Summary

התמיינות מכוונת של תאי אנדותל המוגניים מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים

Published: March 31, 2021
doi:

Summary

מוצג כאן פרוטוקול פשוט להתמיינות מכוונת של תאי אנדותל המוגני מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים תוך כשבוע.

Abstract

כלי הדם מופצים בכל מקום בתוך כל רקמות הגוף ומבצעים פונקציות מגוונות. לפיכך, נגזרת של תאי אנדותל וסקולריים בוגרים, המרפדים את לומן כלי הדם, מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים היא חיונית למגוון יישומים של הנדסת רקמות והתחדשות. in vivo, תאי אנדותל קדמוניים נגזרים מהשושלת המזודרמלית ומוגדרים לתת-סוגים ספציפיים, כולל עורקים, ורידים, נימים, המוגניים ולימפטיים. תאי אנדותל המוגניים מעניינים במיוחד מכיוון שבמהלך ההתפתחות הם מעוררים תאי גזע ותאי אב המטופויאטיים, אשר לאחר מכן מייצרים את כל שושלות הדם לאורך החיים. לפיכך, יצירת מערכת ליצירת תאי אנדותל המוגניים במבחנה תספק הזדמנות לחקור את המעבר מהאנדותל-להמטופויטים, ועשויה להוביל לייצור ex vivo של מוצרי דם אנושיים ולהפחתת ההסתמכות על תורמים אנושיים. בעוד שקיימים מספר פרוטוקולים לגזירת תאי אנדותל אבניים וקדמוניים, לא תואר ייצור של תאי אנדותל המוגני מאופיינים היטב מתאי גזע אנושיים. כאן מוצגת שיטה לגזירת תאי אנדותל המוגני מתאי גזע עובריים אנושיים תוך כשבוע: פרוטוקול התמיינות עם תאי פס פרימיטיביים שנוצרו בתגובה למעכב GSK3β (CHIR99021), לאחר מכן אינדוקציה של שושלת מזודרם בתיווך bFGF, לאחר מכן התפתחות תאי אנדותל ראשוניים המקודמים על ידי BMP4 ו- VEGF-A, ולבסוף מפרט תאי אנדותל המוגני המושרה על ידי חומצה רטינואית. פרוטוקול זה מניב אוכלוסייה מוגדרת היטב של תאי אנדותל המוגני שניתן להשתמש בהם כדי להבין עוד יותר את הוויסות המולקולרי שלהם ואת המעבר האנדותל-להמטופוייטי, שיש לו פוטנציאל להיות מיושם על יישומים טיפוליים במורד הזרם.

Introduction

תאי אנדותל (ECs) הם אוכלוסייה הטרוגנית של תאים המבצעים פונקציות מרובות בכל גוף האדם וברקמות מהונדסות. בנוסף לתמיכה וויסות סוגי תאים אחרים (כלומר, קרדיומיוציטים1, תאים אוסטאובלסטיים2), תפקודים אלה כוללים יצירת מחסום סלקטיבי בין הדם לרקמות וסיוע ביצירת רקמות3. הבחנה של ECs בוגרים במהלך התפתחות תקינה דורשת מסלולי איתות מגוונים. ECs קדמוניים נגזרים מאבות מזודרם, ולאחר מכן מוגדרים לעבר פנוטיפים עורקיים, ורידיים, נימיים ולימפתיים בוגרים4. בנוסף, תת-קבוצה קטנה של ECs בשק החלמון החוץ-עוברי ובאזור אבי העורקים-גונאד-מזונפרוס העוברי (AGM) מוגדרים גם הם כ-ECs המוגניים, אשר מעוררים תאי גזע ותאי אב המטופויאטיים (HSPCs) הנודדים לכבד העוברי ולמח העצם העוברי, שם הם נשארים לאחר הלידה ומייצרים את כל סוגי תאי הדם לאורך החיים4. המגוון המגוון של פנוטיפים של EC חיוני לכל פיתוח ותחזוקה של רקמות.

לפיכך, ECs ונגזרותיהם הם מרכיבים קריטיים במחקרים שמטרתם מידול, והבהרת מנגנונים של, התפתחות אנושית ו / או מחלה, כמו גם רפואה רגנרטיבית ויישומי הנדסת רקמות 5,6,7,8. עם זאת, המגבלה העיקרית עבור סוגים אלה של מחקרים היא חוסר הזמינות של ECs אנושיים ראשוניים בכמות הנדרשת. ההערכה היא כי מינימום של 3 x 108 ECs יידרש עבור רוב היישומים הטיפוליים6. כדי לפתור בעיה זו, הוצע השימוש בתאי גזע עובריים אנושיים (hESCs) ובתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hiPSCs) בשל פוטנציאל השושלת המגוון שלהם ויכולתם לייצר מספר גדול של צאצאים 6,9.

ואכן, התועלת של תאים שמקורם בתאי גזע עובריים או hiPSCs הוכחה במחקרים רבים שהתמקדו במידול מחלות ובבדיקת תרופות10,11,12. טכנולוגיית איבר על שבב (OOC) שימשה כדי לשחזר בצורה נאמנה יותר את הפיזיולוגיה של גוף האדם על ידי שילוב תאים ורקמות בפיגומים תלת-ממדיים. יתר על כן, חיבור של מספר OOCs בודדים (מה שמכונה גוף או אדם על שבב, BOC/HOC) יכול להתבצע באמצעות מיקרופלואידיקה כדי לאפשר הצלבה בין האיברים המעניינים13,14,15. רקמות תומכות, כגון כלי הדם, הן מרכיבים קריטיים של OOCs ו- BOC / HOCs; שילוב כלי הדם מאפשר הובלה של חומרים מזינים, חמצן וגורמים פרקריניים ברחבי הרקמות, ובכך מקדם את המיקרו-סביבה הספציפית לרקמותהנדרשת 3,12. לפיכך, שיטות לגזירת ECs אנושיים בוגרים, כגון ECs עורקיים, ורידיים, לימפתיים והמוגניים, הן חיוניות לקידום גישות הנדסת רקמות אלה.

פורסמו פרוטוקולים מרובים המפרטים שלבים לנגזרת של ECs קדמוניים או אבות אנושיים מ- hESCs או hiPSCs 5,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26 . רבים מהפרוטוקולים הללו מסתמכים על היווצרות גוף עוברי (EB) או על תרבית משותפת של תאי גזע עובריים/iPSCs עם שכבת הזנה מורין של תאים סטרומליים. אסטרטגיות אלה נוטות להיות קשות וגוזלות זמן, עם תפוקות EC נמוכות ו / או זיהום של ECs אנושיים עם תאי מורין. פרוטוקולים המסתמכים אך ורק על תרבית דו-ממדית ללא שימוש בתאים סטרומליים דורשים לעתים קרובות אינדוקציות ארוכות, משתמשים בשילובים מורכבים של גורמי גדילה ו/או מעכבים לצורך אינדוקציה, יש תקופות התרחבות ממושכות לאחר הפרדת תאים, או שילוב של גורמים אלה. קידום הידע על מסלולי איתות וגורמים המעורבים בגזירת סוגי EC בוגרים in vivo מספק את הקרקע לפרוטוקול בידול חוץ גופי פשוט וחזק.

בעבר זוהו תפקידי מפתח עבור מסלולי איתות של Notch וחומצה רטינואית (RA) במפרט של ECs עורקיים והמוגני של מורין, בהתאמה, במהלך הפיתוח. מסלול האיתות Notch ממלא תפקידים מרובים במפרט ובתחזוקה של פנוטיפ EC עורקי. עבודה באמצעות מודל כלי הדם ברשתית מורין זיהתה מסלול שבו לחץ גזירה נוזלי משרה ציר איתות Notch-Cx37-p27, המקדם מעצר מחזור תאי G1, המאפשר מפרט EC עורקי27. ההשערה היא שמצבי מחזור התא ממלאים תפקיד בהחלטות על גורל התא על ידי מתן חלונות הזדמנויות ברורים שבהם התאים פתוחים לאותות מסוימים שיכולים לגרום לביטוי גנים ולשינויים פנוטיפיים28. מעצר G1 זה בתיווך Notch איפשר ביטוי של גנים המועשרים ב-ECs עורקיים, כולל אפריןB2, Cx40, DLL4, Notch1 ו-Notch 4 (שנסקרב-29,30). כמו כן, הוכח כי מפרט EC המוגני מקודם in vivo באמצעות איתות RA31,32. מחקרים נוספים זיהו כי, במורד הזרם של איתות RA, ביטוי של c-Kit ו- Notch מעלה את p27, המאפשר מפרט המוגני בשק החלמון מורין וב- AGM33. ניתן לזהות באופן מינימלי ECs המוגני של מורין על ידי ביטוי של סמני אנדותל (כלומר, CD31, KDR) והמטופויאטיים (כלומר, c-Kit, CD34)4. לבסוף, ECs המוגני עוברים מעבר אנדותל-להמטופוייטי (EHT) ליצירת HSPCs, אשר יכול להוליד את כל סוגי תאי הדם 4,34,35.

עבודות אחרונות בדקו אם אותה היררכיית איתות יכולה לקדם מפרט EC המוגני אנושי. לשם כך, פותח פרוטוקול תרבית דו-ממדית ללא סרום ומזין להפקת ECs המוגניים מ-hESCs, ו-ECs המוגניים אלה אופיינו ברמת תא יחיד כ-CD31+ KDR+ c-Kit+ CD34+ VE-Cadherin CD45. מחקר זה ניצל גם את הכתב מחוון מחזור תא יוביקוויטינציה פלואורסצנטי (FUCCI), המזהה מצבי מחזור תאים שונים, תוך שימוש ב- H9-hESCs המבטאים את מבנה כתב FUCCI (H9-FUCCI-hESC)36. במחקרים עם תאים אלה, הוכח כי RA מקדם מעצר מוקדם של מחזור תאי G1 ב-ECs, ומצב G1 מוקדם מאפשר אפיון המוגני במבחנה37. כאן, פרוטוקול מפורט להתמיינות של תאי אנדותל המוגני אנושיים אלה ובדיקות המאשרות את זהותם מסופקים. שיטה פשוטה זו מספקת אמצעי שימושי ליצירת תת-קבוצה מיוחדת זו של ECs למחקרים עתידיים של מנגנונים של התפתחות תאי דם אנושיים.

Protocol

1. ריאגנטים והכנת ריאגנטים הערה: רשימת ריאגנטים מופיעה בטבלת החומרים. השג את קווי תאי הגזע הפלוריפוטנטיים האנושיים: H1-hESC, H9-Fucci-hESC.הערה: הדור של ECs המוגני עשוי להיות יעיל יותר בקו התאים H1. הכן מלאי חלבון מטריצה: Aliquot חלבון המטריצה לתוך צינורות מקורר מראש 1.5 …

Representative Results

שרטוט סכמטי המתאר את המפרט של ECs קדמוניים ו- ECs המוגניים מ- hESCs, ותמונה מייצגת של תאים 24 שעות לאחר הציפוי מוצגים באיור 1. לאחר המפרט, ECs ראשוניים ו- ECs המוגניים מטוהרים FACS בימים 5 ו- 8, בהתאמה. ECs פרימורדיאליים מוגדרים כ- CD31+ CD45- ו- ECs המוגניים מוגדרים כ- CD31+ KDR+ c-Kit+ CD34<s…

Discussion

להלן מפורטים השלבים להפקת תאי אנדותל המוגניים מתאי גזע עובריים אנושיים תוך כשבוע באמצעות מערכת תרבית דו-ממדית נטולת מורין וסרום (איור 1). פרוטוקול זה מרחיב על שיטה המתוארת על ידי Sriram et al. (2015) כדי להשיג ECsראשוני 38. האופי הראשוני ופוטנציאל המפרט של CD31+ CD45-</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה חלקית על ידי מענקי NIH HL128064 ו- U2EB017103. תמיכה נוספת ניתנה על ידי מענק CT Innovations 15-RMB-YALE-04.

Materials

15 cm dishes Corning 430599 tissue culture treated
35 mm dishes Corning 430165 tissue culture treated
6-well plates Corning 3516 tissue culture treated
Antimicrobial reagent
Brand Name: Normocin
Invitrogen ant-nr-1
bFGF R&D systems 233-FB-025 use at 50 ng/mL
BMP4 BioLegend 595202 use at 25 ng/mL
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific BP1600-1
Cell Detatchment Solution
Brand Name: vAccutase
Stemcell Technologies 7920
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma Aldrich D2650-100mL
Dispase Stemcell Technologies 7913
DLL4 R&D systems 1506-D4/CF recombinant human; use at 10 μg/mL
DMEM:F12 Gibco 11320-033
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS) Gibco 14190144
Endothelial cell growth medium
Brand Name: EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit (EGM-2)
Lonza CC-3162
FACS tubes Corning 352235 polystyrene round bottom with filter cap
Fetal Bovine Serum (FBS) Gemini Bio 100-106
Fibronectin ThermoFisher Scientific 33016015 use at 4 mg/cm2
GSK3i/CHIR99021 Stemgent 04-0004-02 10 mM stock; use at 5 μM
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) Gibco 14175-095
Hydrochloric Acid (HCl) Fisher Scientific A144S-500
Matrix protein 
Brand Name: Matrigel
Corning 356230 Growth factor reduced. Refer to the Certificate of Analysis for the lot to determine the protein (Matrigel) concentration. This concentration is required to calculate the volume of Matrigel that contains 1 mg of protein.
Methylcellulose-based medium
Brand Name: MethoCult H4435 Enriched
Stemcell Technologies 4435
Pluripotent stem cell differentiation medium
Brand Name: STEMdiff APEL 2
Stemcell Technologies 5270
Pluripotent stem cells: H1, H9, H9-FUCCI WiCell WA09 (H9), WA01 (H1) human; H9-FUCCI were obtained from Dr. Ludovic Vallier's lab at Cambridge Stem Cell Institute
Protein-Free Hybridoma Medium (PFMH) Gibco 12040077
Retinoic Acid Sigma Aldrich R2625-50mg use at 0.5 μM
Reverse transcription master mix
Brand Name: iScript Reverse Transcription Supermix
BioRad 1708840
RNA extraction kit
Brand Name: RNeasy Mini Kit
Qiagen 74104
Sodium Hydroxide (NaOH) Fisher Scientific SS255-1
Stem cell growth medium
Brand Name: mTeSR1
Stemcell Technologies 85850
SYBR Green master mix
Brand Name: iTaq Universal SYBR Green Master Mix
BioRad 1725121
Trypsin-EDTA Gibco 25299956 0.25%
VEGF165 (VEGF-A) PeproTech 100-20 use at 50 ng/mL
α-CD31-FITC BioLegend 303104 2 μg/mL*
α-CD34-Pacific Blue BioLegend 343512 2 μg/mL*
α-CD45-APC/Cy7 BioLegend 304014 2 μg/mL*
α-c-Kit-APC BioLegend 313206 2 μg/mL*
α-Flk-1-PE/Cy7 BioLegend 359911 2 μg/mL*
α-VE-Cadherin-PE BioLegend 348506 2 μg/mL*
* Antibody fluorescent conjugates should be optimized based on the cell sorter used. Presented here are the final concentrations utilized in this study.

References

  1. Giacomelli, E., et al. Three-dimensional cardiac microtissues composed of cardiomyocytes and endothelial cells co-differentiated from human pluripotent stem cells. Development. 144 (6), 1008-1017 (2017).
  2. Wu, J., Wu, Z., Xue, Z., Li, H., Liu, J. PHBV/bioglass composite scaffolds with co-cultures of endothelial cells and bone marrow stromal cells improve vascularization and osteogenesis for bone tissue engineering. RSC Advances. 7 (36), 22197-22207 (2017).
  3. Lee, H., Chung, M., Jeon, N. L. Microvasculature: An essential component for organ-on-chip systems. MRS Bulletin. 39 (1), 51-59 (2014).
  4. Gritz, E., Hirschi, K. K. Specification and function of hemogenic endothelium during embryogenesis. Cellular and Molecular Life Sciences. 73 (8), 1547-1567 (2016).
  5. Williams, I. M., Wu, J. C. Generation of endothelial cells from human pluripotent stem cells: Methods, considerations, and applications. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 39 (7), 1317-1329 (2019).
  6. Olmer, R., et al. Differentiation of human pluripotent stem cells into functional endothelial cells in scalable suspension culture. Stem Cell Reports. 10 (5), 1657-1672 (2018).
  7. Cossu, G., et al. Lancet Commission: Stem cells and regenerative medicine. The Lancet. 391 (10123), 883-910 (2018).
  8. Fox, I. J., et al. Use of differentiated pluripotent stem cells in replacement therapy for treating disease. Science. 345 (6199), 1247391 (2014).
  9. Mahla, R. S. Stem cells applications in regenerative medicine and disease therapeutics. International Journal of Cell Biology. 2016, 1-24 (2016).
  10. Ebert, A. D., Liang, P., Wu, J. C. Induced pluripotent stem cells as a disease modeling and drug screening platform. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 60 (4), 408-416 (2012).
  11. Rowe, R. G., Daley, G. Q. Induced pluripotent stem cells in disease modelling and drug discovery. Nature Reviews Genetics. 20 (7), 377-388 (2019).
  12. Liu, C., Oikonomopoulos, A., Sayed, N., Wu, J. C. Modeling human diseases with induced pluripotent stem cells: from 2D to 3D and beyond. Development. 145 (5), (2018).
  13. Wnorowski, A., Yang, H., Wu, J. C. Progress, obstacles, and limitations in the use of stem cells in organ-on-a-chip models. Advanced Drug Delivery Reviews. 140, 3-11 (2019).
  14. Ramme, A. P., et al. Autologous induced pluripotent stem cell-derived four-organ-chip. Future Science OA. 5 (8), 1-12 (2019).
  15. Ronaldson-Bouchard, K., Vunjak-Novakovic, G. Organs-on-a-Chip: A fast track for engineered human tissues in drug development. Cell Stem Cell. 22 (3), 310-324 (2018).
  16. Kane, N. M., et al. Derivation of endothelial cells from human embryonic stem cells by directed differentiation: analysis of microrna and angiogenesis in vitro and in vivo. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 30 (7), 1389-1397 (2010).
  17. Costa, M., et al. Derivation of endothelial cells from human embryonic stem cells in fully defined medium enables identification of lysophosphatidic acid and platelet activating factor as regulators of eNOS localization. Stem Cell Research. 10 (1), 103-117 (2013).
  18. Nguyen, M. T. X., et al. Differentiation of human embryonic stem cells to endothelial progenitor cells on laminins in defined and xeno-free systems. Stem Cell Reports. 7 (4), 802-816 (2016).
  19. Ikuno, T., et al. Efficient and robust differentiation of endothelial cells from human induced pluripotent stem cells via lineage control with VEGF and cyclic AMP. PLOS One. 12 (3), 0173271 (2017).
  20. Aoki, H., et al. Efficient differentiation and purification of human induced pluripotent stem cell-derived endothelial progenitor cells and expansion with the use of inhibitors of ROCK, TGF-B, and GSK3B. Heliyon. 6 (3), 03493 (2020).
  21. Lian, X., et al. Efficient differentiation of human pluripotent stem cells to endothelial progenitors via small-molecule activation of Wnt signaling. Stem Cell Reports. 3 (5), 804-816 (2014).
  22. Orlova, V. V., et al. Generation, expansion and functional analysis of endothelial cells and pericytes derived from human pluripotent stem cells. Nature Protocols. 9 (6), 1514-1531 (2014).
  23. Kusuma, S., Gerecht, S., Turksen, K. Derivation of endothelial cells and pericytes from human pluripotent stem cells. Human Embryonic Stem Cell Protocols. , 213-222 (2014).
  24. Bao, X., Lian, X., Palecek, S. P. Directed endothelial progenitor differentiation from human pluripotent stem cells via wnt activation under defined conditions. Methods in Molecular Biology. 1481, 183-196 (2016).
  25. Xu, M., He, J., Zhang, C., Xu, J., Wang, Y. Strategies for derivation of endothelial lineages from human stem cells. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 200 (2019).
  26. Arora, S., Yim, E. K. F., Toh, Y. -. C. Environmental specification of pluripotent stem cell derived endothelial cells toward arterial and venous subtypes. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 143 (2019).
  27. Fang, J. S., et al. Shear-induced Notch-Cx37-p27 axis arrests endothelial cell cycle to enable arterial specification. Nature Communications. 8 (1), 2149 (2017).
  28. Dalton, S. Linking the cell cycle to cell fate decisions. Trends in Cell Biology. 25 (10), 592-600 (2015).
  29. Wolf, K., Hu, H., Isaji, T., Dardik, A. Molecular identity of arteries, veins, and lymphatics. Journal of Vascular Surgery. 69 (1), 253-262 (2019).
  30. Rocha, S. F., Adams, R. H. Molecular differentiation and specialization of vascular beds. Angiogenesis. 12 (2), 139-147 (2009).
  31. Goldie, L. C., Lucitti, J. L., Dickinson, M. E., Hirschi, K. K. Cell signaling directing the formation and function of hemogenic endothelium during murine embryogenesis. Blood. 112 (8), 3194-3204 (2008).
  32. Chanda, B., Ditadi, A., Iscove, N. N., Keller, G. Retinoic acid signaling is essential for embryonic hematopoietic stem cell development. Cell. 155 (1), 215-227 (2013).
  33. Marcelo, K. L., et al. Hemogenic endothelial cell specification requires c-kit, notch signaling, and p27-mediated cell-cycle control. Developmental Cell. 27 (5), 504-515 (2013).
  34. Dejana, E., Hirschi, K. K., Simons, M. The molecular basis of endothelial cell plasticity. Nature Communications. 8 (1), 14361 (2017).
  35. Ottersbach, K. Endothelial-to-haematopoietic transition: an update on the process of making blood. Biochemical Society Transactions. 47 (2), 591-601 (2019).
  36. Pauklin, S., Vallier, L. The cell-cycle state of stem cells determines cell fate propensity. Cell. 155 (1), 135-147 (2013).
  37. Qiu, J., Nordling, S., Vasavada, H. H., Butcher, E. C., Hirschi, K. K. Retinoic acid promotes endothelial cell cycle early g1 state to enable human hemogenic endothelial cell specification. Cell Reports. 33 (9), 108465 (2020).
  38. Sriram, G., Tan, J. Y., Islam, I., Rufaihah, A. J., Cao, T. Efficient differentiation of human embryonic stem cells to arterial and venous endothelial cells under feeder- and serum-free conditions. Stem Cell Research & Therapy. 6 (1), 261 (2015).
  39. Ohta, R., Sugimura, R., Niwa, A., Saito, M. K. Hemogenic endothelium differentiation from human pluripotent stem cells in a feeder- and xeno-free defined condition. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (148), e59823 (2019).
  40. Galat, Y., et al. Cytokine-free directed differentiation of human pluripotent stem cells efficiently produces hemogenic endothelium with lymphoid potential. Stem Cell Research & Therapy. 8 (1), 67 (2017).
  41. Sidney, L. E., Branch, M. J., Dunphy, S. E., Dua, H. S., Hopkinson, A. Concise review: Evidence for CD34 as a common marker for diverse progenitors. Stem Cells. 32 (6), 1380-1389 (2014).
check_url/62391?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nelson, E. A., Qiu, J., Chavkin, N. W., Hirschi, K. K. Directed Differentiation of Hemogenic Endothelial Cells from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (169), e62391, doi:10.3791/62391 (2021).

View Video