Summary

Halogeneret agent levering i svin Model af akut respiratorisk distress syndrom via en intensiv afdeling Type Device

Published: September 24, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver en model af saltsyre-induceret akut respiratorisk nødsyndrom (ARDS) hos smågrise, der modtager sedation med halogenerede midler, isoflurane og sevoflurane, gennem en enhed, der anvendes til inhaleret intensivbehandlingsedation. Denne model kan bruges til at undersøge de biologiske mekanismer af halogenerede stoffer på lungeskade og reparation.

Abstract

Akut respiratorisk nødsyndrom (ARDS) er en almindelig årsag til hypoxæmisk respirationssvigt og død hos kritisk syge patienter, og der er et presserende behov for at finde effektive behandlinger. Prækliniske undersøgelser har vist, at inhalerede halogenerede stoffer kan have gavnlige virkninger i dyremodeller af ARDS. Udviklingen af nye enheder til administration af halogenerede midler ved hjælp af moderne intensivafdeling (ICU) ventilatorer har væsentligt forenklet udleveringen af halogenerede midler til intensivpatienter. Fordi tidligere eksperimentel og klinisk forskning foreslog potentielle fordele ved halogenerede flygtige stoffer, såsom sevoflurane eller isoflurane, for lunge alveolær epitelskade og betændelse, to patofysiologiske landemærker for diffuse alveolær skader under ARDS, vi designet et dyr model til at forstå mekanismerne i virkningerne af halogenerede midler på lungeskade og reparation. Efter generel anæstesi, luftrørsinubation og initiering af mekanisk ventilation blev ARDS induceret hos smågrise via intratracheal instillation af saltsyre. Derefter blev smågrisene bedøvet med inhaleret sevoflurane eller isoflurane ved hjælp af en ICU-type enhed, og dyrene blev ventileret med lungebeskyttende mekanisk ventilation i løbet af en 4 timers periode. I løbet af undersøgelsesperioden blev der indsamlet blod- og alveolærprøver for at evaluere arteriel iltning, permeabiliteten af alveolær-kapillærmembranen, alveolær væske clearance og lungebetændelse. Mekanisk ventilationsparametre blev også indsamlet under hele eksperimentet. Selv om denne model induceret et markant fald i arteriel iltning med ændret alveolær-kapillær permeabilitet, Det er reproducerbart og er karakteriseret ved en hurtig debut, god stabilitet over tid, og ingen fatale komplikationer.

Vi har udviklet en grisemodel af syre aspiration, der reproducerer de fleste af de fysiologiske, biologiske og patologiske træk ved klinisk ARDS, og det vil være nyttigt at fremme vores forståelse af de potentielle lungebeskyttende virkninger af halogenerede stoffer leveret gennem enheder, der anvendes til inhaleret ICU-sedation.

Introduction

Akut respiratorisk nødsyndrom (ARDS) er en almindelig årsag til hypoxæmisk respirationssvigt og død hos kritisk syge patienter1. Det er karakteriseret ved både diffuse alveolær epitel og endotelskader, hvilket fører til øget permeabilitet og lungeødem, ændret alveolær væske clearance (AFC) og forværret åndedrætsbesvær2. Resorption af alveolær ødem og nyttiggørelse fra ARDS kræver epitelvæske transport gennem alveolen for at forblive intakt, hvilket tyder på, at en terapi forbedre AFC kunne være nyttigt3,4. Selv om lungebeskyttende ventilation og en restriktiv strategi for intravenøs væsketerapi har vist sig gavnlig med hensyn til at forbedre resultaterne2,5, er de stadig forbundet med høj dødelighed og sygelighed6. Derfor er der et presserende behov for at udvikle effektive behandlinger for syndromet og for bedre at forstå de præcise mekanismer, hvorigennem sådanne behandlinger kan arbejde.

Halogenerede bedøvelsesmidler, såsom isoflurane eller sevoflurane, har været meget udbredt til generel anæstesi på operationsstuen. Sevoflurane er forbundet med nedsat betændelse i lungerne hos patienter, der gennemgår thoraxkirurgi, og med et fald i postoperative lungekomplikationer, såsom ARDS7. Lignende resultater er blevet fundet i en meta-analyse af patienter efter hjertekirurgi8. Halogenerede flygtige stoffer har også en bronkodiilatorisk virkning9,10 og måske nogle egenskaber, der beskytter flere organer, såsom hjertet8,11 og nyrerne12,13,14. For nylig har der været stigende interesse for klinisk brug af inhaleret bedøvelsesmidler som beroligende midler på intensivafdelingen (ICU). Både dyre- og humane undersøgelser understøtter de beskyttende virkninger af forbehandling med halogenerede midler før langvarig iskæmi i leveren15, hjernen16eller hjertet11. Halogenerede midler har også potentielle farmakokinetiske og farmakodynamiske fordele i forhold til andre intravenøse midler til sedation af kritisk syge patienter, herunder en hurtig indtræden af handling og hurtig offset på grund af ringe ophobning i væv. Inhalerede halogenerede stoffer nedsætter intuberingstider sammenlignet med intravenøs sedation hos patienter, der gennemgår hjertekirurgi17. Flere undersøgelser understøtter sikkerheden og effekten af halogenerede stoffer i sedationen af intensivpatienter18,19,20. I eksperimentelle modeller af ARDS forbedrer inhaleret sevoflurane gasudveksling21,22, reducerer alveolær ødem21,22og svækker både lunge- og systemisk betændelse23. Isoflurane også forbedre lunge reparation efter skade ved at opretholde integriteten af alveolær-kapillær barriere, eventuelt ved at modulere udtrykket af en vigtig stram junction protein24,25,26. Hertil kommer, at mus makrofager, der blev kultiveret og behandlet med isoflurane havde bedre fagoccytiske virkninger på neutrofiler end makrofager, der ikke blev behandlet med isoflurane27.

De præcise biologiske veje og mekanismer, der tegner sig for flygtige bedøvelsesmidlers lungebeskyttende egenskaber, er dog stort set ukendte indtil nu, hvilket kræver yderligere undersøgelse18. Yderligere undersøgelser er også berettiget til at undersøge de præcise virkninger af sevoflurane på lungeskade og for at kontrollere, om eksperimentel dokumentation kan oversættes til patienter. Det første randomiserede kontrolforsøg fra vores team fandt, at administrationen af inhaleret sevoflurane hos patienter med ARDS var forbundet med iltningsforbedring og reducerede niveauer af både proinflammatoriske cytokiner og lungeepileleskademarkører, som vurderet af plasma- og alveolæropløsereceptorer til avancerede glycation-slutprodukter (sRAGE)28 . Da sRAGE nu betragtes som en markør for alveolær type 1 celleskade og en vigtig mægler af alveolær betændelse, kan disse resultater tyde på nogle gavnlige virkninger af sevoflurane på lunge alveolær epitelskade21,29,30.

Brugen af halogenerede midler til inhaleret intensiv ICU sedation har længe krævet operationsstue anæstesi ventilatorer og gas vaporizers, der skal anvendes på intensiv. Siden da er der udviklet bedøvelsesreflektorer, der er egnede til brug med moderne ventilatorer til kritisk pleje, til specifik brug på intensiv31. Disse enheder har modificerede varme- og fugtudvekslingsfiltre, der er indsat mellem Y-stykket af åndedrætskredsløbet og endotrachealrøret. De tillader administration af halogenerede stoffer, hvor isoflurane og sevoflurane er de hyppigst anvendte, og de består af en porøs polypropylenfordamperstang, hvori et likvidsmiddel, leveret af en bestemt sprøjtepumpe, frigives. Halogeneret middel absorberes under udløb af et reflekterende medium indeholdt i enheden, og det frigives under den næste inspiration, hvilket gør det muligt at recirkulation af ca. 90% af det udløbne halogenerede middel31,32. For nylig blev en miniaturiseret version af enheden udviklet med et instrumentalt dødt rum på 50 mL, hvilket gør den endnu mere egnet til brug under ultrabeskyttende ventilation hos ARDS-patienter med tidevandsmængder, der kunne være så lave som 200 mL31. En sådan miniaturiseret enhed er aldrig blevet undersøgt i en eksperimentel grisemodel af ARDS.

Fordi tidligere forskning understøtter de lovende roller halogenerede flygtige stoffer i lunge alveolær betændelse og skade under ARDS, vi designet en eksperimentel dyremodel for at opnå en translationel forståelse af mekanismerne i virkningerne af halogenerede stoffer på lungeskade og reparation33,34,35. I denne undersøgelse udviklede vi en model af saltsyre (HCl)-induceret ARDS hos smågrise, hvor inhaleret sedation kan leveres ved hjælp af den miniaturiserede version af bedøvelsesenheden, en ICU-type enhed. Denne store dyremodel af ARDS kunne bruges til at fremme vores forståelse af de potentielle lungebeskyttende virkninger af inhalerede halogenerede stoffer.

Protocol

Studieprotokollen blev godkendt af den dyreetiske komité under den franske Ministère de l’Education Nationale, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche (godkendelsesnummer 01505.03), før den blev registreret på preclinicaltrials.eu (Præklinisk registeridentifikator PCTE0000129). Alle procedurer blev udført i Centre International de Chirurgie Endoscopique, Université Clermont Auvergne, Clermont-Ferrand, Frankrig, i overensstemmelse med Animal Research: Reporting In Vivo Experiments…

Representative Results

Til dette forsøg blev 25 smågrise bedøvet og opdelt i to grupper: 12 smågrise i den ubehandlede gruppe (SHAM-gruppen) og 13 smågrise i den syreskadede gruppe (HCl-gruppen). Ingen smågris døde inden forsøgets afslutning. En tovejs analyse af gentagne målinger af variansen (RM-ANOVA) indikerede en betydelig tid efter gruppeinteraktion (P < 10−4) med en skadelig virkning af HCl-induceret ARDS på PaO2/FiO2sammenlignet med falske dyr uden ARDS (figur 3…

Discussion

I denne artikel beskrives en reproducerbar eksperimentel model af ARDS forårsaget af intratracheal instillation af HCl hos smågrise for at undersøge de lungebeskyttende virkninger af halogenerede flygtige stoffer, såsom sevoflurane eller isoflurane, leveret ved hjælp af en bedøvelsesanordning.

Det primære mål med denne undersøgelse var at udvikle en eksperimentel model af ARDS, hvor flygtige stoffer kunne leveres af en bedøvelsesenhed, såsom dem, der anvendes til intensivpatienter. …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke personalet fra GreD, Université Clermont Auvergne og Centre International de Chirurgie Endoscopique (alle i Clermont-Ferrand, Frankrig).

Materials

Tracheal intubation
Endotracheal tube 6-mm Covidien 18860
Animal preparation
Central venous catheter 3-lumens catheter (7 French – 16 cm) Arrow CV-12703
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO catheter (3-5 French – 20 cm) Getinge Pulsion Medical System catheter
Warm blankets WarmTouch5300 MedTronic 5300
Monitoring
External monitor IntelliVue MP40 Phillips MNT 142
Point-of-care blood gas analyzer Epoc® Blood Analysis System Siemens 20093
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO Device PulsioFlex Monitor Getinge Pulsion Medical System PulsioFlex
Mechanical ventilation
Ventilator Engström Carestation General Electrics Engström
Halogenated anesthetics
Anaconda Syringe SedanaMedical 26022
Anesthetic conserving device AnaConDa-S SedanaMedical 26050
Charcoal filter FlurAbsorb SedanaMedical 26096
Filling Adaptaters SedanaMedical 26042
Ionomer membrane dryer line Nafion SedanaMedical 26053
Products
Propofol Mylan 66617123
Isoflurane Virbac QN01AB06
Pentobarbital PanPharma 68942457
Sevoflurane Abbvie N01AB08
Sufentanil Mylan 62404996

References

  1. ARDS Definition Task Force et al. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 307 (23), 2526-2533 (2012).
  2. Thompson, B. T., Chambers, R. C., Liu, K. D. Acute Respiratory Distress Syndrome. The New England Journal of Medicine. 377 (6), 562-572 (2017).
  3. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  4. McAuley, D. F., Frank, J. A., Fang, X., Matthay, M. A. Clinically relevant concentrations of beta2-adrenergic agonists stimulate maximal cyclic adenosine monophosphate-dependent airspace fluid clearance and decrease pulmonary edema in experimental acid-induced lung injury. Critical Care Medicine. 32 (7), 1470-1476 (2004).
  5. Fan, E., et al. An official American thoracic society/European society of intensive care medicine/society of critical care medicine clinical practice guideline: Mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (9), 1253-1263 (2017).
  6. Bellani, G., et al. Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acute respiratory distress syndrome in intensive care units in 50 countries. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 315 (8), 788-800 (2016).
  7. De Conno, E., et al. Anesthetic-induced improvement of the inflammatory response to one-lung ventilation. Anesthesiology. 110 (6), 1316-1326 (2009).
  8. Uhlig, C., et al. Effects of volatile anesthetics on mortality and postoperative pulmonary and other complications in patients undergoing surgery: A systematic review and meta-analysis. Anesthesiology: The Journal of the American Society of Anesthesiologists. 124 (6), 1230-1245 (2016).
  9. Campagna, J. A., Miller, K. W., Forman, S. A. Mechanisms of actions of inhaled anesthetics. The New England Journal of Medicine. 348 (21), 2110-2124 (2003).
  10. Dikmen, Y., Eminoglu, E., Salihoglu, Z., Demiroluk, S. Pulmonary mechanics during isoflurane, sevoflurane and desflurane anaesthesia. Anaesthesia. 58 (8), 745-748 (2003).
  11. Hert, S. G. D., et al. Choice of primary anesthetic regimen can influence intensive care unit length of stay after coronary surgery with cardiopulmonary bypass. Anesthesiology. 101 (1), 9-20 (2004).
  12. Hashiguchi, H., et al. Isoflurane protects renal function against ischemia and reperfusion through inhibition of protein kinases, JNK and ERK. Anesthesia and Analgesia. , 1584-1589 (2005).
  13. Fukazawa, K., Lee, H. T. Volatile anesthetics and AKI: risks, mechanisms, and a potential therapeutic window. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 25 (5), 884-892 (2014).
  14. Obal, D., Rascher, K., Favoccia, C., Dettwiler, S., Schlack, W. Post-conditioning by a short administration of desflurane reduced renal reperfusion injury after differing of ischaemia times in rats. British Journal of Anaesthesia. 97 (6), 783-791 (2006).
  15. Lv, X., et al. Isoflurane preconditioning at clinically relevant doses induce protective effects of heme oxygenase-1 on hepatic ischemia reperfusion in rats. BMC Gastroenterology. 11, 31 (2011).
  16. Sakai, H., et al. Isoflurane provides long-term protection against focal cerebral ischemia in the rat. Anesthesiology. 106 (1), 92-99 (2007).
  17. Jerath, A., et al. Volatile-based short-term sedation in cardiac surgical patients: a prospective randomized controlled trial. Critical Care Medicine. 43 (5), 1062-1069 (2015).
  18. Jerath, A., Parotto, M., Wasowicz, M., Ferguson, N. D. Volatile Anesthetics. Is a New Player Emerging in Critical Care Sedation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (11), 1202-1212 (2016).
  19. Perbet, S., et al. A pharmacokinetic study of 48-hour sevoflurane inhalation using a disposable delivery system (AnaConDa®) in ICU patients. Minerva Anestesiologica. 80 (6), 655-665 (2014).
  20. Mesnil, M., et al. Long-term sedation in intensive care unit: a randomized comparison between inhaled sevoflurane and intravenous propofol or midazolam. Intensive Care Medicine. 37 (6), 933-941 (2011).
  21. Schläpfer, M., et al. Sevoflurane reduces severity of acute lung injury possibly by impairing formation of alveolar oedema. Clinical and Experimental Immunology. 168 (1), 125-134 (2012).
  22. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung Injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  23. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  24. Englert, J. A., et al. Isoflurane Ameliorates Acute Lung Injury by Preserving Epithelial Tight Junction Integrity. Anesthesiology. 123 (2), 377-388 (2015).
  25. Li, Q. F., Zhu, Y. S., Jiang, H., Xu, H., Sun, Y. Isoflurane preconditioning ameliorates endotoxin-induced acute lung injury and mortality in rats. Anesthesia and Analgesia. 109 (5), 1591-1597 (2009).
  26. Reutershan, J., Chang, D., Hayes, J. K., Ley, K. Role of a reduction of cytokine levels in isoflurane-mediated protection from endotoxin-induced lung Injury. Anesthesiology. 105 (6), 1280-1281 (2006).
  27. Du, X., et al. Isoflurane promotes phagocytosis of apoptotic neutrophils through AMPK-mediated ADAM17/Mer signaling. PloS One. 12 (7), 0180213 (2017).
  28. Jabaudon, M., et al. Sevoflurane for Sedation in Acute Respiratory Distress Syndrome. A Randomized Controlled Pilot Study. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (6), 792-800 (2017).
  29. Yue, T., et al. Postconditioning with a volatile anaesthetic in alveolar epithelial cells in vitro. The European Respiratory Journal: Official Journal of the European Society for Clinical Respiratory Physiology. 31 (1), 118-125 (2008).
  30. Blondonnet, R., Constantin, J. M., Sapin, V., Jabaudon, M. A pathophysiologic approach to biomarkers in acute respiratory distress syndrome. Disease Markers. 2016, 3501373 (2016).
  31. Farrell, R., Oomen, G., Carey, P. A technical review of the history, development and performance of the anaesthetic conserving device “AnaConDa” for delivering volatile anaesthetic in intensive and post-operative critical care. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 32 (4), 595-604 (2018).
  32. Sturesson, L. W., Bodelsson, M., Jonson, B., Malmkvist, G. Anaesthetic conserving device AnaConDa: dead space effect and significance for lung protective ventilation. British Journal of Anaesthesia. 113 (3), 508-514 (2014).
  33. Blondonnet, R., et al. RAGE inhibition reduces acute lung injury in mice. Scientific Reports. 7 (1), 7208 (2017).
  34. Jabaudon, M., et al. Soluble receptor for advanced glycation end-products predicts impaired alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 192 (2), 191-199 (2015).
  35. Jabaudon, M., et al. Soluble forms and ligands of the receptor for advanced glycation end-products in patients with acute respiratory distress syndrome: An observational prospective study. PloS One. 10 (8), 0135857 (2015).
  36. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 8, 1000412 (2010).
  37. Audard, J., et al. Inhibition of the receptor for advanced glycation end-products in acute respiratory distress syndrome: A randomised laboratory trial in piglets. Scientific Reports. 9 (1), 9227 (2019).
  38. Wu, C. W., et al. Intra-operative neural monitoring of thyroid surgery in a porcine model. Journal of Visualized Experiments. (144), e57919 (2019).
  39. Russ, M., et al. Lavage-induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of visualized experiments. (115), e53610 (2016).
  40. Marumo, C. K., et al. Hemodynamic effects of PEEP in a porcine model of HCl-induced mild acute lung injury. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 53 (2), 190-202 (2009).
  41. Ambrosio, A. M., et al. Effects of positive end-expiratory pressure titration and recruitment maneuver on lung inflammation and hyperinflation in experimental acid aspiration-induced lung injury. Anesthesiology. 117 (6), 1322-1334 (2012).
  42. Sackey, P. V., Martling, C. R., Granath, F., Radell, P. J. Prolonged isoflurane sedation of intensive care unit patients with the Anesthetic Conserving Device. Critical Care Medicine. 32 (11), 2241-2246 (2004).
  43. Blanchard, F., et al. Minimal alveolar concentration for deep sedation (MAC-DS) in intensive care unit patients sedated with sevoflurane: A physiological study. Anaesthesia, Critical Care & Pain. , (2020).
  44. Verghese, G. M., Ware, L. B., Matthay, B. A., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport and the resolution of clinically severe hydrostatic pulmonary edema. Journal of Applied Physiology. 87 (4), 1301-1312 (1999).
  45. Sakuma, T., et al. Alveolar fluid clearance in the resected human lung. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 150 (2), 305-310 (1994).
  46. Matthay, M. A., Wiener-Kronish, J. P. Intact epithelial barrier function is critical for the resolution of alveolar edema in humans. The American Review of Respiratory Disease. 142 (6), 1250-1257 (1990).
  47. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  48. Ware, L. B., Golden, J. A., Finkbeiner, W. E., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport capacity in reperfusion lung injury after lung transplantation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159 (3), 980-988 (1999).
  49. Constantin, J. M., et al. Response to recruitment maneuver influences net alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. Anesthesiology. 106 (5), 944-951 (2007).
  50. Kemming, G. I., et al. Effects of perfluorohexan vapor on gas exchange, respiratory mechanics, and lung histology in pigs with lung injury after endotoxin infusion. Anesthesiology. 103 (3), 585-594 (2005).
  51. Matute-Bello, G., et al. An official American Thoracic Society workshop report: features and measurements of experimental acute lung injury in animals. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 44 (5), 725-738 (2011).
  52. Chiew, Y. S., et al. Physiological relevance and performance of a minimal lung model: an experimental study in healthy and acute respiratory distress syndrome model piglets. BMC Pulmonary Medicine. 12, 59 (2012).
  53. Hochhausen, N., et al. Optimizing PEEP by Electrical Impedance Tomography in a Porcine Animal Model of ARDS. Respiratory Care. 62 (3), 340-349 (2017).
  54. Fu, H., Sun, M., Miao, C. Effects of different concentrations of isoflurane pretreatment on respiratory mechanics, oxygenation and hemodynamics in LPS-induced acute respiratory distress syndrome model of juvenile piglets. Experimental Lung Research. 41 (8), 415-421 (2015).
  55. Yehya, N. Lessons learned in acute respiratory distress syndrome from the animal laboratory. Annals of Translational Medicine. 7 (19), 503 (2019).
  56. Hochhausen, N., et al. Comparison of two experimental ARDS models in pigs using electrical impedance tomography. PloS One. 14 (11), 0225218 (2019).
  57. Shaver, C. M., et al. Cell-free hemoglobin: a novel mediator of acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 310 (6), 532-541 (2016).
  58. Matthay, M. A., et al. Acute respiratory distress syndrome. Nature Reviews. Disease Primers. 5 (1), 18 (2019).
  59. Martin, T. R., Matute-Bello, G. Experimental models and emerging hypotheses for acute lung injury. Critical Care Clinics. 27 (3), 735-752 (2011).
  60. Light, R. W., Gary Lee, Y. C. . Textbook of Pleural Diseases Second Edition. , (2008).
  61. Laferriere-Langlois, P., d’Arogon, F., Manzanares, W. Halogenated volatile anesthetics in the intensive care unit: current knowledge on an upcoming practice. Minerva Anestesiologica. 83 (7), 737-748 (2017).
  62. Devlin, J. W., et al. Clinical Practice Guidelines for the Prevention and Management of Pain, Agitation/Sedation, Delirium, Immobility, and Sleep Disruption in Adult Patients in the ICU. Critical Care Medicine. 46 (9), 825-873 (2018).
  63. DAS-Taskforce 2015 et al. Evidence and consensus based guideline for the management of delirium, analgesia, and sedation in intensive care medicine. Revision 2015 (DAS-Guildeline 2015) – short version. German Medical Science: GMS e-journal. 13, (2015).
  64. O’Gara, B., Talmor, D. Lung protective properties of the volatile anesthetics. Intensive Care Medicine. 42 (9), 1487-1489 (2016).
  65. Murthy, S., Gomersall, C. D., Fowler, R. A. Care for critically ill patients with COVID-19. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  66. Liao, X., Wang, B., Kang, Y. Novel coronavirus infection during the 2019-2020 epidemic: preparing intensive care units-the experience in Sichuan Province, China. Intensive Care Medicine. 46 (2), 357-360 (2020).
  67. Grasselli, G., Pesenti, A., Cecconi, M. Critical care utilization for the COVID-19 outbreak in Lombardy, Italy: Early experience and forecast during an emergency response. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  68. Arentz, M., et al. Characteristics and outcomes of 21 critically ill patients with COVID-19 in Washington State. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  69. Xu, Z., et al. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. The Lancet. Respiratory Medicine. 8 (4), 420-422 (2020).
  70. Ferrando, C., et al. but not propofol, reduces the lung inflammatory response and improves oxygenation in an acute respiratory distress syndrome model: a randomised laboratory study. European Journal of Anaesthesiology. 30 (8), 455-463 (2013).
  71. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  72. Suter, D., et al. The immunomodulatory effect of sevoflurane in endotoxin-injured alveolar epithelial cells. Anesthesia and Analgesia. 104 (3), 638-645 (2007).
  73. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  74. Blondonnet, R., et al. In vitro method to control concentrations of halogenated gases in cultured alveolar epithelial cells. Journal of Visualized Experiments. (144), e58554 (2018).
  75. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: Anesthetic considerations in preclinical research. ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 53 (1), 55-69 (2012).
check_url/61644?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Blondonnet, R., Paquette, B., Audard, J., Guler, R., Roman, F., Zhai, R., Belville, C., Blanchon, L., Godet, T., Futier, E., Bazin, J., Constantin, J., Sapin, V., Jabaudon, M. Halogenated Agent Delivery in Porcine Model of Acute Respiratory Distress Syndrome via an Intensive Care Unit Type Device. J. Vis. Exp. (163), e61644, doi:10.3791/61644 (2020).

View Video