Summary

Beredning av råttors skelettmuskelhomogenater för nitrat- och nitritmätningar

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

Vi presenterar protokoll för tre olika metoder för homogenisering av fyra olika muskelgrupper i råttskelettmuskelvävnad för att mäta och jämföra nivåerna av nitrat och nitrit. Vidare jämför vi olika provvikter för att undersöka om vävnadsprovets storlek påverkar resultaten av homogenisering.

Abstract

Nitratjoner (NO3-) ansågs en gång vara inerta slutprodukter av kväveoxidmetabolism (NO). Tidigare studier visade dock att nitratjoner kan omvandlas tillbaka till NO hos däggdjur genom en tvåstegsreduktionsmekanism: nitrat reduceras till nitrit (NO2-) mestadels av orala kommensala bakterier, sedan reduceras nitrit till NO genom flera mekanismer inklusive via hem- eller molybdeninnehållande proteiner. Denna reduktiva nitratväg bidrar till att förbättra NO-medierade signalvägar, särskilt i hjärt-kärlsystemet och under muskelträning. Nitrathalterna i kroppen före sådan användning bestäms av två olika källor: endogen NO-oxidation och nitratintag via kosten, huvudsakligen från växter. För att belysa den komplexa NO-cykeln under fysiologiska omständigheter har vi undersökt vidare dynamiken i dess metaboliter, nitrat- och nitritjoner, som är relativt stabila jämfört med NO. I tidigare studier identifierades skelettmuskulaturen som ett viktigt lagringsorgan för nitratjoner hos däggdjur, samt en direkt källa till NO under träning. Därför är det viktigt att fastställa en tillförlitlig metod för att mäta nitrat- och nitritnivåer i skelettmuskulaturen och bör vara till hjälp för att utvidga dess tillämpning till andra vävnadsprover. Detta dokument förklarar i detalj beredningen av skelettmuskelprover, med hjälp av tre olika homogeniseringsmetoder, för nitrat- och nitritmätningar och diskuterar viktiga frågor relaterade till homogeniseringsprocesser, inklusive provernas storlek. Nitrat- och nitritkoncentrationer har också jämförts mellan fyra olika muskelgrupper.

Introduction

Kväveoxid (NO), en liten gasformig signalmolekyl, spelar en avgörande roll i fysiologiska och patofysiologiska processer1. NO kan framställas från L-arginin av endogena enzymer i familjen kväveoxidsyntas (NOS) innan de genomgår snabb oxidation till nitrat (NO3-) och eventuellt nitrit (NO2-) i blod och vävnader 2,3. Nyligen har dessa anjoner visat sig reduceras tillbaka till NO i däggdjurssystem4. Nitrat omvandlas till nitrit, huvudsakligen genom kommensala bakteriella nitratreduktaser i munhålan som verkar på joner som utsöndras av spottkörtlarna och direkt intas 5, och till viss del av däggdjursenzymer såsom xantinoxidoreduktas 6,7. Nitrit kan ytterligare reduceras till NO genom flera mekanismer inklusive deoxihemoglobin8, deoxymyoglobin9, molybdeninnehållande enzymer 10 och icke-enzymatisk reduktion i närvaro av protoner11,12.

Denna nitrat-nitrit-NO-väg förbättras under hypoxiska förhållanden där NOS-aktiviteten minskar eftersom NOS kräver syre för NO-generation4. Många nyligen genomförda studier har rapporterat positiva effekter av dietnitrat på blodtrycksreglering och träningsprestanda, vilket tyder på att nitratreduktionsvägar bidrar till ökningen av NO-signalering13,14,15. Tidigare studier har visat att vissa skelettmuskler sannolikt är de stora nitratlagringsplatserna i kroppen16. Jämfört med blod eller andra inre organ som lever innehåller skelettmuskulaturen (gluteus maximus) signifikant högre nitratnivåer och har en betydande massa i däggdjurskroppen. Löpbandsträning visade sig öka nitratreduktionen till nitrit och till NO i gluteus i en råtta modell7. Dessa resultat antyder att vissa skelettmuskler kan vara viktiga källor för NO genom nitratreduktionsvägar i fysiologiska situationer. Nyare studier tyder på att dessa fynd, inklusive förändringar i muskelnitratnivåer under träning, också förekommer hos människor17.

Två av de nuvarande författarna hade tidigare etablerat en metod för att mäta nitrat- och nitritnivåer i blod och andra vätskeprover18. Men när nivåerna av dessa anjoner i vävnadshomogenater initialt analyserades var detaljerade protokoll inte tillgängliga. För att förstå nitrat-nitrit-NO-dynamiken i flera olika organ var vårt mål att utveckla en exakt och effektiv metod för att mäta nitrat- och nitritnivåer i däggdjursvävnader inklusive skelettmuskulatur. I tidigare studier användes gnagarvävnader för att utveckla tillförlitliga homogeniseringsprocesser och sedan analysera nitrat- och nitritinnehåll i dessa homogenater 7,16,19. Användningen av denna homogeniseringsmetod utvidgades till humana skelettmuskelbiopsiprover, varigenom värdena bekräftades, och viktigare, de värden som observerades för muskler jämfört med blod / plasma var i liknande intervall och förhållanden som de som observerades hos gnagare17. Under de senaste åren har andra grupper också börjat mäta nitrat- och nitritnivåer i skelettmuskelhomogenater och rapporterat jämförbara värden med de som rapporterats av vår grupp20,21.

Syftet med detta protokollpapper är att i detalj beskriva beredningen av skelettmuskelhomogenater med hjälp av tre olika homogeniseringsmetoder för efterföljande mätning av nitrat- och nitritnivåer. Dessutom undersöktes effekterna av vävnadsvikt som används för homogenisering på värden av nitrat och nitrit i skelettmuskelprover. Vi tror att dessa metoder lätt kan tillämpas på andra typer av däggdjursvävnader. På senare tid, särskilt inom träningsfysiologi, hade man uppmärksammat de möjliga skillnaderna i nitrat/nitrit/NO-fysiologi beroende på muskelgrupper. Vi rapporterar också mängderna nitrat och nitrit i fyra olika gnagarmuskler och hittar en icke-enhetlig fördelning av båda jonerna mellan dessa olika muskler; en observation som kräver ytterligare studier.

Protocol

Djurprotokollet godkändes av NIDDK Animal Care and Use Committee (ASP K049-MMB-20). Djur hanterades och behandlades enligt den aktuella guiden för vård och användning av försöksdjur som finns fritt tillgänglig på AAALAC:s webbplats. 1. Råtta skelettmuskeluppsamling Medan en råtta är under djupbedövning (5% isofluran, bekräftad av frånvarande reaktion på svans / bennypa), starta perfusion med saltlösning innehållande heparin genom att placera en 19 G nål i en topp i …

Representative Results

För att få representativa resultat användes skelettmuskelvävnader från 8 Wistar-råttor (män och kvinnor, vikt 250 ± 50 g). Råttors skelettmuskelhomogenater (50 mg gluteus maximus-muskel för varje metod) framställdes av tre olika homogeniseringsverktyg (roterande homogenisator, pärlhomogenisator och pulveriserare). Nitrat- och nitrithalten i dessa homogenater bestämdes sedan med användning av en kväveoxidanalysator (NOA) (figur 4). Nitrathalterna (figur 4A<…

Discussion

För att övervaka förändringar i NO-metaboliterna, nitrat och nitrit, som en funktion av fysiologiska ingrepp, är det absolut nödvändigt att mäta nivåerna av dessa joner i de olika organen som är kritiska i deras ämnesomsättning. Eftersom hemoglobin i blod kommer att reagera med NO och dess metaboliter är det också viktigt att snabbt ta bort blod från vävnadsprover så mycket som möjligt. Således perfuserades djur med saltlösning innan de samlade skelettmuskelvävnader (gluteus, TA, EDL, gastrocnemiusmu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av intramural NIH/NIDDK-bidrag ZIA DK 0251041-14 till Alan N Schechter, MD.

Materials

gentleMACS dissociator Miltenyi Biotec 130-093-235
gentle MACS M tube Miltenyi Biotec 130-093-236 Length: 87 mm; Diameter: 30 mm
Heparin Sodium Hospira NDC-0409-7620-13
Isoflurane Baxter NDC-10019-360-60
Methanol Sigma 646377
Minilys bead homogenizer Bertin Instruments P000673-MLYS0-A
NEM; N-ethylmaleimide Sigma 4260
Nitric Oxide analyzer GE Sievers NOA 280i
NP-40; 4-Nonylphenylpolyethylene glycol Sigma 74385
Potassium ferricyanide; K3Fe(CN)6 Sigma 702587
Precellys lysing kit Bertin Instruments P000911-LYSK0-A contains 2 mL tubes with 2.8 mm ceramic (zirconium oxide) beads for homogenization
Pulverizer kit Cellcrusher Cellcrusher kit

References

  1. Ignarro, L. J. Nitric oxide as a unique signaling molecule in the vascular system: a historical overview. Journal of Physiology and Pharmacology. 53 (4), 503-514 (2002).
  2. Moncada, S., Higgs, A. The L-arginine-nitric oxide pathway. New England Journal of Medicine. 329 (27), 2002-2012 (1993).
  3. Thomas, D. D., Liu, X., Kantrow, S. P., Lancaster, J. R. The biological lifetime of nitric oxide: implications for the perivascular dynamics of NO and O2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (1), 355-360 (2001).
  4. Lundberg, J. O., Weitzberg, E., Gladwin, M. T. The nitrate-nitrite-nitric oxide pathway in physiology and therapeutics. Nature Reviews Drug Discovery. 7 (2), 156-167 (2008).
  5. Govoni, M., Jansson, E. A., Weitzberg, E., Lundberg, J. O. The increase in plasma nitrite after a dietary nitrate load is markedly attenuated by an antibacterial mouthwash. Nitric Oxide. 19 (4), 333-337 (2008).
  6. Jansson, E. A., et al. A mammalian functional nitrate reductase that regulates nitrite and nitric oxide homeostasis. Nature Chemical Biology. 4 (7), 411-417 (2008).
  7. Piknova, B., Park, J. W., Kwan Jeff Lam, K., Schechter, A. N. Nitrate as a source of nitrite and nitric oxide during exercise hyperemia in rat skeletal muscle. Nitric Oxide. 55-56, 54-61 (2016).
  8. Cosby, K., et al. Nitrite reduction to nitric oxide by deoxyhemoglobin vasodilates the human circulation. Nature Medicine. 9 (12), 1498-1505 (2003).
  9. Shiva, S., et al. Deoxymyoglobin is a nitrite reductase that generates nitric oxide and regulates mitochondrial respiration. Circulation Research. 100 (5), 654-661 (2007).
  10. Millar, T. M., et al. Xanthine oxidoreductase catalyses the reduction of nitrates and nitrite to nitric oxide under hypoxic conditions. FEBS Letter. 427 (2), 225-228 (1998).
  11. Benjamin, N., et al. Stomach NO synthesis. Nature. 368 (6471), 502 (1994).
  12. Lundberg, J. O., Weitzberg, E., Lundberg, J. M., Alving, K. Intragastric nitric oxide production in humans: measurements in expelled air. Gut. 35 (11), 1543-1546 (1994).
  13. Larsen, F. J., Ekblom, B., Sahlin, K., Lundberg, J. O., Weitzberg, E. Effects of dietary nitrate on blood pressure in healthy volunteers. New England Journal of Medicine. 355 (26), 2792-2793 (2006).
  14. Kapil, V., et al. Inorganic nitrate supplementation lowers blood pressure in humans: role for nitrite-derived NO. Hypertension. 56 (2), 274-281 (2010).
  15. Jones, A. M. Dietary nitrate supplementation and exercise performance. Sports Medicine. 44, 35-45 (2014).
  16. Piknova, B., et al. Skeletal muscle as an endogenous nitrate reservoir. Nitric Oxide. 47, 10-16 (2015).
  17. Wylie, L. J., et al. Human skeletal muscle nitrate store: influence of dietary nitrate supplementation and exercise. Journal of Physiology. 597 (23), 5565-5576 (2019).
  18. Piknova, B., Schechter, A. N. Measurement of nitrite in blood samples using the ferricyanide-based hemoglobin oxidation assay. Methods in Molecular Biology. 704, 39-56 (2011).
  19. Piknova, B., Park, J. W., Cassel, K. S., Gilliard, C. N., Schechter, A. N. Measuring Nitrite and Nitrate, Metabolites in the Nitric Oxide Pathway, in Biological Materials using the Chemiluminescence Method. Journal of Visualized Experiments. (118), e54879 (2016).
  20. Nyakayiru, J., et al. Sodium nitrate ingestion increases skeletal muscle nitrate content in humans. Journal of Applied Physiology. 123 (3), 637-644 (2017).
  21. Troutman, A. D., Gallardo, E. J., Brown, M. B., Coggan, A. R. Measurement of nitrate and nitrite in biopsy-sized muscle samples using HPLC. Journal of Applied Physiology. 125 (5), 1475-1481 (2018).
  22. Shinin, V., Gayraud-Morel, B., Tajbakhsh, S. Template DNA-strand co-segregation and asymmetric cell division in skeletal muscle stem cells. Methods in Molecular Biology. 482, 295-317 (2009).
  23. Long, G. M., Troutman, A. D., Fisher, A., Brown, M. B., Coggan, A. R. Muscle fiber type differences in nitrate and nitrite storage and nitric oxide signaling in rats. bioRxiv. , (2020).
  24. Ohtake, K., et al. Dietary nitrite supplementation improves insulin resistance in type 2 diabetic KKA(y) mice. Nitric Oxide. 44, 31-38 (2015).
check_url/62427?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Park, J. W., Thomas, S. M., Wylie, L. J., Jones, A. M., Vanhatalo, A., Schechter, A. N., Piknova, B. Preparation of Rat Skeletal Muscle Homogenates for Nitrate and Nitrite Measurements. J. Vis. Exp. (173), e62427, doi:10.3791/62427 (2021).

View Video