Summary

Мышь Модель поясничного позвоночника нестабильности

Published: April 23, 2021
doi:

Summary

Мы разработали поясничную межпозвонковую модель дегенерации диска мыши путем ресекции L3-L5 спиновых процессов наряду с над- и межколовых связок и отслоения параспинозных мышц.

Abstract

Межпозвонковая дегенерация диска (IDD) является распространенным патологическим изменением, ведущим к боли в пояснице. Необходимы соответствующие модели животных для понимания патологических процессов и оценки новых препаратов. Здесь мы представили хирургически индуцированной поясничной нестабильности позвоночника (LSI) мыши модель, которая развивается IDD, начиная с 1 недели после операции. В деталях мышь под наркозом оперировали разрезом нижней части спинки спинного сустава, L3-L5 спинозговой экспозицией процессов, отслоением параспинозных мышц, ресекцией процессов и связок, закрытием кожи. Для наблюдения были выбраны L4-L5 IVD. Модель LSI развивает поясничный IDD по пористости и гипертрофии в конечных пластинах на ранней стадии, уменьшение объема межпозвонкового диска, усадка в ядре пульпу на промежуточной стадии, и потеря костной массы поясничных позвонков (L5) на более позднем этапе. Модель мыши LSI имеет преимущества сильной работы, не требует специального оборудования, воспроизводимости, недорогой, и относительно короткий период развития IDD. Тем не менее, операция LSI по-прежнему травма, которая вызывает воспаление в течение первой недели после операции. Таким образом, эта модель животного подходит для изучения поясничного IDD.

Introduction

Межпозвонковая дегенерация диска (IDD) широко наблюдается у пожилых людей и даже молодых людей, вызванных многимифакторами 1. Хирургия для пациентов, которые страдают от IDD, вызывая боли в пояснице и нарушения движения, как правило, выполняется на более поздней стадии или в тяжелых случаях и имеет потенциальные риски, такие как несоюз илиинфекция 2. Идеальное неосуществимое лечение требует всестороннего понимания механизма ИДД. Модель IDD животных служит важным инструментом для изучения механизма IDD и оценки лечения IDD.

Более крупные животные были выбраны для IDD моделей, таких как приматы, овцы, козы, собаки и кролики из-за их сходства с анатомической структурой человека в значительной степени и сильной оперируемости с точки зрения размера межпозвоночных дисков (IVDs)3,4,5,6,7,8. Тем не менее, эти модели животных являются трудоемкими и экономическиинтенсивными 9. Мышь IVD является плохое представление человека IVD на основе геометрических измерений соотношения сторон, ядра пульпус к соотношению области диска, и нормализованнойвысоты 10. Несмотря на разницу в размерах, мышь поясничного сегмента IVD обладает механическими свойствами, похожими на IVD человека, такими как сжатие и жесткостьксерсиона 11. Кроме того, модель мыши IDD имеет преимущество низкой стоимости, относительно короткие разработки IDD, и больше вариантов для генетически модифицированных животных и антител, используемых в дальнейшихмеханистических исследований 12,13,14,15.

Экспериментальные модели IDD отличаются от индукторов и приложений. Например, дегенерация внеклеточной матрицы (ECM), вызванная коллагеназой, подходит для исследования регенерации ECM16. Генетически модифицированный фенотип подходит для изучения функции гена в процессе IDD и в генетической терапии17. Annulus волокнистый разрез и дым модели имитируют травмы и не-воспаление индуцированной IDD12,18.

Нестабильность позвоночника (СИ) приводит к нестабильному позвоночнику, который находится не в оптимальном состоянии равновесия. Это может быть вызвано ненормальным движением поясничного сегмента движения из-за слабости окружающих поддерживающих тканей, таких как связки и мышцы. Он также часто видели после операции синтеза позвоночника19. SI считается основной причиной IDD. Таким образом, мы стремимся разработать модель СИ мышей (сосредоточены на поясничном отделе позвоночника), который имитирует процессидентификации человека 20,21.

В протоколе мы ввели процедуру установления поясничной нестабильности позвоночника (LSI) мышиной модели путем ресекции поясничной трети (L3) до поясничного пятого (L5) спинных процессов наряду с надпозиционными и межспинистыми связками(рисунок 1A,B). Модель животных развивает IDD уже через 1 неделю после операции, о чем свидетельствуют гипертрофия и пористость в конечных пластинах (EPs). Объем IVD начинает уменьшаться через 2 недели после операции в течение 16 недель вместе с увеличенным показателем IVD, что указывает на степень IDD. Мы считаем, что подробная и визуализирована процедура полезна для исследователей, чтобы установить модель мыши LSI в своей лаборатории и применять к исследованиям IDD по мере необходимости.

Protocol

Описанные исследования соответствуют Руководящим принципам по уходу и использованию лабораторных животных Национальных институтов здравоохранения и были одобрены Шанхайский университет традиционной китайской медицины уход за животными и использования комитета. Все хирургические…

Representative Results

Модель мыши LSI применяется в исследованиях механизма IDD, лечения IDD, дегенерации эндплейт (EP), такой как склероз, и сенсорной иннервации в EP20,21,22,23. Мышь LSI разрабатывает IDD и EP дегенеративные изменения, как было определен…

Discussion

Мы разработали модель поясничной нестабильности позвоночника мыши на основе модели мыши шейного спондилоза, в которой задние парапозвонковые мышцы из позвонков были отделены и спинные процессы вместе с супраспинозными и межспыльными связками были resected25. Мы провели анал?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (81973607) и Основными исследованиями и разработками лекарственных препаратов (2019-X09201004-003-032) от Министерства науки и техники Китая.

Materials

Chlortetracycline Hydrochloride Eye Ointment Shanghai General Pharmaceutical Co., Ltd. H31021931 Prevent eye dry, Prevent wound infection
C57BL/6J male mice Tian-jiang Pharmaceuticals Company (Jiangsu, CN) SCXK2018-0004 Animal model
Disposable medical towel Henan Huayu Medical Devices Co., Ltd. 20160090 Platform for surgical operation
Inhalant anesthesia equipment MIDMARK Matrx 3000 Anesthesia
Isoflurane Shenzhen RWD Life Technology Co., Ltd. 1903715 Anesthesia
Lidocaine hydrochloride Shandong Hualu Pharmaceutical Co., Ltd. H37022839 Pain relief
Medical suture needle Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 20S0401J Suture skin
Ophthalmic forceps Shanghai Medical Devices (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory JD1050 Clip the skin
Ophthalmic scissors(10cm) Shanghai Medical Devices (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory Y00030 Skin incision
silk braided Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 11V0820 Suture skin
Small animal trimmer Shanghai Feike Electric Co., Ltd. FC5910 Hair removal
Sterile surgical blades(12#) Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd. 35T0707 Muscle incision
Veet hair removal cream RECKITT BENCKISER (India) Ltd NA Hair removal
Venus shears Mingren medical equipment Length:12.5cm Clip the muscle and spinous process

References

  1. Makino, H., et al. Lumbar disc degeneration progression in young women in their 20’s: a prospective ten-year follow up. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 22 (4), 635-640 (2017).
  2. Lee, Y. C., Zotti, M. G. T., Osti, O. L. Operative management of lumbar degenerative disc disease. Asian Spine Journal. 10 (4), 801-819 (2016).
  3. Wei, F., et al. In vivo experimental intervertebral disc degeneration induced by bleomycin in the rhesus monkey. BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 340 (2014).
  4. Lim, K. Z., et al. Ovine lumbar intervertebral disc degeneration model utilizing a lateral retroperitoneal drill bit injury. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (123), e55753 (2017).
  5. Zhang, Y., et al. Histological features of the degenerating intervertebral disc in a goat disc-injury model. Spine. 36 (19), 1519-1527 (2011).
  6. Bergknut, N., et al. The dog as an animal model for intervertebral disc degeneration. Spine. 37 (5), 351-358 (2012).
  7. Kong, M. H., et al. Rabbit Model for in vivo Study of Intervertebral Disc Degeneration and Regeneration. Journal of Korean Neurosurgical Society. 44 (5), 327-333 (2008).
  8. Gullbrand, S. E., et al. A large animal model that recapitulates the spectrum of human intervertebral disc degeneration. Osteoarthritis and Cartilage. 25 (1), 146-156 (2017).
  9. Jin, L., Balian, G., Li, X. J. Animal models for disc degeneration-an update. Histology and Histopathology. 33 (6), 543-554 (2018).
  10. O’Connell, G. D., Vresilovic, E. J., Elliott, D. M. Comparative intervertebral disc anatomy across several animal species. 52nd Annual Meeting of the Orthopaedic Research Society. , (2006).
  11. Elliott, D. M., Sarver, J. J. Young investigator award winner: validation of the mouse and rat disc as mechanical models of the human lumbar disc. Spine. 29 (7), 713-722 (2004).
  12. Ohnishi, T., et al. In vivo mouse intervertebral disc degeneration model based on a new histological classification. Plos One. 11 (8), 0160486 (2016).
  13. Vo, N., et al. Accelerated aging of intervertebral discs in a mouse model of progeria. Journal of Orthopaedic Research. 28 (12), 1600-1607 (2010).
  14. Oichi, T., et al. A mouse intervertebral disc degeneration model by surgically induced instability. Spine. 43 (10), 557-564 (2018).
  15. Ohnishi, T., Sudo, H., Tsujimoto, T., Iwasaki, N. Age-related spontaneous lumbar intervertebral disc degeneration in a mouse model. Journal of Orthopaedic Research. 36 (1), 224-232 (2018).
  16. Stern, W. E., Coulson, W. F. Effects of collagenase upon the intervertebral disc in monkeys. Journal of Neurosurgery. 44 (1), 32-44 (1976).
  17. Silva, M. J., Holguin, N. LRP5-deficiency in OsxCreERT2 mice models intervertebral disc degeneration by aging and compression. bioRxiv. , (2019).
  18. Nemoto, Y., et al. Histological changes in intervertebral discs after smoking and cessation: experimental study using a rat passive smoking model. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11 (2), 191-197 (2006).
  19. Mulholland, R. C. The myth of lumbar instability: the importance of abnormal loading as a cause of low back pain. European Spine Journal. 17 (5), 619-625 (2008).
  20. Bian, Q., et al. Mechanosignaling activation of TGFβ maintains intervertebral disc homeostasis. Bone Research. 5, 17008 (2017).
  21. Bian, Q., et al. Excessive activation of tgfβ by spinal instability causes vertebral endplate sclerosis. Scientific Reports. 6, 27093 (2016).
  22. Ni, S., et al. Sensory innervation in porous endplates by Netrin-1 from osteoclasts mediates PGE2-induced spinal hypersensitivity in mice. Nature Communications. 10 (1), 5643 (2019).
  23. Liu, S., Cheng, Y., Tan, Y., Dong, J., Bian, Q. Ligustrazine prevents intervertebral disc degeneration via suppression of aberrant tgfβ activation in nucleus pulposus cells. BioMed Research International. 2019, 5601734 (2019).
  24. Boos, N., et al. Classification of age-related changes in lumbar intervertebral discs: 2002 Volvo Award in basic science. Spine. 27 (23), 2631-2644 (2002).
  25. Miyamoto, S., Yonenobu, K., Ono, K. Experimental cervical spondylosis in the mouse. Spine. 16, 495-500 (1991).
check_url/61722?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liu, S., Sun, Y., Dong, J., Bian, Q. A Mouse Model of Lumbar Spine Instability. J. Vis. Exp. (170), e61722, doi:10.3791/61722 (2021).

View Video