Summary

Måling av avling motilitet og mat passaging i Drosophila

Published: May 09, 2020
doi:

Summary

Målet med denne protokollen er å måle avlingssammentrekning og kvantifisere matdistribusjon i Drosophila tarmen.

Abstract

De fleste dyr bruker mage-tarmkanalen (GI) til å fordøye mat. Bevegelsen av den inntatte maten i GI-kanalen er avgjørende for næringsabsorpsjon. Uorden GI motilitet og gastrisk tømming forårsake flere sykdommer og symptomer. Som en kraftig genetisk modell organisme, Drosophila kan brukes i GI motility forskning. Drosophila-avlingen er et organ som trekker seg sammen og flytter mat inn i midten for videre fordøyelse, funksjonelt lik en pattedyrmage. Presentert er en protokoll for å studere Drosophila avling motilitet ved hjelp av enkle måleverktøy. En metode for å telle avlingssammentrekninger for å evaluere avlingsmotilitet og en metode for å oppdage fordelingen av matfarget blått mellom avlingen og tarmen ved hjelp av et spektrofotometer for å undersøke effekten av avlingen på matpassaging er beskrevet. Metoden ble brukt til å oppdage forskjellen i avlingsmotilitet mellom kontroll og nprl2 muterte fluer. Denne protokollen er både kostnadseffektiv og svært følsom for avlingsmotilitet.

Introduction

De fleste dyr har et fordøyelsesrør kalt mage-tarmkanalen (GI) for å absorbere energi og næringsstoffer fra miljøet. Den menneskelige GI-kanalen består av fire deler: spiserøret, magen, tynntarmen og tykktarmen (kolon). Matpassasje fra magen til tarmen er avgjørende for næringsabsorpsjon. Noen effektorer, som aldring, giftige stoffer og infeksjon, forårsaker uorden GI-kanalmotilitet og gastrisk tømming, som er relatert til noen sykdommer og deres symptomer som dyspepsi, gastroøsofageal reflukssykdom og forstoppelse1.

Fruktfluen (Drosophila melanogaster) er et mye brukt modelldyr i biomedisinsk forskning på grunn av sin enkle genetiske manipulasjon. Viktigere, ca 77% av gener forbundet med menneskelig sykdom har en homolog i Drosophila2. Forskning ved hjelp av Drosophila har gjort enorme fremskritt i vår forståelse av mange sykdomsmekanismer. Som en kraftig genetisk modell organisme, Drosophila er mye brukt i GI tract forskning3. Drosophila har en enklere fordøyelseskanal, som er delt inn i tre diskrete domener: foregut, midgut og hindgut4. Avlingen, en del av foredelen, er en poselignende struktur som fungerer som et sted for inntatt matlagring. Midgut er et langt rør og fungerer som stedet for mat fordøyelse og næringsabsorpsjon gjennom epitellaget, som består av absorptive enterocytes (ECs) og sekretoriske enteroendokrine (EE) celler5. Interessant, magen funksjonen i Drosophila er delt inn i to deler: avlingen fungerer som mat lagring og kobbercelleregionen (CCR) er en svært sur region med en pH < 36. I Drosophilaflyttes den inntatte maten først til avlingen og deretter pumpes inn i midgut7. Dermed spiller avlingen en kritisk rolle i matpassaging. Innhyllet av viscerale muskler og bestående av et komplekst utvalg av ventiler og sphincters, fortsetter avlingen å trekke seg sammen og flytte mat inn i midtgut for videre fordøyelse.

Denne protokollen gjør det mulig for påvisning av matbevegelse fra avlingen til midgut i Drosophila. Crop sammentrekning evalueres ved å telle avling sammentrekning frekvens. I tillegg undersøkes effekten av avlingen på matpassaging ved å oppdage matfordelingen mellom avling og tarm. Videre kan matfordelingen brukes til å reflektere umiddelbar matbevegelse eller grunnleggende matstatus ved hjelp av forskjellige fôringsperioder. Samlet gir denne protokollen metoder for raskt å evaluere avlingsmotilitet og matpassaging i Drosophila.

Protocol

1. Vedlikeholde og forberede eksperimentelle fluer Opprettholde fluer i hetteglass som inneholder 10 ml nylaget mat (1% agar, 2,4% bryggergjær, 3% sukrose, 5% maismel) i en inkubator ved 25 °C med 60% fuktighet. Sett lyssyklusen til inkubatoren til 12-timers lys: 12-timers mørk. For å sikre at et stort antall av de ønskede genotypen flyr eus samtidig, kultur unge fluer (1-3 dager gammel) i standard mat med tørr gjær på overflaten i 3 dager. Overfør de voksne til et nytt mat hetteglass med sta…

Representative Results

Disse metodene for å telle avling sammentrekningshastighet og oppdage farget matdistribusjon kan brukes til å evaluere avlingsfunksjonen på matmotilitet. Avlingssammentrekningen reflekterer hyppigheten av å skyve mat inn i tarmen. Fordelingen av fargestoff i fly etter en kort fôringsperiode indikerer umiddelbar mat som passerer fra avling til midgut. Målet for rapamycin kompleks 1 (TORC1) er en master regulator som medierer næringsstoff og celle metabolisme. TORC1 hemming forlenger leve…

Discussion

I Drosophila inntatt mat beveger seg fra avlingen til tarmen for fordøyelsen. Under denne prosessen absorberes næringsstoffene, og avfallet blir utvist ut av kroppen som avføring. Dermed kan sammenligning av matinntak sammen med avføring utstøting brukes til å grovt vurdere hastigheten på matbevegelse i kroppen. Metoden for kapillærmater (CAFE) er mye brukt til å måle matinntak10,11. Metoden for avføring nummer telling kan brukes til å estime…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (nr. 31872287), Natural Science Foundation of Jiangsu Province (NO. BK20181456) og Seks talent topper prosjektet i Jiangsu-provinsen (Nr. SWYY-146).

Materials

96-well plate Thermo fisher 269620
Brillant Blue FCF Solarbio E8500 also called FD&C Blue No. 1
Centrifuge Thermo fisher Heraeus Pico 17
Spectrophotometer Spectra Max cMax plus
Tweezers Dumont 11252-30

References

  1. Kusano, M., et al. Gastrointestinal motility and functional gastrointestinal diseases. Current Pharmaceutical Design. 20 (16), 2775-2782 (2014).
  2. Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophila melanogaster. Genome Research. 11 (6), 1114-1125 (2001).
  3. Apidianakis, Y., Rahme, L. G. Drosophila melanogaster as a model for human intestinal infection and pathology. Disease Models & Mechanisms. 4 (1), 21-30 (2011).
  4. Lemaitre, B., Miguel-Aliaga, I. The Digestive Tract of Drosophila melanogaster. Annual Review of Genetics. 47, 377-404 (2013).
  5. Miguel-Aliaga, I., Jasper, H., Lemaitre, B. Anatomy and Physiology of the Digestive Tract of Drosophila melanogaster. Genetics. 210 (2), 357-396 (2018).
  6. Strand, M., Micchelli, C. A. Quiescent gastric stem cells maintain the adult Drosophila stomach. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (43), 17696-17701 (2011).
  7. Ren, J., et al. Beadex affects gastric emptying in Drosophila. Cell Research. 24 (5), 636-639 (2014).
  8. Xi, J., et al. The TORC1 inhibitor Nprl2 protects age-related digestive function in Drosophila. Aging. 11 (21), 9811-9828 (2019).
  9. Wei, Y., Reveal, B., Cai, W., Lilly, M. A. The GATOR1 Complex Regulates Metabolic Homeostasis and the Response to Nutrient Stress in Drosophila melanogaster. G3. 6 (12), 3859-3867 (2016).
  10. Ja, W. W., et al. Prandiology of Drosophila and the CAFE assay. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (20), 8253-8256 (2007).
  11. Diegelmann, S., et al. The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments. (121), e55024 (2017).
  12. Edgecomb, R. S., Harth, C. E., Schneiderman, A. M. Regulation of feeding behavior in adult Drosophila melanogaster varies with feeding regime and nutritional state. Journal of Experimental Biology. 197, 215-235 (1994).
  13. Peller, C. R., Bacon, E. M., Bucheger, J. A., Blumenthal, E. M. Defective gut function in drop-dead mutant Drosophila. Journal of Insect Physiology. 55 (9), 834-839 (2009).
  14. Chtarbanova, S., et al. Drosophila C virus systemic infection leads to intestinal obstruction. Journal of Virology. 88 (24), 14057-14069 (2014).
  15. Solari, P., et al. Opposite effects of 5-HT/AKH and octopamine on the crop contractions in adult Drosophila melanogaster: Evidence of a double brain-gut serotonergic circuitry. PLoS One. 12 (3), 0174172 (2017).
check_url/61181?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cai, J., Xi, J., Wei, Y. Measuring Crop Motility and Food Passaging in Drosophila. J. Vis. Exp. (159), e61181, doi:10.3791/61181 (2020).

View Video