Summary

En high-throughput Image-Guided Stereotactic Neuronavigation og fokuseret ultralyd system til blod-hjerne barrieren Åbning i gnavere

Published: July 16, 2020
doi:

Summary

Blod-hjerne barrieren (BBB) kan midlertidigt forstyrres med mikroboble-medieret fokuseret ultralyd (FUS). Her beskriver vi en trinvis protokol for BBB-åbning i høj overførselshastighed ved hjælp af et modulært FUS-system, der er tilgængeligt for ikke-ultralydseksperter.

Abstract

Blod-hjerne barrieren (BBB) har været en stor forhindring for behandling af forskellige hjernesygdomme. Endotelceller, der er forbundet med stramme vejkryds, danner en fysiologisk barriere, der forhindrer store molekyler (>500 Da) i at komme ind i hjernevævet. Mikroboble-medieret fokuseret ultralyd (FUS) kan bruges til at fremkalde en forbigående lokal BBB åbning, så større lægemidler til at komme ind i hjernen parenchyma.

Ud over store kliniske enheder til klinisk oversættelse kræver præklinisk forskning til vurdering af lægemiddelkandidaters behandlingsrespons dedikerede små ultralydsopsætninger til målrettet BBB-åbning. Disse systemer giver helst mulighed for arbejdsprocesser med høj gennemløb med både høj rumlig præcision og integreret kavitationsovervågning, samtidig med at de stadig er omkostningseffektive i både initialinvestering og driftsomkostninger.

Her præsenterer vi et bioluminescens- og røntgenstyret stereotaktisk FUS-system til små dyr, der er baseret på kommercielt tilgængelige komponenter og opfylder ovennævnte krav. Der er lagt særlig vægt på en høj grad af automatisering, der letter de udfordringer, der typisk opstår i prækliniske narkotikavurderingsundersøgelser med store mængder. Eksempler på disse udfordringer er behovet for standardisering for at sikre datagen reproducerbarhed, reducere variabilitet inden for grupper, reducere stikprøvestørrelsen og dermed overholde etiske krav og reducere unødvendig arbejdsbyrde. Det foreslåede BBB-system er blevet valideret inden for rammerne af BBB,der åbner faciliterede lægemiddelleveringsforsøg på patientbaserede xenograftmodeller af glioblastoma multiforme og diffuse midline glioma.

Introduction

Blod-hjerne barrieren (BBB) er en stor hindring for levering af narkotika i hjernen parenchyma. De fleste terapeutiske lægemidler, der er udviklet, krydser ikke BBB på grund af deres fysiskkemiske parametre (f.eks. lipofilicitet, molekylvægt, hydrogenbindingstagere og donorer) eller bevares ikke på grund af deres affinitet for efflux-transportører i hjernen1,2. Den lille gruppe af lægemidler, der kan krydse BBB, er typisk små lipofile molekyler, som kun er effektive i et begrænset antal hjernesygdomme1,2. Som følge heraf er farmakologiske behandlingsmuligheder begrænsede for de fleste hjernesygdomme, og der er behov for nye lægemiddelleveringsstrategier3,4.

Terapeutisk ultralyd er en ny teknik, der kan bruges til forskellige neurologiske applikationer som BBB-forstyrrelse (BBBD), neuromodulation og ablation4,5,6,7. For at opnå en BBB-åbning med en ekstracorporeal ultralydsudleder gennem kraniet kombineres fokuseret ultralyd (FUS) med mikrobobler. Mikroboble-medieret FUS resulterer i øget biotilgængelighed af lægemidler i hjernen parenchyma5,8,9. I nærværelse af lydbølger begynder mikrobobler at svinge indlede transcytose og forstyrrelse af de stramme kryds mellem BBB’s endotelceller, hvilket muliggør paracellulær transport af større molekyler10. Tidligere undersøgelser bekræftede sammenhængen mellem intensiteten af den akustiske emission og den biologiske indvirkning på BBB-åbning11,12,13,14. FUS i kombination med mikrobobler er allerede blevet anvendt i kliniske forsøg til behandling af glioblastoma ved hjælp af temozolomide eller liposomal doxorubicin som kemoterapeutisk middel eller til behandling af Alzheimers sygdom og amyotrofisk lateral sklerose5,9,15,16.

Da ultralyd medieret BBB åbning resulterer i helt nye muligheder for farmakoterapi, præklinisk forskning for klinisk oversættelse er nødvendig for at vurdere behandlingen respons af udvalgte lægemiddelkandidater. Dette kræver typisk en arbejdsgang med høj gennemløb med både høj rumlig præcision og helst en integreret kavitationsregistrering til overvågning af målrettet BBB-åbning med høj reproducerbarhed. Hvis det er muligt, skal disse systemer være omkostningseffektive i både initialinvesteringer og driftsomkostninger for at kunne skaleres i henhold til undersøgelsens størrelse. De fleste prækliniske FUS-systemer kombineres med MR-scanning til billedvejledning og behandlingsplanlægning15,17,18,19. Selv om MR giver detaljerede oplysninger om tumor anatomi og volumen, det er en dyr teknik, som generelt udføres af uddannede / dygtige operatører. Derudover er MR-scanning i høj opløsning muligvis ikke altid tilgængelig for forskere i prækliniske faciliteter og kræver lange scanningstider pr. dyr, hvilket gør det mindre egnet til farmakologiske undersøgelser med høj gennemløb. Bemærkelsesværdigt er, at for præklinisk forskning inden for neuro-onkologi, især infiltrerende tumormodeller, er muligheden for at visualisere og målrette tumoren afgørende for behandlingssucces20. I øjeblikket er dette krav kun opfyldt af MR eller af tumorer transduceret med et fotoprotein, der muliggør visualisering med bioluminescens imaging (BLI) i kombination med administration af photoprotein substratet.

MR-styrede FUS-systemer bruger ofte et vandbad til at sikre ultralydbølgeudbredelse til transkraniale applikationer, hvor dyrets hoved delvist er nedsænket i vandet, de såkaldte ”bottom-up”-systemer15,17,18. Mens disse designs fungerer generelt godt i mindre dyreforsøg, er de et kompromis mellem dyreforberedelsestider, bærbarhed og realistisk vedligeholdbare hygiejniske standarder under brug. Som et alternativ til MRI omfatter andre styremetoder til stereotaktisk navigation brugen af et anatomisk atlas over gnavere21,22,23, laserpegepind assisteret visuel observation24, pinhole-assisteret mekanisk scanningsenhed25eller BLI26. De fleste af disse designs er “top-down” systemer, hvor transduceren er placeret oven på dyrets hoved, med dyret i en naturlig position. ”Top-down’-arbejdsgangen består enten af et vandbad22,25,26 eller en vandfyldt kegle21,24. Fordelen ved at bruge en transducer inde i en lukket kegle er det mere kompakte fodaftryk, kortere opsætningstid og ligetil dekontamineringsmuligheder, der forenkler hele arbejdsgangen.

Samspillet mellem det akustiske felt og mikroboblerne er trykafhængigt og spænder fra svingninger med lav amplitude (kaldet stabil kavitation) til forbigående boblekollaps (kaldet inertial kavitation)27,28. Der er en etableret konsensus om, at ultralyd-BBBD kræver et akustisk tryk et godt stykke over den stabile kavitationstærskel for at opnå vellykket BBBD, men under den inertielle kavitationstærskel, som generelt er forbundet med vaskulær / neuronal skade29. Den mest almindelige form for overvågning og kontrol er analysen af det (back-)spredte akustiske signal ved hjælp af passiv kavitationsdetektering (PCD), som foreslået af McDannold et al.12. PCD bygger på analysen af Fourier spektre af mikroboble emissionssignaler, hvor styrken og udseendet af stabile kavitation kendetegnende (harmoniske, subharmonics, og ultraharmonics) og inertial kavitation markører (bredbånd svar) kan måles i realtid.

En “one size fits all” PCD-analyse for præcis trykkontrol er kompliceret på grund af mikrobobleformuleringens polydispersitet (svingningsforstærkningen afhænger stærkt af boblediameteren), forskellene i bobleskalegenskaber mellem mærker og den akustiske svingning, som afhænger stærkt af frekvens og tryk30,31,32. Som følge heraf er der foreslået mange forskellige PCD-detektionsprotokoller, som er blevet tilpasset bestemte kombinationer af alle disse parametre og er blevet brugt i forskellige applikationsscenarier (lige fra in vitro-forsøg over små dyreprotokoller til PCD til klinisk brug) til robust kavitationsdetektion og endda til tilbagevirkende feedbackkontrol af trykket11,14,30,31,32,33,34,35. Pcd-protokollen, der anvendes i forbindelse med denne undersøgelse, er afledt direkte af McDannold et al.12 og overvåger den harmoniske emission for tilstedeværelsen af stabil kavitation og bredbåndsstøj til inertikavitationsdetektion.

Vi har udviklet et billedstyret neuronavigation FUS-system til forbigående åbning af BBB for at øge lægemiddelleveringen til hjerneparenchymaet. Systemet er baseret på kommercielt tilgængelige komponenter og kan let tilpasses flere forskellige billedbehandlingsmetoder, afhængigt af de tilgængelige billeddannelsesteknikker i dyrefaciliteten. Da vi har brug for en arbejdsgang med høj overførselshastighed, har vi valgt at bruge røntgen og BLI til billedvejledning og behandlingsplanlægning. Tumorceller transduceret med et photoprotein (f.eks luciferase) er egnet til BLI imaging20. Efter administration af fotoproteinsubstratet kan tumorceller overvåges in vivo og tumorvækst og placering kan bestemmes20,36. BLI er en billig billedbehandling modalitet, det gør det muligt at følge tumorvæksten over tid, det har hurtige scanningstider, og det korrelerer godt med tumorvækst målt med MRI36,37. Vi har valgt at erstatte vandbadet med en vandfyldt kegle fastgjort til transduceren for at muliggøre fleksibilitet til frit at flytte den platform, hvorpå gnaveren er monteret8,24. Designet er baseret på en aftagelig platform udstyret med integration af (I) stereotaktiske platformer til små dyr (II) fiduciale markører med både røntgen- og optisk billedkompatibilitet (III) hurtig aftagelig anæstesimaske og (IV) integreret temperaturreguleret dyreopvarmningssystem. Efter den første induktion af anæstesi monteres dyret i en præcis position på platformen, hvor det forbliver under hele proceduren. Derfor passerer hele platformen alle stationer i arbejdsgangen for hele interventionen, samtidig med at den opretholder en nøjagtig og reproducerbar positionering og vedvarende anæstesi. Kontrolsoftwaren gør det muligt automatisk at registrere de fiduciale markører og registrerer automatisk alle typer billeder og billedmodaliteter (dvs. mikro-CT, X-ray, BLI og fluorescensbilleddannelse) i referencerammen for den stereotaktiske platform. Ved hjælp af en automatisk kalibreringsprocedure er ultralydtransducerens brændvidde præcist kendt inden for, hvilket muliggør automatisk fusion af interventionel planlægning, akustisk levering og opfølgende billedanalyse. Som vist i figur 1 og figur 2giver denne opsætning en høj grad af fleksibilitet til at designe dedikerede eksperimentelle arbejdsgange og tillader interleaved håndtering af dyret på forskellige stationer, hvilket igen letter eksperimenter med høj gennemløb. Vi har brugt denne teknik til vellykket levering af lægemidler i mus xenografts af høj kvalitet gliom såsom diffus midline glioma.

Protocol

Alle in vivo-eksperimenter blev godkendt af det hollandske etiske udvalg (licenstilladelsesnummer AVD114002017841) og Dyrevelfærdsorganet ved Vrije Universiteit Amsterdam, Holland. Efterforskerne blev uddannet i det grundlæggende i FUS-systemet for at minimere dyrenes ubehag. 1. Fokuseret ultralydssystem BEMÆRK: Den beskrevne opsætning er et indbygget bygget BBB-disruptionsystem baseret på kommercielt tilgængelige komponenter og omfatter en 3D-printet specialfre…

Representative Results

Det beskrevne FUS-system (figur 1 og figur 2) og den tilhørende arbejdsgang er blevet brugt i over 100 dyr og produceret reproducerbare data om både sunde og tumorbærende mus. Baseret på den registrerede kavitation og spektraltætheden ved overtonerne i det højeste øjeblik af mikrobubble bolus injektionen kan spektraleffekten af hver frekvens beregnes ved hjælp af Fourier-analysen som forklaret i trin 4 i protokollen. Baseret på den akustiske protokol (1…

Discussion

I denne undersøgelse udviklede vi et omkostningseffektivt billedstyret baseret FUS-system til forbigående BBB-forstyrrelse for øget lægemiddellevering til hjerneparenchymaet. Systemet blev stort set bygget med kommercielt tilgængelige komponenter og i samarbejde med X-ray og BLI. Modulariteten af det foreslåede design gør det muligt at anvende flere billedbehandlingsmetoder til planlægning og vurdering i arbejdsgange med høj overførselshastighed. Systemet kan kombineres med mere omfattende 3D-billedbehandlingsm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette projekt blev finansieret af KWF-STW (Drug Delivery af Sonoporation i barndommen Diffuse Intrinsic Pontine Glioma og High-grade Glioma). Vi takker Ilya Skachkov og Charles Mougenot for deres bidrag til udviklingen af systemet.

Materials

1 mL luer-lock syringe Becton Dickinson 309628 Plastipak
19 G needle Terumo Agani 8AN1938R1
23 G needle Terumo Agani 8AN2316R1
3M Transpore surgical tape Science applied to life 7000032707 or similar
Arbitrary waveform generator Siglent n.a. SDG1025, 25 MHz, 125 Msa/s
Automated stereotact in-house built n.a. Stereotact with all elements were in-house built
Bruker In-Vivo Xtreme Bruker n.a. Includes software
Buffered NaCl solution B. Braun Melsungen AG 220/12257974/110
Buprenorfine hydrochloride Indivior UK limitd n.a. 0.324 mg
Cage enrichment: paper-pulp smart home Bio services n.a.
Carbon filter Bickford NC0111395 Omnicon f/air
Ceramic spoon n.a n.a.
Cotton swabs n.a. n.a.
D-luciferin, potassium salt Gold Biotechnology LUCK-1
Ethanol VUmc pharmacy n.a. 70%
Evans Blue Sigma Aldrich E2129
Fresenius NaCl 0.9% Fresenius Kabi n.a. NaCl 0.9 %, 1000 mL
Histoacryl Braun Surgical n.a. Histoacryl 0.5 mL
Hydrophone Precision Acoustics n.a.
Insulin syringe Becton Dickinson 324825/324826 0.5 mL and 0.3 mL
Isoflurane TEVA Pharmachemie BV 8711218013196 250 mL
Ketamine Alfasan n.a. 10 %, 10 mL
Mouse food: Teklad global 18% protein rodent diet Envigo 2918-11416M
Neoflon catheter Becton Dickinson 391349 26 GA 0.6 x 19 mm
Oscilloscope Keysight technologies n.a. InfiniiVision DSOX024A
Plastic tubes Greiner bio-one 210261 50 mL
Power amplifier Electronics & Innovation Ltd 210L Model 210L
Preamplifier DC Coupler Precision Acoustics n.. Serial number: DCPS94
Scissors Sigma Aldrich S3146-1EA or similar
Sedazine AST Farma n.a. 2%
SonoVue microbubbles Bracco n.a. 8 µl/ml
Sterile water Fresenius Kabi n.a. 1000 mL
Syringe n.a. n.a. various syringes can be used
Temgesic Indivior UK limitd n.a. 0.3 mg/ml
Transducer Precision Acoustics n.a. 1 MHz
Tweezers Sigma Aldrich F4142-1EA or similar
Ultrasound gel Parker Laboratories Inc. 01-02 Aquasonic 100
Vidisic gel Bausch + Lomb n.a. 10 g

References

  1. Lipinski, C. A. Lead- and drug-like compounds: the rule-of-five revolution. Drug Discovery Today: Technologies. 1 (4), 337-341 (2004).
  2. Pardridge, W. M. Blood-brain barrier delivery. Drug Discovery Today. 12 (1-2), 54-61 (2007).
  3. Alli, S., et al. Brainstem blood brain barrier disruption using focused ultrasound: A demonstration of feasibility and enhanced doxorubicin delivery. Journal of Controlled Release. 281, 29-41 (2018).
  4. Burgess, A., Hynynen, K. Noninvasive and targeted drug delivery to the brain using focused ultrasound. ACS Chemical Neuroscience. 4 (4), 519-526 (2013).
  5. Meng, Y., et al. Safety and efficacy of focused ultrasound induced blood-brain barrier opening, an integrative review of animal and human studies. Journal of Controlled Release. 309, 25-36 (2019).
  6. Darrow, D. P. Focused Ultrasound for Neuromodulation. Neurotherapeutics. 16 (1), 88-99 (2019).
  7. Zhou, Y. F. High intensity focused ultrasound in clinical tumor ablation. World Journal of Clinical Oncology. 2 (1), 8-27 (2011).
  8. O’Reilly, M. A., Hough, O., Hynynen, K. Blood-Brain Barrier Closure Time After Controlled Ultrasound-Induced Opening Is Independent of Opening Volume. Journal of Ultrasound in Medicine. 36 (3), 475-483 (2017).
  9. Mainprize, T., et al. Blood-Brain Barrier Opening in Primary Brain Tumors with Non-invasive MR-Guided Focused Ultrasound: A Clinical Safety and Feasibility Study. Scientific Reports. 9 (1), 321 (2019).
  10. Dasgupta, A., et al. Ultrasound-mediated drug delivery to the brain: principles, progress and prospects. Drug Discovery Today: Technologies. 20, 41-48 (2016).
  11. O’Reilly, M. A., Waspe, A. C., Chopra, R., Hynynen, K. MRI-guided disruption of the blood-brain barrier using transcranial focused ultrasound in a rat model. Journal of Visualized Experiments. (61), (2012).
  12. McDannold, N., Vykhodtseva, N., Hynynen, K. Targeted disruption of the blood-brain barrier with focused ultrasound: association with cavitation activity. Physics in Medicine & Biology. 51 (4), 793 (2006).
  13. McDannold, N., Vykhodtseva, N., Hynynen, K. Blood-brain barrier disruption induced by focused ultrasound and circulating preformed microbubbles appears to be characterized by the mechanical index. Ultrasound in Medicine and Biology. 34 (5), 834-840 (2008).
  14. Sun, T., et al. Closed-loop control of targeted ultrasound drug delivery across the blood-brain/tumor barriers in a rat glioma model. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (48), 10281-10290 (2017).
  15. Lipsman, N., et al. Blood-brain barrier opening in Alzheimer’s disease using MR-guided focused ultrasound. Nature Communications. 9 (1), 2336 (2018).
  16. Carpentier, A., et al. Clinical trial of blood-brain barrier disruption by pulsed ultrasound. Science Translational Medicine. 8 (343), 342 (2016).
  17. Chopra, R., Curiel, L., Staruch, R., Morrison, L., Hynynen, K. An MRI-compatible system for focused ultrasound experiments in small animal models. Medical Physics. 36 (5), 1867-1874 (2009).
  18. Kinoshita, M., McDannold, N., Jolesz, F. A., Hynynen, K. Targeted delivery of antibodies through the blood–brain barrier by MRI-guided focused ultrasound. Biochemical and Biophysical Research Communications. 340 (4), 1085-1090 (2006).
  19. Larrat, B., et al. MR-guided transcranial brain HIFU in small animal models. Physics in Medicine & Biology. 55 (2), 365 (2009).
  20. Contag, C. H., Jenkins, D., Contag, P. R., Negrin, R. S. Use of reporter genes for optical measurements of neoplastic disease in vivo. Neoplasia. 2 (1-2), 41 (2000).
  21. Choi, J. J., Pernot, M., Small, S. A., Konofagou, E. E. Noninvasive, transcranial and localized opening of the blood-brain barrier using focused ultrasound in mice. Ultrasound in Medicine & Biology. 33 (1), 95-104 (2007).
  22. Bing, C., et al. Trans-cranial opening of the blood-brain barrier in targeted regions using astereotaxic brain atlas and focused ultrasound energy. Journal of Therapeutic Ultrasound. 2 (1), 13 (2014).
  23. Marquet, F., et al. Real-time, transcranial monitoring of safe blood-brain barrier opening in non-human primates. PloS One. 9 (2), (2014).
  24. Anastasiadis, P., et al. characterization and evaluation of a laser-guided focused ultrasound system for preclinical investigations. Biomedical Engineering Online. 18 (1), 36 (2019).
  25. Liu, H. L., Pan, C. H., Ting, C. Y., Hsiao, M. J. Opening of the blood-brain barrier by low-frequency (28-kHz) ultrasound: a novel pinhole-assisted mechanical scanning device. Ultrasound in Medicine & Biology. 36 (2), 325-335 (2010).
  26. Zhu, L., et al. Focused ultrasound-enabled brain tumor liquid biopsy. Scientific Reports. 8 (1), 1-9 (2018).
  27. Bader, K. B., Holland, C. K. Gauging the likelihood of stable cavitation from ultrasound contrast agents. Physics in Medicine & Biology. 58 (1), 127 (2012).
  28. Neppiras, E. Acoustic cavitation series: part one: Acoustic cavitation: an introduction. Ultrasonics. 22 (1), 25-28 (1984).
  29. Aryal, M., Arvanitis, C. D., Alexander, P. M., McDannold, N. Ultrasound-mediated blood-brain barrier disruption for targeted drug delivery in the central nervous system. Advanced Drug Delivery Reviews. 72, 94-109 (2014).
  30. Tung, Y. S., Choi, J. J., Baseri, B., Konofagou, E. E. Identifying the inertial cavitation threshold and skull effects in a vessel phantom using focused ultrasound and microbubbles. Ultrasound in Medicine & Biology. 36 (5), 840-852 (2010).
  31. Arvanitis, C. D., Livingstone, M. S., Vykhodtseva, N., McDannold, N. Controlled ultrasound-induced blood-brain barrier disruption using passive acoustic emissions monitoring. PloS One. 7 (9), (2012).
  32. Tsai, C. H., Zhang, J. W., Liao, Y. Y., Liu, H. L. Real-time monitoring of focused ultrasound blood-brain barrier opening via subharmonic acoustic emission detection: implementation of confocal dual-frequency piezoelectric transducers. Physics in Medicine & Biology. 61 (7), 2926 (2016).
  33. Chen, W. S., Brayman, A. A., Matula, T. J., Crum, L. A. Inertial cavitation dose and hemolysis produced in vitro with or without Optison. Ultrasound in Medicine & Biology. 29 (5), 725-737 (2003).
  34. Qiu, Y., et al. The correlation between acoustic cavitation and sonoporation involved in ultrasound-mediated DNA transfection with polyethylenimine (PEI) in vitro. Journal of Controlled Release. 145 (1), 40-48 (2010).
  35. Sun, T., Jia, N., Zhang, D., Xu, D. Ambient pressure dependence of the ultra-harmonic response from contrast microbubbles. The Journal of the Acoustical Society of America. 131 (6), 4358-4364 (2012).
  36. Rehemtulla, A., et al. Rapid and quantitative assessment of cancer treatment response using in vivo bioluminescence imaging. Neoplasia. 2 (6), 491-495 (2000).
  37. Puaux, A. L., et al. A comparison of imaging techniques to monitor tumor growth and cancer progression in living animals. International Journal of Molecular Imaging. 2011, (2011).
  38. Wu, S. K., et al. Characterization of different microbubbles in assisting focused ultrasound-induced blood-brain barrier opening. Scientific Reports. 7, 46689 (2017).
  39. van den Broek, M. P., Groenendaal, F., Egberts, A. C., Rademaker, C. M. Effects of hypothermia on pharmacokinetics and pharmacodynamics. Clinical Pharmacokinetics. 49 (5), 277-294 (2010).
  40. Paxinos, G., Franklin, K. B. . Paxinos and Franklin’s the mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2019).
  41. Saunders, N. R., Dziegielewska, K. M., Møllgård, K., Habgood, M. D. Markers for blood-brain barrier integrity: how appropriate is Evans blue in the twenty-first century and what are the alternatives. Frontiers in Neuroscience. 385, 385 (2015).
  42. Yao, L., Xue, X., Yu, P., Ni, Y., Chen, F. Evans blue dye: a revisit of its applications in biomedicine. Contrast Media & Molecular Imaging. 2018, (2018).
  43. Caretti, V., et al. Monitoring of tumor growth and post-irradiation recurrence in a diffuse intrinsic pontine glioma mouse model. Brain Pathology. 21 (4), 441-451 (2011).
  44. Yoshimura, J., Onda, K., Tanaka, R., Takahashi, H. Clinicopathological study of diffuse type brainstem gliomas: analysis of 40 autopsy cases. Neurologia Medico-Chirurgica. 43 (8), 375-382 (2003).
  45. Yang, F. Y., et al. Micro-SPECT/CT-based pharmacokinetic analysis of 99mTc-diethylenetriaminepentaacetic acid in rats with blood-brain barrier disruption induced by focused ultrasound. Journal of Nuclear Medicine. 52 (3), 478-484 (2011).
  46. Sirsi, S., Borden, M. Microbubble compositions, properties and biomedical applications. Bubble Science, Engineering & Technology. 1 (1-2), 3-17 (2009).
  47. Greis, C. Technology overview: SonoVue. European Radiology. 14, 11-15 (2004).
  48. Schneider, M. Characteristics of sonovue. Echocardiography. 16, 743-746 (1999).
  49. Talu, E., Powell, R. L., Longo, M. L., Dayton, P. A. Needle size and injection rate impact microbubble contrast agent population. Ultrasound in Medicine & Biology. 34 (7), 1182-1185 (2008).
  50. Pinton, G., et al. Attenuation, scattering, and absorption of ultrasound in the skull bone. Medical Physics. 39 (1), 299-307 (2012).
  51. Constantinides, C., Mean, R., Janssen, B. J. Effects of isoflurane anesthesia on the cardiovascular function of the C57BL/6 mouse. ILAR journal/National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 52, 21 (2011).
  52. McDannold, N., Zhang, Y., Vykhodtseva, N. The effects of oxygen on ultrasound-induced blood-brain barrier disruption in mice. Ultrasound in Medicine & Biology. 43 (2), 469-475 (2017).
  53. McDannold, N., Zhang, Y., Vykhodtseva, N. Blood-brain barrier disruption and vascular damage induced by ultrasound bursts combined with microbubbles can be influenced by choice of anesthesia protocol. Ultrasound in Medicine and Biology. 37 (8), 1259-1270 (2011).
check_url/61269?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Haumann, R., ’t Hart, E., Derieppe, M. P. P., Besse, H. C., Kaspers, G. J. L., Hoving, E., van Vuurden, D. G., Hulleman, E., Ries, M. A High-Throughput Image-Guided Stereotactic Neuronavigation and Focused Ultrasound System for Blood-Brain Barrier Opening in Rodents. J. Vis. Exp. (161), e61269, doi:10.3791/61269 (2020).

View Video