tokyo). 54 (3), 192-195 (2014).
  15. Ichikawa, T., et al. Development of and Clinical Experience with a Simple Device for Performing Intraoperative Fluorescein Fluorescence Cerebral Angiography: Technical Notes. Neurologia medico-chirurgica. 56 (3), 141-149 (2016).
  16. Alander, J. T., et al. A review of indocyanine green fluorescent imaging in surgery. International Journal of Biomedical Imaging. 2012, 940585 (2012).
  17. Lane, B., Bohnstedt, B. N., Cohen-Gadol, A. A. A prospective comparative study of microscope-integrated intraoperative fluorescein and indocyanine videoangiography for clip ligation of complex cerebral aneurysms. Journal of Neurosurgery. 122 (3), 618-626 (2015).
  18. Blair, N. P., Evans, M. A., Lesar, T. S., Zeimer, R. C. Fluorescein and fluorescein glucuronide pharmacokinetics after intravenous injection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 27 (7), 1107-1114 (1986).
  19. Hillmann, D., et al. In vivo optical imaging of physiological responses to photostimulation in human photoreceptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (46), 13138-13143 (2016).
  20. Golby, A. J. . Image-Guided Neurosurgery. , (2015).
check_url/59782?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Strange, F., Sivanrupan, S., Gruter, B. E., Rey, J., Taeschler, D., Fandino, J., Marbacher, S. Fluorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm Models. J. Vis. Exp. (149), e59782, doi:10.3791/59782 (2019).

View Video