Summary

En musemodell av lumbal rygg ustabilitet

Published: April 23, 2021
doi:

Summary

Vi utviklet en lumbal intervertebral plate degenerasjon mus modell ved reseksjon av L3-L5 spinous prosesser sammen med supra- og inter-spinous leddbånd og løsrivelse av paraspinous muskler.

Abstract

Intervertebral plate degenerasjon (IDD) er en vanlig patologisk forandring som fører til ryggsmerter. Hensiktsmessige dyremodeller er ønsket for å forstå de patologiske prosessene og evaluere nye stoffer. Her introduserte vi en kirurgisk indusert lumbale ryggrads-ustabilitet (LSI) musemodell som utvikler IDD fra 1 uke etter operasjonen. I detalj ble musen under anestesi drevet av lav rygg hud snitt, L3-L5 spinous prosesser eksponering, løsrivelse av paraspinøse muskler, reseksjon av prosesser og leddbånd, og hudlukking. L4–L5 IVDer ble valgt for observasjonen. LSI-modellen utvikler lumbal IDD av porøsitet og hypertrofi i endeplater på et tidlig stadium, reduksjon i mellomvirvelskivevolum, krymping i kjernemasse på et mellomliggende stadium, og bentap i lumbal ryggvirvler (L5) på et senere tidspunkt. LSI-musemodellen har fordelene med sterk operabilitet, ingen krav til spesialutstyr, reproduserbarhet, billig og relativt kort periode med IDD-utvikling. Imidlertid er LSI-operasjonen fortsatt et traume som forårsaker betennelse i løpet av den første uken etter operasjonen. Dermed er denne dyremodellen egnet for studie av lumbale IDD.

Introduction

Intervertebral plate degenerasjon (IDD) er ofte sett i aldring og til og med unge mennesker forårsaket av mange faktorer1. Kirurgi for pasienter som lider av IDD, forårsaker ryggsmerter og nedsatt bevegelse, utføres vanligvis på et senere tidspunkt eller i alvorlige tilfeller og har potensielle risikoer som ikke-enhet eller infeksjon2. Ideell ikke-operativ behandling krever omfattende forståelse av IDD-mekanismen. IDD-dyremodellen fungerer som et avgjørende verktøy for studier av IDD-mekanisme og evaluering av IDD-behandling.

Større dyr har blitt valgt for IDD-modeller som primater, sauer, geiter, hunder og kaniner på grunn av deres likhet med menneskelig anatomisk struktur i stor grad og den sterke driften når det gjelder størrelse på mellomvirvelskiver (IVDer)3,4,5,6,7,8. Imidlertid er disse dyremodellene tidkrevende og kostnadskrevende9. Mus IVD er en dårlig representasjon av den menneskelige IVD basert på geometriske målinger av størrelsesforholdet, kjernemasse til skiveområdeforhold og normalisert høyde10. Til tross for forskjellen i størrelse, viser muslumbal IVD-segmentet mekaniske egenskaper som ligner på menneskelig IVD som kompresjon og torsjonsstivhet11. I tillegg har mus-IDD-modellen fordelen av lav pris, relativt kort IDD-utvikling og flere alternativer for genetisk modifiserte dyr og antistoffer som brukes i ytterligere mekanistiske studier12,13,14,15.

Eksperimentelle IDD-modeller varierer fra indusere og applikasjoner. For eksempel er kollagenseindusert ekstracellulær matrise (ECM) degenerasjon egnet for ECM regenereringsforskning16. Genmodifisert fenotype er egnet for å studere genfunksjonen i IDD-prosessen og i genetiske terapier17. Annulus fibrosus snitt og røyk modeller etterligne traumer og ikke-betennelse indusert IDD12,18.

Spinal ustabilitet (SI) fører til en ustabil ryggrad som ikke er i en optimal tilstand av likevekt. Det kan skyldes unormal bevegelse av et lumbal bevegelsessegment på grunn av svakheten i det omkringliggende støttende vevet som leddbånd og muskler. Det er også ofte sett etter spinal fusjonsoperasjon19. SI regnes som hovedårsaken til IDD. Derfor tar vi sikte på å utvikle en SI-musmodell (fokusert på lumbal ryggraden) som etterligner den menneskelige IDD-prosessen20,21.

I protokollen introduserte vi prosedyren for å etablere lumbal spinal ustabilitet (LSI) musemodell ved reseksjon av lumbal tredje (L3) til lumbal femte (L5) spinøse prosesser sammen med supraspinous og interspinous ligaments (Figur 1A, B). Dyremodellen utvikler IDD allerede i 1 uke etter operasjonen, som vist ved hypertrofi og porøsitet i endeplater (EPer). IVD-volumet begynner å reduseres 2 uker etter operasjonen gjennom 16 uker sammen med økt IVD-skår, noe som indikerer graden av IDD. Vi mener at den detaljerte og visualiserte prosedyren er nyttig for forskere å etablere LSI-musemodellen i laboratoriet og søke på IDD-forskning etter behov.

Protocol

Undersøkelsene beskrevet er i samsvar med retningslinjene for pleie og bruk av laboratoriedyr ved National Institutes of Health og ble godkjent av Shanghai University of Traditional Chinese Medicine Animal Care and Use Committee. Alle kirurgiske manipulasjoner ble utført under dyp anestesi og dyrene opplevde ikke smerte på noe tidspunkt under prosedyren. 1. Forberedelse før drift Instrumentsterilisering: Dampsterilisere kirurgiske instrumenter i en autoklav (121 °C i 15 minutter…

Representative Results

LSI-musemodellen brukes i studier av IDD-mekanisme, IDD-behandling, endplate (EP) degenerasjon som sklerose og sensorisk innervering i EP20,21,22,23. LSI-musen utvikler IDD- og EP degenerative endringer, som identifisert, av redusert IVD-volum og -høyde, økt EP-volum og økte IVD- og EP-poengsummer. Den dissekerte og faste nedre thorax- og lumbalryggen ble undersø…

Discussion

Vi utviklet lumbal ryggraden ustabilitet mus modell basert på cervical spondylose mus modell der bakre paravertebrale muskler fra ryggvirvlene ble løsnet og spinøse prosesser sammen med supraspinous og interspinous leddbånd ble resected25. Vi utførte en lignende operasjon på lumbal ryggraden, som har mer fremtredende spinøse prosesser. LSI-musemodellen utviklet lignende IDD i lumbalryggen.

Fordelene med LSI-modellen inkluderer sterk operabilitet, ingen krav til s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (81973607) og Essential Drug Research and Development (2019ZX09201004-003-032) fra Kinas vitenskaps- og teknologidepartement.

Materials

Chlortetracycline Hydrochloride Eye Ointment Shanghai General Pharmaceutical Co., Ltd. H31021931 Prevent eye dry, Prevent wound infection
C57BL/6J male mice Tian-jiang Pharmaceuticals Company (Jiangsu, CN) SCXK2018-0004 Animal model
Disposable medical towel Henan Huayu Medical Devices Co., Ltd. 20160090 Platform for surgical operation
Inhalant anesthesia equipment MIDMARK Matrx 3000 Anesthesia
Isoflurane Shenzhen RWD Life Technology Co., Ltd. 1903715 Anesthesia
Lidocaine hydrochloride Shandong Hualu Pharmaceutical Co., Ltd. H37022839 Pain relief
Medical suture needle Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 20S0401J Suture skin
Ophthalmic forceps Shanghai Medical Devices (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory JD1050 Clip the skin
Ophthalmic scissors(10cm) Shanghai Medical Devices (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory Y00030 Skin incision
silk braided Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 11V0820 Suture skin
Small animal trimmer Shanghai Feike Electric Co., Ltd. FC5910 Hair removal
Sterile surgical blades(12#) Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 35T0707 Muscle incision
Veet hair removal cream RECKITT BENCKISER (India) Ltd NA Hair removal
Venus shears Mingren medical equipment Length:12.5cm Clip the muscle and spinous process

References

  1. Makino, H., et al. Lumbar disc degeneration progression in young women in their 20’s: a prospective ten-year follow up. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 22 (4), 635-640 (2017).
  2. Lee, Y. C., Zotti, M. G. T., Osti, O. L. Operative management of lumbar degenerative disc disease. Asian Spine Journal. 10 (4), 801-819 (2016).
  3. Wei, F., et al. In vivo experimental intervertebral disc degeneration induced by bleomycin in the rhesus monkey. BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 340 (2014).
  4. Lim, K. Z., et al. Ovine lumbar intervertebral disc degeneration model utilizing a lateral retroperitoneal drill bit injury. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (123), e55753 (2017).
  5. Zhang, Y., et al. Histological features of the degenerating intervertebral disc in a goat disc-injury model. Spine. 36 (19), 1519-1527 (2011).
  6. Bergknut, N., et al. The dog as an animal model for intervertebral disc degeneration. Spine. 37 (5), 351-358 (2012).
  7. Kong, M. H., et al. Rabbit Model for in vivo Study of Intervertebral Disc Degeneration and Regeneration. Journal of Korean Neurosurgical Society. 44 (5), 327-333 (2008).
  8. Gullbrand, S. E., et al. A large animal model that recapitulates the spectrum of human intervertebral disc degeneration. Osteoarthritis and Cartilage. 25 (1), 146-156 (2017).
  9. Jin, L., Balian, G., Li, X. J. Animal models for disc degeneration-an update. Histology and Histopathology. 33 (6), 543-554 (2018).
  10. O’Connell, G. D., Vresilovic, E. J., Elliott, D. M. Comparative intervertebral disc anatomy across several animal species. 52nd Annual Meeting of the Orthopaedic Research Society. , (2006).
  11. Elliott, D. M., Sarver, J. J. Young investigator award winner: validation of the mouse and rat disc as mechanical models of the human lumbar disc. Spine. 29 (7), 713-722 (2004).
  12. Ohnishi, T., et al. In vivo mouse intervertebral disc degeneration model based on a new histological classification. Plos One. 11 (8), 0160486 (2016).
  13. Vo, N., et al. Accelerated aging of intervertebral discs in a mouse model of progeria. Journal of Orthopaedic Research. 28 (12), 1600-1607 (2010).
  14. Oichi, T., et al. A mouse intervertebral disc degeneration model by surgically induced instability. Spine. 43 (10), 557-564 (2018).
  15. Ohnishi, T., Sudo, H., Tsujimoto, T., Iwasaki, N. Age-related spontaneous lumbar intervertebral disc degeneration in a mouse model. Journal of Orthopaedic Research. 36 (1), 224-232 (2018).
  16. Stern, W. E., Coulson, W. F. Effects of collagenase upon the intervertebral disc in monkeys. Journal of Neurosurgery. 44 (1), 32-44 (1976).
  17. Silva, M. J., Holguin, N. LRP5-deficiency in OsxCreERT2 mice models intervertebral disc degeneration by aging and compression. bioRxiv. , (2019).
  18. Nemoto, Y., et al. Histological changes in intervertebral discs after smoking and cessation: experimental study using a rat passive smoking model. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11 (2), 191-197 (2006).
  19. Mulholland, R. C. The myth of lumbar instability: the importance of abnormal loading as a cause of low back pain. European Spine Journal. 17 (5), 619-625 (2008).
  20. Bian, Q., et al. Mechanosignaling activation of TGFβ maintains intervertebral disc homeostasis. Bone Research. 5, 17008 (2017).
  21. Bian, Q., et al. Excessive activation of tgfβ by spinal instability causes vertebral endplate sclerosis. Scientific Reports. 6, 27093 (2016).
  22. Ni, S., et al. Sensory innervation in porous endplates by Netrin-1 from osteoclasts mediates PGE2-induced spinal hypersensitivity in mice. Nature Communications. 10 (1), 5643 (2019).
  23. Liu, S., Cheng, Y., Tan, Y., Dong, J., Bian, Q. Ligustrazine prevents intervertebral disc degeneration via suppression of aberrant tgfβ activation in nucleus pulposus cells. BioMed Research International. 2019, 5601734 (2019).
  24. Boos, N., et al. Classification of age-related changes in lumbar intervertebral discs: 2002 Volvo Award in basic science. Spine. 27 (23), 2631-2644 (2002).
  25. Miyamoto, S., Yonenobu, K., Ono, K. Experimental cervical spondylosis in the mouse. Spine. 16, 495-500 (1991).
check_url/61722?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liu, S., Sun, Y., Dong, J., Bian, Q. A Mouse Model of Lumbar Spine Instability. J. Vis. Exp. (170), e61722, doi:10.3791/61722 (2021).

View Video