Summary

Avaliando a capacidade de manuseio de lipídios em camundongos

Published: November 24, 2020
doi:

Summary

Este artigo fornece três ensaios fáceis e acessíveis para avaliar o metabolismo lipídico em camundongos.

Abstract

Avaliar o metabolismo lipídico é uma pedra angular da avaliação da função metabólica, e é considerado essencial para estudos de metabolismo in vivo. Lipídios são uma classe de muitas moléculas diferentes com muitas vias envolvidas em sua síntese e metabolismo. É necessário um ponto de partida para avaliar a hemostasia lipídica para pesquisa nutricional e obesidade. Este artigo descreve três métodos fáceis e acessíveis que requerem pouca experiência ou prática para dominar, e que podem ser adaptados pela maioria dos laboratórios para testar anormalidades lipídicas-metabolismo em camundongos. Estes métodos são (1) medir várias moléculas lipídicas de soro de jejum usando kits comerciais (2) ensaios para a capacidade de manuseio de lipídios dietéticos através de um teste de tolerância intralipídica oral, e (3) avaliando a resposta a um composto farmacêutico, CL 316.243, em camundongos. Juntos, esses métodos fornecerão uma visão geral de alto nível da capacidade de manuseio lipída e lipída em camundongos.

Introduction

Carboidratos e lipídios são dois substratos principais para o metabolismo energético. O metabolismo lipídico aberrante resulta em muitas doenças humanas, incluindo diabetes tipo II, doenças cardiovasculares, doenças hepáticas gordurosas e cânceres. Lipídios dietéticos, principalmente triglicérides, são absorvidos pelo intestino no sistema linfático e entram na circulação venosa em chylomicrons perto do coração1. Os lipídios são transportados por partículas de lipoproteína na corrente sanguínea, onde as moieties do ácido graxo são liberadas pela ação da lipoproteína lipase em órgãos periféricos como tecido muscular e adiposo2. As partículas remanescentes remanescentes são limpas pelo fígado3. Camundongos têm sido amplamente utilizados em laboratórios como modelo de pesquisa para estudar o metabolismo lipídico. Com conjuntos genéticos abrangentes disponíveis e um ciclo de reprodução relativamente curto, eles são um modelo poderoso para estudar como os lipídios são absorvidos, sintetizados e metabolizados.

Devido à complexidade do metabolismo lipídico, estudos lipidômicos sofisticados ou estudos de rastreador isotópico são geralmente usados para quantificar coleções de espécies lipídicas ou fluxos metabólicos relacionados a lipídios e destinos4,5. Isso cria um enorme desafio para pesquisadores sem equipamento especializado ou expertise. Neste artigo, apresentamos três ensaios que podem servir como testes iniciais antes de técnicas tecnicamente desafiadoras serem utilizadas. São procedimentos não terminais para os camundongos e, portanto, muito úteis para identificar possíveis diferenças na capacidade de manuseio de lipídios e reduzir os processos afetados.

Primeiro, medir moléculas de lipídios de soro de jejum pode ajudar a verificar o perfil lipídudo geral de um rato. Os camundongos devem ser jejuados, pois muitas espécies lipídicas aumentam após as refeições, e a extensão do aumento é fortemente afetada pela composição da dieta. Muitas moléculas lipídicas, incluindo colesterol total, triglicerídeo e ácido graxo não esterificado (NEFA), podem ser medidas usando um kit comercial e um leitor de placas que podem ler absorvância.

Em segundo lugar, um teste de tolerância intralipídica oral avalia a capacidade de manuseio lipídico como um efeito líquido da absorção e metabolismo. Um intralipídio administrado oralmente causa um pico nos níveis de triglicerídeos circulantes (1-2 horas), após o qual os níveis de triglicerídeos de soro retornam aos níveis basais (4-6 horas). Este ensaio oferece informações sobre o quão bem um rato pode lidar com os lipídios exógenos. Coração, fígado e tecido adiposo marrom são consumidores ativos de triglicérides, enquanto o tecido adiposo branco o armazena como uma reserva de energia. Mudanças nessas funções levarão a diferenças nos resultados dos testes.

Por fim, promover a lipólise para mobilizar lipídios armazenados é considerado uma possível estratégia para a perda de peso. A via de sinalização do receptor β3-adrenérgico no tecido adiposo desempenha um papel importante na lipólise adipócito, e a genética humana identificou uma perda de função polimorfismo Trp64Arg em receptor β3-adrenérgico correlacionado com a obesidade6. Cl 316.243, um agonista específico e potente receptor β3-adrenérgico, estimula a lipólise tecidual adiposa e a liberação de glicerol. A avaliação da resposta de um rato à CL 316.243 pode fornecer informações valiosas sobre o desenvolvimento, melhoria e compreensão da eficácia do composto.

Coletivamente, esses testes podem ser usados como uma tela inicial para alterações no estado metabólico lipídeto dos camundongos. São escolhidos para a acessibilidade dos instrumentos e reagentes. Com os resultados derivados desses ensaios, os pesquisadores podem formar uma imagem geral da aptidão metabólica de seus animais e decidir sobre abordagens mais sofisticadas e direcionadas.

Protocol

Os animais estão alojados em condições padronizadas após os protocolos experimentais e de cuidados com animais aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Baylor College of Medicine (BCM). Os animais são alimentados com uma dieta padrão ou especial, ad libitum de água, e mantidos com um ciclo dia/noite de 12 horas. 1. Medição de lipídios de soro de jejum Transfira ratos para uma nova gaiola após as 17h e rápido com acesso gratuito à água, durant…

Representative Results

Mostramos com três trechos que cada ensaio oferece informações valiosas sobre o metabolismo lipídico dos camundongos. Para os camundongos machos C57BL/6J, desafiados por oito semanas de alimentação de dieta rica em gordura (HFD) a partir das oito semanas de idade, os níveis totais de colesterol foram significativamente elevados, enquanto os triglicerídeos de soro e NEFA não foram(Tabela 1),sugerindo que o triglicerídeo e o NEFA no sangue não são regulados predominantemente por um desafio de g…

Discussion

Os três ensaios descritos funcionam robustamente no laboratório, com algumas considerações críticas. O jejum noturno é necessário para determinar os níveis lipídes de soro de jejum e o teste de tolerância intralipídica oral. Para o teste de tolerância intralipídida oral, é fundamental girar o sangue à temperatura ambiente para minimizar a formação de uma camada de gordura, especialmente nos pontos de tempo de 1 e 2 horas; é importante não descartar essa camada de gordura se ela se formar. Certifique-se…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho é apoiado pelos Institutos Nacionais de Saúde (NIH), subvenção R00-DK114498, e pelo Departamento de Agricultura dos Estados Unidos (USDA), conceder CRIS: 3092-51000-062 a Y. Z.

Materials

20% Intralipid Sigma Aldrich I141
BD Slip Tip Sterile Syringes 1ml Shaotong B07F1KRMYN
CL 316,243 Hydrate Sigma-Aldrich C5976
Curved Feeding Needles (18 Gauge) Kent Scientific FNC-18-2-2
Free Glycerol Reagent Sigma Aldrich F6428
Glycerol Standard Solution Sigma G7793
HR SERIES NEFA-HR(2)COLOR REAGENT A Fujifilm Wako Diagnostics 999-34691
HR SERIES NEFA-HR(2)COLOR REAGENT B Fujifilm Wako Diagnostics 991-34891
HR SERIES NEFA-HR(2)SOLVENT A Fujifilm Wako Diagnostics 995-34791
HR SERIES NEFA-HR(2)SOLVENT B Fujifilm Wako Diagnostics 993-35191
Ketamine Vedco 50989-161-06
Matrix Plus Chemistry Reference Kit Verichem 9500
Micro Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-222-168
Microhematrocrit Capillary Tube, Not Heparanized Fisher Scientific 22-362-574
NEFA STANDARD SOLUTION Fujifilm Wako Diagnostics 276-76491
Phosphate Buffered Saline Boston Bioproducts BM-220
Thermo Scientific Triglycerides Reagent Fisher Scientific TR22421
Total Cholesterol Reagents Thermo Scientifi TR13421
Xylazine Henry Schein 11695-4022-1

References

  1. Dixon, J. B. Mechanisms of chylomicron uptake into lacteals. Annals of the New York Academy of Sciences. 1207, 52-57 (2010).
  2. Nuno, J., de Oya, M. Lipoprotein lipase: review. Revista Clínica Española. 170 (3-4), 83-87 (1983).
  3. Williams, K. J. Molecular processes that handle — and mishandle — dietary lipids. Journal of Clinical Investigation. 118 (10), 3247-3259 (2008).
  4. Burla, B., et al. MS-based lipidomics of human blood plasma: a community-initiated position paper to develop accepted guidelines. Journal of Lipid Research. 59 (10), 2001-2017 (2018).
  5. Umpleby, A. M. Hormone measurement guidelines: Tracing lipid metabolism: the value of stable isotopes. Journal of Endocrinology. 226 (3), 1-10 (2015).
  6. Mitchell, B. D., et al. A paired sibling analysis of the beta-3 adrenergic receptor and obesity in Mexican Americans. Journal of Clinical Investigation. 101 (3), 584-587 (1998).
  7. Mahoney, L. B., Denny, C. A., Seyfried, T. N. Caloric restriction in C57BL/6J mice mimics therapeutic fasting in humans. Lipids in Health and Disease. 5, 13 (2006).
  8. Hayek, T., et al. Dietary fat increases high density lipoprotein (HDL) levels both by increasing the transport rates and decreasing the fractional catabolic rates of HDL cholesterol ester and apolipoprotein (Apo) A-I. Presentation of a new animal model and mechanistic studies in human Apo A-I transgenic and control mice. Journal of Clinical Investigation. 91 (4), 1665-1671 (1993).
  9. Hogarth, C. A., Roy, A., Ebert, D. L. Genomic evidence for the absence of a functional cholesteryl ester transfer protein gene in mice and rats. Comparative Biochemistry and Physiology – Part B: Biochemistry & Molecular Biology. 135 (2), 219-229 (2003).
  10. Tall, A. R. Functions of cholesterol ester transfer protein and relationship to coronary artery disease risk. Journal of Clinical Lipidology. 4 (5), 389-393 (2010).
  11. Singh, A. K., Singh, R. Triglyceride and cardiovascular risk: A critical appraisal. Indian Journal of Endocrinology and Metabolism. 20 (4), 418-428 (2016).
  12. Miller, M., et al. Triglycerides and cardiovascular disease: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation. 123 (20), 2292-2333 (2011).
  13. Dron, J. S., Hegele, R. A. Genetics of Hypertriglyceridemia. Frontiers in Endocrinology (Lausanne). 11, 455 (2020).
  14. Dole, V. P. A relation between non-esterified fatty acids in plasma and the metabolism of glucose. Journal of Clinical Investigation. 35 (2), 150-154 (1956).
  15. Bartelt, A., et al. Brown adipose tissue activity controls triglyceride clearance. Nature Medicine. 17 (2), 200-205 (2011).
  16. de Souza, C. J., Burkey, B. F. Beta 3-adrenoceptor agonists as anti-diabetic and anti-obesity drugs in humans. Current Pharmaceutical Design. 7 (14), 1433-1449 (2001).
  17. Braun, K., Oeckl, J., Westermeier, J., Li, Y., Klingenspor, M. Non-adrenergic control of lipolysis and thermogenesis in adipose tissues. Journal of Experimental Biology. 221, (2018).
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Cite This Article
Huang, M., Mathew, N., Zhu, Y. Assessing Whole-Body Lipid-Handling Capacity in Mice. J. Vis. Exp. (165), e61927, doi:10.3791/61927 (2020).

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