Summary

פרוטוקול מיצוי DNA יתוש מבוסס חרוז מגנטי לרצף הדור הבא

Published: April 15, 2021
doi:

Summary

מתואר כאן פרוטוקול מיצוי DNA באמצעות חרוזים מגנטיים כדי לייצר עקירות DNA באיכות גבוהה יתושים. עקירות אלה מתאימות לגישת רצף של הדור הבא במורד הזרם.

Abstract

פרוטוקול מיצוי DNA שפורסם לאחרונה באמצעות חרוזים מגנטיים ומכשיר מיצוי DNA אוטומטי הציע כי ניתן לחלץ DNA באיכות גבוהה וכמות מיתוש בודד שמור היטב מספיק עבור ריצוף גנום שלם במורד הזרם. עם זאת, הסתמכות על מכשיר מיצוי DNA אוטומטי יקר יכולה להיות אסורה עבור מעבדות רבות. כאן, המחקר מספק פרוטוקול מיצוי DNA מבוסס חרוז מגנטי ידידותי לתקציב, אשר מתאים לתפוקה נמוכה עד בינונית. הפרוטוקול המתואר כאן נבדק בהצלחה באמצעות דגימות יתושים Aedes aegypti בודדים. העלויות המופחתות הקשורות להפקת דנ”א באיכות גבוהה יגדילו את היישום של רצף תפוקה גבוהה למעבדות ומחקרים מוגבלים במשאבים.

Introduction

פיתוח לאחרונה של פרוטוקול מיצוי DNA משופר1 אפשר מחקרים רבים בעלי השפעה גבוהה במורד הזרם מעורבים רצף גנום שלם2,3,4,5,6. פרוטוקול מיצוי DNA מבוסס חרוז מגנטי זה מספק תפוקת DNA אמינה מדגימות יתושים בודדות, אשר בתורו מפחית את העלות ואת הזמן הקשורים לרכישת מספר מספיק של דגימות מאוספי שדה.

ההתקדמות האחרונה בגנומיקה של אוכלוסיה ונוף מתואמת ישירות עם הפחתת עלויות של ריצוף גנום שלם. למרות פרוטוקול חילוץ ה- DNA הקודם1 מגביר את היעילות הקשורה לרצף תפוקה גבוהה, מעבדות / מחקרים קטנים יותר ללא הכספים עשויים לבטל את השימוש בכלי הנוף החדשים והחזקים האלה וגנומיקה באוכלוסייה בשל עלויות יישום הפרוטוקול (למשל, עלויות של מכשירים מיוחדים).

כאן, פרוטוקול מיצוי DNA שונה מוצג המשתמש בצעד מיצוי חרוז מגנטי דומה כמו נימן ואח‘1 כדי להשיג DNA טוהר גבוה אבל לא מסתמך על מכשירים בעלות גבוהה עבור תמיסת רקמות ומיצוי DNA. פרוטוקול זה מתאים לניסויים הדורשים >10 ננוגרם של DNA באיכות גבוהה.

Protocol

1. אחסון דגימות כללי ותכשירים לפני הפקת DNA לחות את המדגם במים 100 μL PCR בכיתה עבור 1 שעות (או לילה) ב 4 °C (7 °F) אם המדגם כבר מאוחסן >70% אלכוהול כדי לרכך את הרקמה. 2. הפרעה לדוגמה הגדר אינקובטור או בלוק חום רועד ב 56 °C (56 °F). הפוך פרוטאינאז K (PK) חוצץ / תערובת אנזימים. 2 μL ש…

Representative Results

תפוקת הדנ”א הממוצעת לכל רקמת ראש/בית החזה של יתוש הייתה 4.121 ננוגרם/μL (N = 92, סטיית תקן 3.513) שנמדדה באמצעות פלואורומטר כאשר נעשה בה שימוש ב-100 מיקרו-אל של חיץ אילוטיון. זה מספיק עבור דרישות קלט DNA גנומי 10-30 ננומי הדרושות לבניית ספריית גנום שלמה1,7. כמות ה- DNA יכולה להש…

Discussion

הפרוטוקול המתואר כאן יכול להיות מותאם למינים אחרים של חרקים. הגרסה המקורית של הפרוטוקול שהוצגה בניימן ואח‘1 נבדקה על מינים מרובים, כולל Aedes aegypti, Ae. busckii, Ae. taeniorhynchus, Anopheles arabiensis, An. coluzzii, An. coustani, An. darlingi, An. funestus, An. gambiae, An. quadriannulatus, An. rufipes, Culex pipiens, Cx. quinquefasciatus, Cx. theileri, Drosophila suzukii, Chrysome…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מכירים בתמיכה במימון מרכז המצוינות האזורי דרום מערב האוקיינוס השקט למחלות המועברות בווקטורים הממומן על ידי המרכזים לבקרת מחלות ומניעתן בארה”ב (הסכם שיתוף פעולה 1U01CK000516), מענק ה- CDC NU50CK0000420-04-04, המכון הלאומי למזון וחקלאות של משרד החקלאות של USDA (פרויקט הצוהר 1025565), מלגת המעבדה לאנטומולוגיה רפואית UF / IFAS פלורידה לטס-יו צ’ן, NSF CAMTech IUCRC שלב II מענק (AWD05009_MOD0030) ופלורידה מחלקת הבריאות (חוזה CODQJ). הממצאים והמסקנות במאמר זה הם אלה של המחברים ואינם מייצגים בהכרח את השקפותיו של שירות הדגים וחיות הבר של ארה”ב.

Materials

AE Buffer Qiagen 19077 Elution buffer
AL Buffer Qiagen 19075 Lysis buffer
AW1 Buffer Qiagen 19081 Washing buffer 1
AW2 Buffer Qiagen 19072 Washing buffer 2
MagAttract Suspension G Qiagen 1026901 magnetic bead
Magnetic bead separator Epigentek Q10002-1
Nanodrop ThermoFisher ND-2000 microvolume spectrophotometer
PK Buffer ThermoFisher 4489111 Proteinase K buffer
Proteinase K ThermoFisher A25561
Qubit Invitrogen Q33238 fluorometer

References

  1. Nieman, C. C., Yamasaki, Y., Collier, T. C., Lee, Y. A DNA extraction protocol for improved DNA yield from individual mosquitoes. F1000Research. 4, 1314 (2015).
  2. Lee, Y., et al. Genome-wide divergence among invasive populations of Aedes aegypti in California. BMC Genomics. 20 (1), 204 (2019).
  3. Schmidt, H., et al. Abundance of conserved CRISPR-Cas9 target sites within the highly polymorphic genomes of Anopheles and Aedes mosquitoes. Nature Communications. 11 (1), 1425 (2020).
  4. Schmidt, H., et al. Transcontinental dispersal of Anopheles gambiae occurred from West African origin via serial founder events. Communications Biology. 2, 473 (2019).
  5. Norris, L. C., et al. Adaptive introgression in an African malaria mosquito coincident with the increased usage of insecticide-treated bed nets. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (3), 815-820 (2015).
  6. Main, B. J., et al. The genetic basis of host preference and resting behavior in the major african malaria vector, Anopheles arabiensis. Plos Genetics. 12 (9), 1006303 (2016).
  7. Yamasaki, Y. K., et al. Improved tools for genomic DNA library construction of small insects. F1000Research. 5, 211 (2016).
  8. Tabuloc, C. A., et al. Sequencing of Tuta absoluta genome to develop SNP genotyping assays for species identification. Journal of Pest Science. 92, 1397-1407 (2019).
  9. Campos, M., et al. Complete mitogenome sequence of Anopheles coustani from São Tomé island. Mitochondrial DNA. Part B, Resources. 5 (3), 3376-3378 (2020).
  10. Cornel, A. J., et al. Complete mitogenome sequences of Aedes (Howardina) busckii and Aedes (Ochlerotatus) taeniorhynchus from the Caribbean Island of Saba. Mitochondrial DNA. Part B, Resources. 5 (2), 1163-1164 (2020).
  11. Lucena-Aguilar, G., et al. DNA source selection for downstream applications based on dna quality indicators analysis. Biopreservation and Biobanking. 14 (4), 264-270 (2016).
check_url/62354?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chen, T., Vorsino, A. E., Kosinski, K. J., Romero-Weaver, A. L., Buckner, E. A., Chiu, J. C., Lee, Y. A Magnetic-Bead-Based Mosquito DNA Extraction Protocol for Next-Generation Sequencing. J. Vis. Exp. (170), e62354, doi:10.3791/62354 (2021).

View Video