Summary

Un modèle cryo-blessure pour étudier l'infarctus du myocarde chez la souris

Published: September 19, 2019
doi:

Summary

Cet article démontre un modèle pour étudier le remodelage cardiaque après cryoinjury myocardique chez les souris.

Abstract

L’utilisation de modèles animaux est essentielle pour développer de nouvelles stratégies thérapeutiques pour le syndrome coronarien aigu et ses complications. Dans cet article, nous démontrons un modèle d’infarctus de cryoblessure de murine qui génère des tailles précises d’infarctus avec la reproductibilité et la replicabilité élevées. En bref, après l’intubation et la sénotomie de l’animal, le cœur est soulevé du thorax. La sonde d’un système portatif de livraison d’azote liquide est appliquée sur la paroi myocardique pour induire la cryoblessure. La fonction ventriculaire altérée et la conduction électrique peuvent être surveillées avec l’échocardiographie ou la cartographie optique. Le remodelage myocardique transmural de la zone infarctus est caractérisé par le dépôt de collagène et la perte des cardiomyocytes. Comparativement à d’autres modèles (p. ex., la ligature laLaD), ce modèle utilise un système portatif de distribution d’azote liquide pour générer des infarctus plus uniformes.

Introduction

Le syndrome coronarien aigu (SCA) est la principale cause de décès dans le monde occidental1,2. L’occlusion aigue des artères coronaires mène à l’activation de la cascade ischémique et de la nécrose du tissu cardiaque affecté3. Le myocarde endommagé est progressivement remplacé par le tissu cicatriciel non contractile, qui se manifeste cliniquement comme une insuffisance cardiaque4,5. Malgré les progrès récents dans le traitement de l’ACS, la prévalence de l’ACS et de l’insuffisance cardiaque liée à l’ACS est en hausse, et les options thérapeutiques sont limitées6,7. Par conséquent, le développement de modèles animaux pour étudier l’ACS et ses complications est d’un immense intérêt.

À ce jour, le modèle animal le plus largement utilisé pour étudier le remodelage myocardique induit par l’ACS et l’ACS est la ligature de l’artère coronaire descendante gauche (LAD). La lignation de la LAD mène à l’ischémie aigue du myocarde, semblable au tissu myocardique humain pendant ACS.  Cependant, les tailles incohérentes d’infarctus restent le talon d’Achille de la ligature de LAD. La variation chirurgicale et la variabilité anatomique de la LAD conduisent à des tailles infarctus incohérentes et entravent la reproductibilité et la reproductibilité de cette procédure8,9,10. En outre, la ligature de LAD a une mortalité intra- et post-chirurgicale élevée. Malgré les efforts récents pour améliorer la reproductibilité et réduire la mortalité11,12, un grand nombre d’animaux sont encore nécessaires pour évaluer correctement les thérapies anti-remodelage.

D’autres modèles d’ACS ont été proposés et étudiés au cours des dernières années, y compris la radiofréquence13, thermique14 ou les blessures cryogéniques15,16,17,18. Les méthodes actuelles de cryo-blessure appliquent une tige de métal pré-refroidie dans l’azote liquide pour endommager le tissu cardiaque du sujet15,16. Cependant, cette procédure doit être répétée plusieurs fois pour générer une taille infarctus suffisante. En raison de la conductivité élevée et de la faible capacité de chaleur de la tige par rapport au tissu, la sonde se réchauffe rapidement, et le tissu est refroidi (et donc infarctus) hétérogènement. Pour surmonter ces limitations, nous décrivons ici un modèle de cryoinfarction utilisant un système portatif de livraison d’azote liquide. Ce modèle est reproductible, facile à exécuter et peut être établi rapidement et de manière fiable. Une lésion infarctus transmurale reproductible indépendante de l’anatomie coronaire est produite, qui mène par la suite à l’échec cardiaque. Cette méthode est particulièrement appropriée pour étudier le processus de remodelage pour l’évaluation de nouvelles stratégies pharmacologiques thérapeutiques et basées sur l’ingénierie tissulaire.

Protocol

Les animaux ont reçu des soins humains conformément au Guide des principes des animaux de laboratoire, préparé par l’Institut des ressources animales de laboratoire et publié par les National Institutes of Health. Tous les protocoles sur les animaux ont été approuvés par l’autorité locale responsable (University of California San Francisco (UCSF) Institutional Animal Care and Use Committee). 1. Soins aux animaux Obtenir des souris à l’âge de 14 semaines pesant environ 27 g…

Representative Results

Le modèle d’infarctus de cryomutilation est approprié pour étudier ACS et ses complications. De faibles taux de mortalité et un rétablissement postchirurgical efficace sont observés dans ce modèle. Les dommages myocardiques induits de cryoblessure mènent à la fonction cardiaque réduite, au découplage électrique, et au remodelage transmural. L’échocardiographie peut être utilisée pour surveiller la fonction cardiaque non invasive in vivo. Dans les cœurs cryo-blessés, l’échocar…

Discussion

Cet article décrit un modèle de cryomutilation de souris pour étudier ACS et les options pharmacologiques et thérapeutiques connexes.

L’étape la plus cruciale est l’application de la cryosonde sur le tissu cardiaque. La durée du contact doit être étroitement contrôlée afin d’obtenir la taille optimale de l’infarctus et de garantir des résultats reproductibles. Un refroidissement prolongé du myocarde entraînera des infarctus surdimensionnés ou une perforation ventriculaire. En rev…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Christiane Pahrmann pour son assistance technique. D.W. a été soutenu par la Fondation Max Kade. T.D. a reçu des subventions de la Fondation Else Kr’ner (2012-EKES.04) et de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DE2133/2-1). S. S. a reçu des subventions de recherche de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG; SCHR992/3- 1, SCHR992/4-1).

Materials

10 ml Syringe Thermo Scientific 03-377-23
5-0 prolene suture Ethicon EH7229H
6-0 prolene suture Ethicon 8706H
8-0 Ethilon suture Ethicon 2808G
Absorption Spears Fine Science Tools 18105-01
BALB/c The Jackson Laboratory Stock number 000651
Bepanthen Eye and Nose ointment Bayer 1578675 Eye ointment
Betadine Solution Betadine Purdue Pharma NDC:67618-152
Blunt Forceps Fine Science Tools 18025-10
Buprenex Reckitt Benckiser NDC Codes: 12496-0757-1, 12496-0757-5 Buprenorphine
Cryoprobe 3mm Brymill Cryogenic Systems Cry-AC-3 B-800
Ethanol 70% Th. Geyer 2270
Forceps curved S&T 00284
Forceps fine Fine Science Tools 11251-20
Forceps standard Fine Science Tools 11023-10
Gross Anatomy Probe Fine Science Tools 10088-15
Hair clipper WAHL 8786-451A ARCO SE
High temperature cautery kit Bovie 18010-00
ISOFLURANE Henry Schein Animal Health 029405
IV Catheter 20G B. Braun 603028
Mini-Goldstein Retractor Fine Science Tools 17002-02
NaCl 0.9% B.Braun PZN 06063042          Art. Nr.: 3570160 saline
Needle holder Fine Science Tools 12075-14
Needle Holder, Curved Harvard Apparatus 72-0146
Novaminsulfon Ratiopharm PZN 03530402 Metamizole
Operating Board  Braintree Scientific 39OP
Replaceable Fine Tip Bovie H101
Scissors Fine Science Tools 14028-10
Small Animal Ventilator Kent Scientific RV-01
Spring Scissors – Angled to Side Fine Science Tools 15006-09
Surgical microscope Leica  M651
Transpore Surgical Tape 3M 1527-1
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15400-12
Vaporizer  Kent Scientific VetFlo-1205S

References

  1. Writing Group. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 38-360 (2016).
  2. de Alencar Neto, J. N. Morphine, Oxygen, Nitrates, and Mortality Reducing Pharmacological Treatment for Acute Coronary Syndrome: An Evidence-based Review. Cureus. 10 (1), 2114 (2018).
  3. Detry, J. M. The pathophysiology of myocardial ischaemia. European Heart Journal. 17, 48-52 (1996).
  4. Ertl, G., Frantz, S. Healing after myocardial infarction. Cardiovascular Research. 66 (1), 22-32 (2005).
  5. Jugdutt, B. I. Ventricular remodeling after infarction and the extracellular collagen matrix: when is enough enough. Circulation. 108 (11), 1395-1403 (2003).
  6. Velagaleti, R. S., Vasan, R. S. Heart failure in the twenty-first century: is it a coronary artery disease or hypertension problem. Cardiology Clinics. 25 (4), 487-495 (2007).
  7. Benjamin, E. J., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 135 (10), 146-603 (2017).
  8. Morrissey, P. J., et al. A novel method of standardized myocardial infarction in aged rabbits. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 312 (5), 959-967 (2017).
  9. Degabriele, N. M., et al. Critical appraisal of the mouse model of myocardial infarction. Experimental Physiology. 89 (4), 497-505 (2004).
  10. Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Fish, K., Hajjar, R. J. Variability in coronary artery anatomy affects consistency of cardiac damage after myocardial infarction in mice. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 313 (2), 275-282 (2017).
  11. Reichert, K., et al. Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction. Journal of Visualized Experiments : JoVE. (122), e55353 (2017).
  12. Kim, S. C., et al. A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion. Journal of Visualized Experiments : JoVE. (65), e3896 (2012).
  13. Antonio, E. L., et al. Left ventricle radio-frequency ablation in the rat: a new model of heart failure due to myocardial infarction homogeneous in size and low in mortality. J Card Fail. 15 (6), 540-548 (2009).
  14. Ovsepyan, A. A., et al. Modeling myocardial infarction in mice: methodology, monitoring, pathomorphology. Acta Naturae. 3 (1), 107-115 (2011).
  15. Ciulla, M. M., et al. Left ventricular remodeling after experimental myocardial cryoinjury in rats. Journal of Surgical Research. 116 (1), 91-97 (2004).
  16. Grisel, P., et al. The MRL mouse repairs both cryogenic and ischemic myocardial infarcts with scar. Cardiovascular Pathology. 17 (1), 14-22 (2008).
  17. Duerr, G. D., et al. Comparison of myocardial remodeling between cryoinfarction and reperfused infarction in mice. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 961298 (2011).
  18. Ma, N., et al. Intramyocardial delivery of human CD133+ cells in a SCID mouse cryoinjury model: Bone marrow vs. cord blood-derived cells. Cardiovascular Research. 71 (1), 158-169 (2006).
  19. Takagawa, J., et al. Myocardial infarct size measurement in the mouse chronic infarction model: comparison of area- and length-based approaches. Journal of Applied Physiology (1985). 102 (6), 2104-2111 (2007).
  20. van den Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: a comparison with coronary artery ligation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).
check_url/59958?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wang, D., Tediashvili, G., Hu, X., Gravina, A., Marcus, S. G., Zhang, H., Olgin, J. E., Deuse, T., Schrepfer, S. A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse. J. Vis. Exp. (151), e59958, doi:10.3791/59958 (2019).

View Video