Summary

Dobbelt direkte injektion af blod i Cisterna Magna som en model af Subarachnoid Blødning

Published: August 30, 2020
doi:

Summary

Vi beskrev i denne protokol en standardiseret subaraknoid blødning (SAH) mus model ved en dobbelt injektion af autologt fuldblod i cisterna magna. Den høje grad af standardisering af dobbelt-injektion procedure repræsenterer en midt-til-akut model af SAH med relativ sikkerhed med hensyn til dødelighed.

Abstract

Blandt slagtilfælde, subaraknoid blødning (SAH) i træk til brud på en cerebral arteriel aneurisme udgør 5-9%, men er ansvarlig for omkring 30% af den samlede slagtilfælde-relaterede dødelighed med en vigtig sygelighed i form af neurologiske resultat. En forsinket cerebral vasospasme (CVS) kan forekomme oftest i forbindelse med en forsinket cerebral iskæmi. Forskellige dyremodeller af SAH anvendes nu, herunder endovaskulær perforering og direkte injektion af blod i cisterna magna eller endda den præchiasmatiske cisterne, der hver udviser forskellige fordele og ulemper. I denne artikel præsenteres en standardiseret musemodel af SAH ved dobbelt direkte injektion af bestemte mængder autologt fuldblod i cisterna magna. Kort, mus blev vejet og derefter bedøvet ved isofluran indånding. Derefter blev dyret placeret i en tilbagelænet position på et opvarmet tæppe, der fastholdt en rektal temperatur på 37 °C og placeret i en stereotaktisk ramme med en livmoderhalslig bøjning på ca. 30°. Når den var på plads, blev spidsen af en aflang glasmikropipette fyldt med det homologe arteriel blod taget fra halspulsåren af en anden mus af samme alder og køn (C57Bl/6J) placeret i en ret vinkel i kontakt med atlanto-occipitalmembranen ved hjælp af en mikropulmaniator. Derefter blev der injiceret 60 μL blod i cisternamagen efterfulgt af en 30° nedadgående hældning af dyret i 2 minutter. Den anden infusion af 30 μL blod i cisterna magna blev udført 24 timer efter den første. Den individuelle opfølgning af hvert dyr udføres dagligt (omhyggelig vurdering af vægt og velvære). Denne procedure giver mulighed for en forudsigelig og meget reproducerbar fordeling af blod, sandsynligvis ledsaget af intrakraniel trykhøjde, der kan efterlignes ved en tilsvarende injektion af en kunstig cerebral spinalvæske (CSF), og repræsenterer en akut til mild model af SAH inducerende lav dødelighed.

Introduction

Subaraknoid blødning (SAH) tegner sig for op til 5% af alle slagtilfælde tilfælde og udgør en forholdsvis almindelig patologi med en forekomst af 7,2 til 9 patienter pr 100.000 om året, med en dødelighed på 20% -60% afhængigt af undersøgelsen1,2,3. I den akutte fase skyldes dødeligheden sværhedsgraden af blødning, rebleeding, cerebral vasospasme (CVS) og/eller medicinske komplikationer4. Hos overlevende, tidlig hjerneskade (EBI) er forbundet med parenkymal forlængelse af blødning og brat stigning i intrakranielt tryk, hvilket kan resultere i primær cerebral iskæmi5 og øjeblikkelig død i omkring 10% -15% aftilfældene 6. Efter den indledende “akutte” fase af SAH afhænger prognosen af forekomsten af “sekundær” eller forsinket cerebral iskæmi (DCI), påvist hos næsten 40% af patienterne ved cerebral computertomografi, og hos op til 80% af patienterne efter magnetisk resonansscanning (MRI)7,8. Ud over CVS forekommer mellem 4 til 21 dage efter aneurisme brud i et flertal af SAH patienter, DCI9 kan skyldes multifaktorielle diffuse hjernelæsioner sekundære til mikrothrombose dannelse, reduceret cerebral perfusion, neuroinflammation, og kortikal spredning depression (CSD)10,11,12,13. Dette påvirker 30% af SAH overlevende og påvirker kognitive funktioner, herunder visuel hukommelse, verbal hukommelse, reaktionstid, og udøvende, visuospatial og sprogfunktioner14 forringer dagligdagen15. Nuværende standard behandlinger for at forhindre CVS og / eller de dårlige kognitive resultater hos SAH patienter er baseret på blokering af Ca2 + signalering og vasokonstriktion ved hjælp af Ca2 + kanal hæmmere som Nimodipin. Men, nyere kliniske forsøg rettet mod vasokonstriktion afslørede dissociation mellem patientens neurologiske resultat og forebyggelse af CVS16, hvilket tyder på mere komplekse patofysiologiske mekanismer, der er involveret i SAH-langsigtede konsekvenser. Derfor er der et medicinsk behov for større forståelse af antallet af patologiske hændelser, der ledsager SAH og udviklingen af gyldige og standardiserede dyremodeller for at teste originale terapeutiske indgreb.

Bruddet af en intrakraniel aneurisme mest ansvarlig for SAH hos mennesker er sandsynligvis vanskeligt at efterligne i prækliniske dyremodeller. I øjeblikket aneurisme brud og SAH situation kan forsøgsvis testes ved perforering af den midterste cerebral arterie (endovaskulær punktering model) ansvarlig for CVS og sensitivomotoriske dysfunktioner i mus17,18. På grund af den manglende mulige kontrol over blødningsdebut og udbredelsen af blod i denne model er der udviklet andre metoder hos gnavere til at generere SAH-modeller uden endovaskulære brud. Mere præcist, de består af direkte administration af arteriel blod i subaraknoid rummet gennem en enkelt eller en dobbelt injektion i magna cisterna19 eller en enkelt injektion i prechiasmatic cisterne20. Den største fordel ved disse musemodeller uden endovaskulære brud er muligheden for reproducerbart at mestre den kirurgiske procedure og kvaliteten og kvantiteten af den injicerede blodprøve. En anden fordel ved denne model i forhold til modellen ved endovaskulær perforering i særdeleshed er bevarelsen af dyrets generelle velfærd. Som en kendsgerning, denne operation er mindre invasive og teknisk mindre udfordrende end det, der kræves for at generere en carotis væg brud. I denne sidste model skal dyret intuberet og mekanisk ventileres, mens en monofilament indsættes i den eksterne halspulsåre og rykkes ind i den interne halspulsåre. Dette fører sandsynligvis til forbigående iskæmi på grund af fartøj obstruktion af tråden sti. Derfor er den co-morbiditet (døende tilstand, vigtig smerte og død) forbundet med kirurgi mindre vigtigt i dobbelt injektion model sammenlignet med endovaskulær perforering model. Ud over at være en mere konsekvent SAH er metoden med direkte indsprøjtning i overensstemmelse med dyrevelfærden inden for forskning og testning (nedsat tid under anæstesi, smerter fra vævsforstyrrelser i kirurgi og angst) og fører til et samlet minimum af dyr, der anvendes til protokolundersøgelsen og personaleuddannelsen.

Desuden giver dette mulighed for gennemførelse af den samme protokol til transgene mus, hvilket fører til en optimeret patologisk forståelse af SAH og muligheden for sammenlignende test af potentielle terapeutiske forbindelser. Her præsenterer vi en standardiseret musemodel af subaraknoid blødning (SAH) ved en dobbelt daglig injektion i træk af autolog arterielt blod i cisterna magna i 6-8 uger gamle mandlige C57Bl/6J mus. Den største fordel ved denne model er kontrol af blødningsvolumen sammenlignet med endovaskulær perforering model, og styrkelsen af blødningen begivenhed uden en drastisk stigning i intrakranielt tryk21. For nylig er den dobbelte direkte injektion af blod i cisterna magna blevet godt beskrevet på de eksperimentelle og fysiopatologiske spørgsmål i mus. Faktisk har vi for nylig vist CVS af store cerebrale arterier (basilar (BA), midten (MCA) og forreste (ACA) cerebrale arterier), cerebrovaskulær fibrin deposition og celle apoptose fra dag 3 (D3) til 10 (D10), cirkulation defekter af paravascular cerebrospinalvæske ledsaget af ændret sensitivomotor og kognitive funktioner i mus, 10 dage efter SAH i denne model22. Således gør det denne model mestret, valideret og karakteriseret for kortsigtede og langvarige begivenheder post-SAH. Det bør være ideelt egnet til fremadrettet identifikation af nye mål og til undersøgelser af potente og effektive terapeutiske strategier mod SAH-associerede komplikationer.

Protocol

Alle procedurer blev udført under H. Castels tilsyn i overensstemmelse med det franske etiske udvalg og retningslinjerne i Europa-Parlamentets direktiv 2010/63/EU og Rådet for Beskyttelse af Dyr, der anvendes til videnskabelige formål. Dette projekt blev godkendt af det lokale CENOMEXA og de nationale etiske komitéer for dyreforskning og -afprøvning. Mandlige C57Bl/6J Rj mus (Janvier), i alderen 8-12 uger, blev anbragt under kontrollerede standard miljøforhold: 22 °C ± 1 °C, 12 timer/12 timer lys / mørk cyklus,…

Representative Results

Eksperimentel tidsplan, procedure, opfølgning og dødelighedFigur 1A og figur 1B opsummerer SAH-modelprotokollen ved dobbelt intrakisternal blodinjektion. Kort sagt, på den første dag i SAH induktion (D-1), 60 μL blod trukket fra en homolog mus eller 60 μL kunstig cerebrospinalvæske (aCSF) blev injiceret i cisterna magna i SAH eller fingeret betingelser, henholdsvis. Den næste dag (D0), blev der injiceret 30 μL blod, der blev trukket…

Discussion

På trods af intensiteten af forskningen inden for SAH og udviklingen af terapeutiske strategier såsom endovaskulære og farmakologiske behandlingsmuligheder stigende i løbet af de sidste tyve år, dødeligheden er fortsat høj inden for den første uge af hospitalsindlæggelse og når omkring 50% i løbet af de følgende 6 måneder24,25. Denne nuværende prækliniske model ved daglig dobbelt injektion af homolog arterielt blod i cisterna magna…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker PRIMACEN-platformen (Normandie Rouen University, Frankrig) for billedbehandlingsudstyr og Hr. Arnaud Arabo, Julie Maucotel og fru Martine Dubois for dyreopbeboering og -pleje. Vi takker fru Celeste Nicola for at give hende sin stemme til videooptagelser af protokollen. Dette arbejde blev støttet af Seinari Normandiet modning program, Fondation AVC under ledelse af FRM, Normandie Rouen University og Inserm. Normandiet og Den Europæiske Union (3R-projektet). Europa bliver involveret i Normandiet med Den Europæiske Fond for Regionaludvikling (EFRU).

Materials

absorbable hemostat Ethicon Surgicel
absorbable suturing thread Ethicon Vicryl 5.0
auto-regulated electric blanket Harvard Apparatus 50-7087-F
bluetack for capillary fixation UHU Patafix
electronic balance Denver Instrument MXX-2001
glass capillaries Harvard Apparatus GC150F-15 inner diameter 0.86 mm
outer diameter 1.5 mm
isoflurane vaporizer Phymep V100
micropipette puller Sutter Instrument Company P-97
needle 26 G BD microbalance 300300
non absorbable suturing thread Peters surgical Filapeau 4.0
stereotaxic frame David Kopf instruments Model 902
surgical equipment Kent scientific clamp, microscissors, thin scissors
syringe 20 mL TERUMO Thermofisher 11866071

References

  1. Rincon, F., Rossenwasser, R. H., Dumont, A. The epidemiology of admissions of nontraumatic subarachnoid hemorrhage in the United States. Neurosurgery. 73 (2), 212-222 (2013).
  2. Sandvei, M. S., et al. Incidence and mortality of aneurysmal subarachnoid hemorrhage in two Norwegian cohorts, 1984-2007. Neurology. 77 (20), 1833-1839 (2011).
  3. van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).
  4. Solenski, N. J., et al. Medical complications of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a report of the multicenter, cooperative aneurysm study. Participants of the Multicenter Cooperative Aneurysm Study. Critical Care Medicine. 23 (6), 1007-1017 (1995).
  5. Cahill, J., Calvert, J. W., Zhang, J. H. Mechanisms of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 26 (11), 1341-1353 (2006).
  6. Huang, J., van Gelder, J. M. The probability of sudden death from rupture of intracranial aneurysms: a meta-analysis. Neurosurgery. 51 (5), 1101-1107 (2002).
  7. Rabinstein, A. A. Secondary brain injury after aneurysmal subarachnoid haemorrhage: more than vasospasm. Lancet Neurology. 10 (7), 593-595 (2011).
  8. Kivisaari, R. P., et al. MR Imaging After Aneurysmal Subarachnoid Hemorrhage and Surgery: A Long-term Follow-up Study. American Journal of Neuroradiology. 22 (6), 1143-1148 (2001).
  9. Mayberg, M. R., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. A statement for healthcare professionals from a special writing group of the Stroke Council, American Heart Association. Stroke. 25 (11), 2315-2328 (1994).
  10. Dankbaar, J. W., et al. Relationship between vasospasm, cerebral perfusion, and delayed cerebral ischemia after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neuroradiology. 51 (12), 813-819 (2009).
  11. Sehba, F. A., Hou, J., Pluta, R. M., Zhang, J. H. The importance of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Progress in Neurobiology. 97 (1), 14-37 (2012).
  12. Miller, B. A., Turan, N., et al. Inflammation, vasospasm, and brain injury after subarachnoid hemorrhage. BioMed Res Int. 2014, 384342 (2014).
  13. Dreier, J. P., et al. Delayed ischaemic neurological deficits after subarachnoid haemorrhage are associated with clusters of spreading depolarizations. Brain. 129, 3224-3237 (2006).
  14. Mayer, S., et al. Global and domain-specific cognitive impairment and outcome after subarachnoid hemorrhage. Neurology. 59 (11), 1750-1758 (2002).
  15. Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 41 (8), 519-536 (2010).
  16. Macdonald, R. L., et al. Randomized trial of clazosentan in patients with aneurysmal subarachnoid hemorrhage undergoing endovascular coiling. Stroke. 43 (6), 1463-1469 (2012).
  17. Parra, A., et al. Mouse model of subarachnoid hemorrhage associated cerebral vasospasm: methodological analysis. Neurological Research. 24 (5), 510-516 (2002).
  18. Schuller, K., Buhler, D., Plesnila, N. A murine model of subarachnoid hemorrhage. Journal of Visualized Experiments. (81), e50845 (2013).
  19. Lin, C. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  20. Sabri, M., et al. Anterior circulation mouse model of subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1295, 179-185 (2009).
  21. Leclerc, J. L., et al. A Comparison of Pathophysiology in Humans and Rodent Models of Subarachnoid Hemorrhage. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 71 (2018).
  22. El Amki, M., et al. Long-Lasting Cerebral Vasospasm, Microthrombosis, Apoptosis and Paravascular Alterations Associated with Neurological Deficits in a Mouse Model of Subarachnoid Hemorrhage. Molecular Neurobiology. 55 (4), 2763-2779 (2018).
  23. Clavier, T., et al. Association between vasoactive peptide urotensin II in plasma and cerebral vasospasm after aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a potential therapeutic target. Journal of Neurosurgery. , 1-11 (2018).
  24. Kundra, S., Mahendru, V., Gupta, V., Choudhary, A. K. Principles of neuroanesthesia in aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Journal of Anaesthesiology Clinical Pharmacology. 30 (3), 328-337 (2014).
  25. Schertz, M., et al. Incidence and Mortality of Spontaneous Subarachnoid Hemorrhage in Martinique. PLOS ONE. 11 (5), 0155945 (2016).
  26. Lin, C. -. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  27. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. -. A. Experimental subarachnoid hemorrhage: subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models. Neurosurgery. 52 (1), 165-176 (2003).
  28. Turowski, B., et al. New angiographic measurement tool for analysis of small cerebral vessels: application to a subarachnoid haemorrhage model in the rat. Neuroradiology. 49 (2), 129-137 (2007).
  29. Boyko, M., et al. The neuro-behavioral profile in rats after subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1491, 109-116 (2013).
  30. Muñoz-Sánchez, M. &. #. 1. 9. 3. ;., et al. Urotensinergic system genes in experimental subarachnoid hemorrhage. Medicina Intensiva (English Edition). 41 (8), 468-474 (2017).
  31. Delgado, T., Brismar, J., Svendgaard, N. A. Subarachnoid haemorrhage in the rat: angiography and fluorescence microscopy of the major cerebral arteries. Stroke. 16 (4), 595-602 (1985).
  32. Solomon, R. A., Antunes, J. L., Chen, R., Bland, L., Chien, S. Decrease in cerebral blood flow in rats after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke. 16 (1), 58-64 (1985).
  33. Ram, Z., Sahar, A., Hadani, M. Vasospasm due to massive subarachnoid haemorrhage-a rat model. Acta Neurochirurgica. 110 (3-4), 181-184 (1991).
  34. Glenn, T. C., et al. Subarachnoid hemorrhage induces dynamic changes in regional cerebral metabolism in rats. Journal of Neurotrauma. 19 (4), 449-466 (2002).
  35. Gules, I., Satoh, M., Clower, B. R., Nanda, A., Zhang, J. H. Comparison of three rat models of cerebral vasospasm. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 283 (6), 2551-2559 (2002).
  36. Sabri, M., et al. Mechanisms of microthrombi formation after experimental subarachnoid hemorrhage. Neuroscience. 224, 26-37 (2012).
  37. Jeon, H., Ai, J., Sabri, M., Tariq, A., Macdonald, R. Learning deficits after experimental subarachnoid hemorrhage in rats. Neuroscience. 169 (4), 1805-1814 (2010).
  38. Silasi, G., Colbourne, F. Long-term assessment of motor and cognitive behaviours in the intraluminal perforation model of subarachnoid hemorrhage in rats. Behavioural Brain Researchearch. 198 (2), 380-387 (2009).
  39. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).
  40. Bederson, J. B., et al. Acute vasoconstriction after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 42 (2), 352-362 (1998).
  41. Park, I. -. S., et al. Subarachnoid hemorrhage model in the rat: modification of the endovascular filament model. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 195-200 (2008).
  42. Vanden Bergh, W., et al. Magnetic resonance imaging in experimental subarachnoid haemorrhage. Acta Neurochirurgica. 147 (9), 977-983 (2005).
  43. Peng, J., et al. LRP1 activation attenuates white matter injury by modulating microglial polarization through Shc1/PI3K/Akt pathway after subarachnoid hemorrhage in rats. Redox Biology. 21, 101121 (2019).
  44. Okada, T., et al. Selective Toll-Like Receptor 4 Antagonists Prevent Acute Blood-Brain Barrier Disruption After Subarachnoid Hemorrhage in Mice. Molecular Neurobiology. 56 (2), 976-985 (2019).
  45. Tiebosch, I. A., et al. Progression of brain lesions in relation to hyperperfusion from subacute to chronic stages after experimental subarachnoid hemorrhage: a multiparametric MRI study. Cerebrovascular Diseases. 36 (3), 167-172 (2013).
  46. Weidauer, S., Vatter, H., Dettmann, E., Seifert, V., Zanella, F. E. Assessment of vasospasm in experimental subarachnoid hemorrhage in rats by selective biplane digital subtraction angiography. Neuroradiology. 48 (3), 176-181 (2006).
  47. Lee, J. Y., Huang, D. L., Keep, R., Sagher, O. Characterization of an improved double hemorrhage rat model for the study of delayed cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 168 (2), 358-366 (2008).
  48. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PloS one. 7 (3), 33366 (2012).
  49. Piepgras, A., Thome, C., Schmiedek, P. Characterization of an anterior circulation rat subarachnoid hemorrhage model. Stroke. 26 (12), 2347-2352 (1995).
  50. Rosenberg, G. A., Mun-Bryce, S., Wesley, M., Kornfeld, M. Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats. Stroke. 21 (5), 801-807 (1990).
  51. Raslan, F., et al. A modified double injection model of cisterna magna for the study of delayed cerebral vasospasm following subarachnoid hemorrhage in rats. Experimental & Translational Stroke Medicine. 4 (1), 23 (2012).
  52. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PLoS One. 7 (3), 33366 (2012).
  53. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65 (2), 331-343 (2009).
  54. Guresir, E., et al. The effect of common carotid artery occlusion on delayed brain tissue damage in the rat double subarachnoid hemorrhage model. Acta Neurochir (Wien). 154 (1), 11-19 (2012).
  55. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58 (6), 1190-1197 (2006).
  56. Leonardo, C. C., Robbins, S., Doré, S. Translating basic science research to clinical application: models and strategies for intracerebral hemorrhage. Frontiers in Neurology. 3, 85 (2012).
  57. Feiler, S., Friedrich, B., Schöller, K., Thal, S. C., Plesnila, N. Standardized induction of subarachnoid hemorrhage in mice by intracranial pressure monitoring. Journal of Neuroscience Methods. 190 (2), 164-170 (2010).
  58. Westermaier, T., Jauss, A., Eriskat, J., Kunze, E., Roosen, K. Acute vasoconstriction: decrease and recovery of cerebral blood flow after various intensities of experimental subarachnoid hemorrhage in rats. Journal of Neurosurgery. 110 (5), 996-1002 (2009).
  59. van Lieshout, J. H., et al. An introduction to the pathophysiology of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neurosurgical Review. 41 (4), 917-930 (2018).
  60. Conzen, C., et al. The Acute Phase of Experimental Subarachnoid Hemorrhage: Intracranial Pressure Dynamics and Their Effect on Cerebral Blood Flow and Autoregulation. Translational Stroke Research. 10 (5), 566-582 (2019).
  61. Connolly, E. S., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a guideline for healthcare professionals from the American Heart Association/american Stroke Association. Stroke. 43 (6), 1711-1737 (2012).
check_url/61322?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pedard, M., El Amki, M., Lefevre-Scelles, A., Compère, V., Castel, H. Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage. J. Vis. Exp. (162), e61322, doi:10.3791/61322 (2020).

View Video