Summary

Måling av post-stroke cerebralt ødem, infarktsone og blod-hjernebarrieresammenbrudd i ett enkelt sett med gnagerhjerneprøver

Published: October 23, 2020
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en ny teknikk for å måle de tre viktigste parametrene for iskemisk hjerneskade på samme sett med gnagerhjerneprøver. Bruk av bare én hjerneprøve er svært fordelaktig når det gjelder etiske og økonomiske kostnader.

Abstract

En av de vanligste årsakene til sykelighet og dødelighet over hele verden er iskemisk slag. Historisk, en dyremodell som brukes til å stimulere iskemisk slag innebærer midten cerebral arterie okklusjon (MCAO). Infarct sone, hjerneødem og blod-hjernebarriere (BBB) sammenbrudd måles som parametere som gjenspeiler omfanget av hjerneskade etter MCAO. En betydelig begrensning til denne metoden er at disse målingene normalt oppnås i forskjellige rottehjerneprøver, noe som fører til etiske og økonomiske byrder på grunn av det store antallet rotter som må eutaniseres for en passende prøvestørrelse. Her presenterer vi en metode for å nøyaktig vurdere hjerneskade etter MCAO ved å måle infarct sone, hjerneødem og BBB permeabilitet i samme sett av rottehjerner. Denne nye teknikken gir en mer effektiv måte å evaluere patofysiologien til hjerneslag.

Introduction

En av de vanligste årsakene til sykelighet og dødelighet over hele verden er hjerneslag. Globalt representerer iskemisk slag 68% av alle slagtilfeller, mens i USA står iskemisk slag for 87% av hjerneslagtilfeller1,2. Det er anslått at den økonomiske byrden av hjerneslag når $ 34 milliarder i USA2 og € 45 milliarder i EU3. Dyremodeller av hjerneslag er nødvendig for å studere sin patofysiologi, utvikle nye metoder for evaluering, og foreslå nye terapeutiske alternativer4.

Iskemisk slag oppstår med okklusjon av en stor cerebral arterie, vanligvis den midterste hjernearterien eller en av dens grener5. Dermed har modeller av iskemisk slag historisk involvert midten cerebral arterie okklusjon (MCAO)6,7,8,9,10,11,12. Etter MCAO, nevrologisk skade vurderes oftest ved å måle infarktsone (IZ) ved hjelp av en 2,3,5-triphenyltetrazoliumklorid (TTC) fargingsmetode13, hjerneødem (BE) ved hjelp av tørking eller beregning av hemisfæriske volumer14,15,16,og blod hjernebarriere (BBB) permeabilitet av en spektrometri teknikk ved hjelp av Evans blå flekker17,18,19.

Den tradisjonelle MCAO-metoden bruker separate sett med hjerner for hver av de tre hjernemålingene. For en stor utvalgsstørrelse resulterer dette i et betydelig antall eutaniserte dyr, med ekstra etiske og økonomiske hensyn. En alternativ metode for å lindre disse kostnadene ville innebære målinger av alle tre parametrene i et enkelt sett med post-MCAO gnagerhjerner.

Tidligere forsøk er gjort for å måle kombinasjoner av parametere i samme hjerneprøve. Samtidige immunofluorescerende fargingsmetoder20 samt andre molekylære og biokjemiske analyser21 har blitt beskrevet etter TTC-farging i samme hjerneprøve. Vi har tidligere beregnet hjernehalvkulevolumer for å vurdere hjerneødem og utført TTC-farging for å beregne infarktsone i samme hjernesett15.

I den nåværende protokollen presenterer vi en modifisert MCAO-teknikk som måler iskemisk hjerneskade ved å bestemme IZ, BE og BBB permeabilitet i samme sett med gnagerhjerner. IZ måles ved TTC-farging, BE bestemmes ved å beregne hemisfært volum, og BBB permeabilitet oppnås ved spektrometrimetoder19. I denne protokollen brukte vi en modifisert MCAO-modell, basert på direkte innsetting og fiksering av monofilamentkateteret i den indre halspulsåren (ICA) og ytterligere blokkering av blodstrømmen til den midterste hjernearterien (MCA)22. Denne modifiserte metoden viser en redusert dødelighet og sykelighet sammenlignet med den tradisjonelle MCAO-metoden16,22.

Denne nye tilnærmingen gir en økonomisk forsvarlig og etisk modell for måling av nevrologisk skade etter MCAO. Denne vurderingen av de viktigste parametrene for iskemisk hjerneskade vil bidra til å undersøke sin patofysiologi grundig.

Protocol

Følgende prosedyrer ble utført i henhold til anbefalingene fra Helsingfors- og Tokyo-erklæringen og retningslinjene for bruk av eksperimentelle dyr i Det europeiske fellesskap. Eksperimentene ble også godkjent av Dyrevernskomiteen ved Ben-Gurion University of the Negev. 1. Klargjør rotter for eksperimentell prosedyre Velg voksne hann Sprague-Dawley rotter uten overt patologi, hver veier mellom 300 og 350 g. Opprettholde alle rotter ved romtemperatur ved 22 °C, med 12 …

Representative Results

Måling av infarktsone En uavhengig t-test med en uavhengig prøve indikerte at 19 rotter som gjennomgikk permanent MCAO viste en signifikant økning i hjernens infarktvolum sammenlignet med de 16 sham-opererte rotter (MCAO = 7,49% ± 3,57 vs. Sham = 0,31 % ± 1,9, t(28,49) = 7,56, p < 0,01 (se figur 2A)). Dataene uttrykkes som en gjennomsnittlig prosentandel av den kontralaterale halvkule ± SD. <stro…

Discussion

Hovedmålet med den nåværende protokollen var å demonstrere konsistente målinger av tre hovedparametere for iskemisk skade: IZ, BE og BBB permeabilitet. Tidligere studier på dette feltet har vist muligheten for å utføre en eller to av disse parametrene sammen i samme utvalg. Foruten kostnadsreduksjonen som denne tredelte metoden tilbyr, gir den også en mer ønskelig bioetisk modell som begrenser antall dyr som må opereres på og deretter eutaniseres. Som i alle histologiske teknikker er metoden begrenset av mang…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Maryna Kuscheriava, Maksym Kryvonosov, Daryna Yakumenko og Evgenia Goncharyk ved Institutt for fysiologi, Fakultet for biologi, økologi og medisin, Oles Honchar, Dnipro University, Dnipro, Ukraina for deres støtte og nyttige bidrag til våre diskusjoner. Dataene som er innhentet er en del av Ruslan Kuts ph.d.-avhandling.

Materials

2 mL Syringe Braun 4606027V
2% chlorhexidine in 70% alcohol solution Sigma-Aldrich 500 cc Provides general antisepsis of the skin in the operatory field
27 G Needle with Syringe Braun 305620
3-0 Silk sutures Henry Schein 1007842
4-0 Nylon suture 4-00
Brain & Tissue Matrices Sigma-Aldrich 15013
Cannula Venflon 22 G KD-FIX 183603985447
Centrifuge Sigma 2-16P Sigma-Aldrich Sigma 2-16P
Compact Analytical Balances Sigma-Aldrich HR-AZ/HR-A
Digital weighing scale Sigma-Aldrich Rs 4,000
Dissecting scissors Sigma-Aldrich Z265969
Eppendorf pipette Sigma-Aldrich Z683884
Eppendorf tube Sigma-Aldrich EP0030119460
Fluorescence detector Tecan, Männedorf Switzerland Model: Infinite 200 PRO multimode reader Optional.
Fluorescence detector Molecular Devices LLC VWR cat. # 10822 512 SpectraMax Paradigm Multi Mode Microplate Reader Base Instrument Optional.
Gauze sponges Fisher 22-362-178
Heater with thermometer Heatingpad-1 Model: HEATINGPAD-1/2
Hemostatic microclips Sigma-Aldrich
Horizon-XL Mennen Medical Ltd
Infusion cuff ABN IC-500
Micro forceps Sigma-Aldrich
Micro scissors Sigma-Aldrich
Multiset Teva Medical 998702
Olympus BX 40 microscope Olympus
Operating forceps Sigma-Aldrich
Operating scissors Sigma-Aldrich
Optical scanner Canon Cano Scan 4200F Resolution 3200 x 6400 dpi
Petri dishes Sigma-Aldrich P5606
Purina Chow Purina 5001 Rodent laboratory chow given to rats, mice and hamster is a life-cycle nutrition that has been used in biomedical research for over 5 decades. Provided to rats ad libitum in this experiment.
Rat cages Techniplast 2000P Conventional housing for rodents. Cages were used for housing rats throughout the experiment
Scalpel blades #11 Sigma-Aldrich S2771
Software
Adobe Photoshop CS2 for Windows Adobe
ImageJ 1.37v NIH The source code is freely available. The author, Wayne Rasband (wayne@codon.nih.gov), is at the Research Services Branch, National Institute of Mental Health, Bethesda, Maryland, USA
Office 365 ProPlus Microsoft Microsoft Office Excel
Windows 10 Microsoft
Reagents
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride Sigma-Aldrich 298-96-4
50% trichloroacetic acid Sigma-Aldrich 76-03-9
Ethanol 96 % Romical Flammable liquid
Evans blue 2% Sigma-Aldrich 314-13-6
Isoflurane, USP 100% Piramamal Critical Care, Inc NDC 66794-017

References

  1. Krishnamurthi, R. V., et al. Global and regional burden of first-ever ischaemic and haemorrhagic stroke during 1990-2010: findings from the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet Global Health. 1, 259-281 (2013).
  2. Benjamin, E. J., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 135, 146 (2017).
  3. Wilkins, E., et al. . European cardiovascular disease statistics 2017. , (2017).
  4. Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research. Drug Design, Development and Therapy. 9, 3445-3454 (2015).
  5. Lloyd-Jones, D., et al. Heart disease and stroke statistics–2009 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Circulation. 119, 480-486 (2009).
  6. Shigeno, T., McCulloch, J., Graham, D. I., Mendelow, A. D., Teasdale, G. M. Pure cortical ischemia versus striatal ischemia. Circulatory, metabolic, and neuropathologic consequences. Surgical Neurology. 24, 47-51 (1985).
  7. Albanese, V., Tommasino, C., Spadaro, A., Tomasello, F. A transbasisphenoidal approach for selective occlusion of the middle cerebral artery in rats. Experientia. 36, 1302-1304 (1980).
  8. Hudgins, W. R., Garcia, J. H. Transorbital approach to the middle cerebral artery of the squirrel monkey: a technique for experimental cerebral infarction applicable to ultrastructural studies. Stroke. 1, 107-111 (1970).
  9. Waltz, A. G., Sundt, T. M., Owen, C. A. Effect of middle cerebral artery occlusion on cortical blood flow in animals. Neurology. 16, 1185-1190 (1966).
  10. Tamura, A., Graham, D. I., McCulloch, J., Teasdale, G. M. Focal cerebral ischaemia in the rat: 1. Description of technique and early neuropathological consequences following middle cerebral artery occlusion. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 1, 53-60 (1981).
  11. Aspey, B. S., Cohen, S., Patel, Y., Terruli, M., Harrison, M. J. Middle cerebral artery occlusion in the rat: consistent protocol for a model of stroke. Neuropathology and Applied Neurobiology. 24, 487-497 (1998).
  12. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20, 84-91 (1989).
  13. O’Brien, M. D., Jordan, M. M., Waltz, A. G. Ischemic cerebral edema and the blood-brain barrier. Distributions of pertechnetate, albumin, sodium, and antipyrine in brains of cats after occlusion of the middle cerebral artery. Archives of Neurology. 30, 461-465 (1974).
  14. Chen, C. H., Toung, T. J., Sapirstein, A., Bhardwaj, A. Effect of duration of osmotherapy on blood-brain barrier disruption and regional cerebral edema after experimental stroke. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 26, 951-958 (2006).
  15. Boyko, M., et al. Establishment of Novel Technical Methods for Evaluating Brain Edema and Lesion Volume in Stroked Rats: a Standardization of Measurement Procedures. Brain Research. , (2019).
  16. Boyko, M., et al. An experimental model of focal ischemia using an internal carotid artery approach. Journal of Neuroscience Methods. 193, 246-253 (2010).
  17. Sifat, A. E., Vaidya, B., Abbruscato, T. J. Blood-Brain Barrier Protection as a Therapeutic Strategy for Acute Ischemic Stroke. AAPS Journal. 19, 957-972 (2017).
  18. Jiang, X., et al. Blood-brain barrier dysfunction and recovery after ischemic stroke. Progress in Neurobiology. 163-164, 144-171 (2018).
  19. Belayev, L., Busto, R., Zhao, W., Ginsberg, M. D. Quantitative evaluation of blood-brain barrier permeability following middle cerebral artery occlusion in rats. Brain Research. 739, 88-96 (1996).
  20. Li, L., Yu, Q., Liang, W. Use of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride-stained brain tissues for immunofluorescence analyses after focal cerebral ischemia in rats. Pathology – Research and Practice. 214, 174-179 (2018).
  21. Kramer, M., et al. TTC staining of damaged brain areas after MCA occlusion in the rat does not constrict quantitative gene and protein analyses. Journal of Neuroscience Methods. 187, 84-89 (2010).
  22. Kuts, R., et al. A middle cerebral artery occlusion technique for inducing post-stroke depression in rats. Journal of Visualized Experiments. , e58875 (2019).
  23. Kuts, R., et al. A Novel Method for Assessing Cerebral Edema, Infarcted Zone and Blood-Brain Barrier Breakdown in a Single Post-stroke Rodent Brain. Frontiers in Neuroscience. 13, 1105 (2019).
  24. McGarry, B. L., Jokivarsi, K. T., Knight, M. J., Grohn, O. H. J., Kauppinen, R. A. A Magnetic Resonance Imaging Protocol for Stroke Onset Time Estimation in Permanent Cerebral Ischemia. Journal of Visualized Experiments. , e55277 (2017).
  25. Uluc, K., Miranpuri, A., Kujoth, G. C., Akture, E., Baskaya, M. K. Focal cerebral ischemia model by endovascular suture occlusion of the middle cerebral artery in the rat. Journal of Visualized Experiments. , e1978 (2011).
  26. Boyko, M., et al. The effect of blood glutamate scavengers oxaloacetate and pyruvate on neurological outcome in a rat model of subarachnoid hemorrhage. Neurotherapeutics. 9, 649-657 (2012).
  27. Kuts, R., et al. A Middle Cerebral Artery Occlusion Technique for Inducing Post-stroke Depression in Rats. Journal of Visualized Experiments. , e58875 (2019).
  28. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. , e3564 (2012).
  29. Poinsatte, K., et al. Quantification of neurovascular protection following repetitive hypoxic preconditioning and transient middle cerebral artery occlusion in mice. Journal of Visualized Experiments. , e52675 (2015).
  30. . ImageJ, U. S. National Institutes of Health Available from: https://imagej.nih.gov/ij (2018)
  31. Boyko, M., et al. Pyruvate’s blood glutamate scavenging activity contributes to the spectrum of its neuroprotective mechanisms in a rat model of stroke. European Journal of Neuroscience. 34, 1432-1441 (2011).
  32. Collins, T. J. ImageJ for microscopy. Biotechniques. 43, 25-30 (2007).
  33. . ImageJ, U. S. National Institutes of Health Available from: https://imagej.nih.gov/ij (1997)
  34. Kaplan, B., et al. Temporal thresholds for neocortical infarction in rats subjected to reversible focal cerebral ischemia. Stroke. 22, 1032-1039 (1991).
  35. Kumai, Y., et al. Postischemic gene transfer of soluble Flt-1 protects against brain ischemia with marked attenuation of blood-brain barrier permeability. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 27, 1152-1160 (2007).
  36. Schuleri, K. H., et al. Characterization of peri-infarct zone heterogeneity by contrast-enhanced multidetector computed tomography: a comparison with magnetic resonance imaging. Journal of the American College of Cardiology. 53, 1699-1707 (2009).
  37. Singh, A., Kukreti, R., Saso, L., Kukreti, S. Oxidative Stress: A Key Modulator in Neurodegenerative Diseases. Molecules. 24, (2019).
  38. Di Napoli, M. Caplan’s Stroke: A Clinical Approach. Journal of the American Medical Association. 302, 2600-2601 (2009).
  39. Deb, P., Sharma, S., Hassan, K. M. Pathophysiologic mechanisms of acute ischemic stroke: An overview with emphasis on therapeutic significance beyond thrombolysis. Pathophysiology. 17, 197-218 (2010).
  40. Simard, J. M., Kent, T. A., Chen, M., Tarasov, K. V., Gerzanich, V. Brain oedema in focal ischaemia: molecular pathophysiology and theoretical implications. Lancet Neurology. 6, 258-268 (2007).
  41. Klatzo, I. Pathophysiological aspects of brain edema. Acta Neuropathology. 72, 236-239 (1987).
  42. Yang, Y., Rosenberg, G. A. Blood-brain barrier breakdown in acute and chronic cerebrovascular disease. Stroke. 42, 3323-3328 (2011).
  43. Lin, T. N., He, Y. Y., Wu, G., Khan, M., Hsu, C. Y. Effect of brain edema on infarct volume in a focal cerebral ischemia model in rats. Stroke. 24, 117-121 (1993).
  44. Liu, C., et al. Increased blood-brain barrier permeability in contralateral hemisphere predicts worse outcome in acute ischemic stroke after reperfusion therapy. Journal of NeuroInterventional Surgery. 10, 937-941 (2018).
  45. Boyko, M., et al. Establishment of novel technical methods for evaluating brain edema and lesion volume in stroked rats: A standardization of measurement procedures. Brain Research. 1718, 12-21 (2019).
check_url/61309?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Frank, D., Gruenbaum, B. F., Grinshpun, J., Melamed, I., Severynovska, O., Kuts, R., Semyonov, M., Brotfain, E., Zlotnik, A., Boyko, M. Measuring Post-Stroke Cerebral Edema, Infarct Zone and Blood-Brain Barrier Breakdown in a Single Set of Rodent Brain Samples. J. Vis. Exp. (164), e61309, doi:10.3791/61309 (2020).

View Video