Summary

Infusione retrograda della ghiandola parotide attraverso il dotto di Stensen in un primate non umano per la consegna di geni vettoriali

Published: August 12, 2021
doi:

Summary

Le ghiandole salivari sono state proposte come sito bersaglio tissutale per la terapia genica, specialmente nell’area della vaccinazione mediante trasferimento genico. Dimostriamo la consegna genica in un modello di primate non umano utilizzando l’infusione retrograda di parotidi.

Abstract

Le ghiandole salivari sono un bersaglio tissutale attraente per la terapia genica con risultati promettenti che già portano a studi sull’uomo. Sono intrinsecamente in grado di secernere proteine nel flusso sanguigno e sono facilmente accessibili, rendendoli siti tissutali potenzialmente superiori per la produzione di ormoni sostitutivi o la vaccinazione mediante trasferimento genico. I metodi suggeriti per la somministrazione genica includono l’iniezione transcutanea e l’infusione retrograda attraverso i dotti salivari. Dimostriamo come eseguire l’infusione retrograda delle ghiandole salivari (RSGI) in primati non umani. Descriviamo gli importanti punti di riferimento anatomici tra cui l’identificazione della papilla parotide, un metodo atraumatico di cannulazione e sigillatura del dotto di Stensen utilizzando strumenti dentali di base, tubi in polietilene e cianoacrilato e la velocità appropriata di infusione. Mentre questo è il metodo di consegna meno traumatico, il metodo è ancora limitato dal volume in grado di essere consegnato (<0,5 ml) e dal potenziale trauma al dotto e alla ghiandola. Dimostriamo usando la fluoroscopia che un infusato può essere completamente consegnato nella ghiandola e dimostriamo ulteriormente con l'immunoistochimica la trasduzione di un vettore tipico e l'espressione del gene consegnato.

Introduction

Mentre le ghiandole salivari sono ben note per la loro produzione esocrina di saliva, i ricercatori hanno da tempo riconosciuto la loro capacità di secernere proteine direttamente nel flusso sanguigno1, rendendole un potenziale bersaglio per la terapia genica per la somministrazione sistemica, come ormoni sostitutivi o produzione di anticorpi. In effetti, le ghiandole salivari offrono diversi vantaggi rispetto ad altri bersagli tissutali, come la capacità intrinseca di produrre proteine per la secrezione (una proprietà che manca ai muscoli), l’incapsulamento pesante che può limitare la diffusione del vettore e il tessuto ben differenziato che fornisce stabilità per i vettori non integranti. Inoltre, in caso di evento avverso grave, le ghiandole salivari non sono critiche per la vita e possono essere rimosse chirurgicamente. Sebbene non siano immediatamente intuitive, le ghiandole parotidi sono anche facilmente accessibili dalla bocca attraverso il loro principale dotto escretore, il dotto di Stensen2.

Dati i vantaggi del tessuto salivare per la terapia genica, c’è un crescente interesse nell’esplorare questo bersaglio tissutale. Numerosi studi sono già stati condotti in modelli di primati roditori, canini e non umani e almeno uno studio clinico umano è in corso3,4,5. Per esplorare ulteriormente e sviluppare l’utilità di questo bersaglio tissutale ai fini della terapia genica, saranno necessari ulteriori studi sui primati non umani. Questo articolo descrive un metodo per accedere alle ghiandole parotidi attraverso il dotto di Stensen per fornire un gene vettoriale per la trasduzione nel modello di primate non umano. Per dimostrare visibilmente la consegna dell’infuso e l’anatomia del dotto quando entra nella ghiandola, è stata eseguita la fluoroscopia con radiocontrasto. Per dimostrare la trasduzione riuscita di un vettore, è stato utilizzato un gene egfp vettoriale di sierotipo 5 (Ad5) adenovirus. Ad5 è un vettore ben descritto in grado di trasdurre il tessuto salivare. Sebbene sia troppo immunogenico per l’uso clinico finale, per questo studio dimostrativo è stato scelto un vettore Ad5 per assicurare una trasduzione efficiente. La valutazione della produzione di Enhanced Green Fluorescent Protein (EGFP) è un metodo ben descritto per dimostrare il successo della trascrizione e della traduzione di un gene vettoriale dopo la trasduzione ed è stato fatto qui.

Protocol

Tutte le procedure sono state eseguite presso la Wake Forest School of Medicine Clarkson Campus per gli studi sugli animali. Il Comitato istituzionale per la cura e l’uso degli animali (IACUC) è stato consultato per considerazioni etiche e i dettagli delle procedure sono stati sottoposti a revisione. Wake Forest IACUC ha approvato il nostro protocollo di studio e tutte le procedure sono state eseguite secondo il protocollo approvato IACUC #A17-147. 1. Preparazione del dispositivo per infusione<…

Representative Results

Procedura, trasduzione e trascrizione di successoLa Figura 1 mostra la papilla parotide adiacente al 2° molare sulla guancia superiore posteriore. L’immagine mostra anche il corretto posizionamento del tutore della bocca, un’estremità di gomma sul palato duro e l’altra estremità di gomma sul cane ipsilaterale. La Figura 2 mostra un’immagine scattata dopo il successo della cannulazione della papilla parotide al segno di 2 cm sul…

Discussion

Qui descriviamo un protocollo di infusione retrograda nella ghiandola parotide attraverso il dotto di Stensen. La metodologia descritta offre una guida che può potenzialmente essere utilizzata dai ricercatori che esplorano l’utilità del tessuto salivare come sito per la terapia genica e altre applicazioni.

Ci sono diversi passaggi critici per garantire il successo della procedura. Innanzitutto, tutte le fasi procedurali dovrebbero essere completate delicatamente. Un rinforzo forzato della bo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori vogliono ringraziare il signor Cagney Gentry per il suo supporto audiovisivo nelle riprese della procedura. Vogliamo anche riconoscere il centro medico Hefner VA per il supporto accademico nel perseguimento di questo progetto.

Materials

500 µL U100 syringes with 30-gauge needles Becton Dickinson 328466 fixed needle for less waste
Adhesive (e.g., Ethicon Dermabond) Various Cyanoacrylate adhesive to seal and keep the tubing in the duct during infusion.
Atropine injectable solution Patterson Veterinary 07 869-6061 Atropine inj. 0.54 mg/mL
BD Ultra-Fine Insulin Syringes 30G Walmart N/A Avilable in 0.5 mL and 1.0 mL sizes.
Cyanoacrylate (medical glue) Ethicon DNX12 Dermabond topical skin adhesive
Dental loops with light Amazon (DDP) B012M3IV80 Used to enhance visualization of Stensen's duct papilla
Infant Lacrimal Dilator Surgipro SPOI-137
Ketamine injectable solution Patterson Veterinary 07-803-6637 Ketaset inj. 100 mg/mL
Lacrimal Dilator Surgipro SPOI-132 Used to dialate the Stensen's duct.
Midazolam injectable solution Patterson Veterinary 07 890-6698 Midazolam inj. 5mg/mL
Pair of scissors Amazon (DDP) N/A Used to cut PET10 tube
Polyethylene Tubing (PE-10) Scientific Comodities, Inc BB31695-PE/1 Tubing connecting the 30G syringe and inserted into the duct.
Q-tips Walmart N/A Used to spread cyanoacrylate on the cheek
Size 10 Polyethylene Tube (PET 10) Scientific Commodities BB31695-PE/1 low density polyethylene tubing
Small Animal Mouth Opener Amazon (DDP) B01F3LVJXC Used to keep the animal's mouth open.
Tweezers Amazon (DDP) N/A Used to insert PET10 tube into Stenson's duct
Zinc Chloride Sigma-Aldrich 7646-86-7 Included in plasmid DNA infusates

References

  1. Isenman, L., Liebow, C., Rothman, S. The secretion of mammalian digestive enzymes by exocrine glands. The American Journal of Physiology. 276, 223-232 (1999).
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Cite This Article
El Helou, G., Goodman, J. F., Blevins, M., Caudell, D. L., Ponzio, T. A., Sanders, J. W. Retrograde Parotid Gland Infusion through Stensen’s Duct in a Non-Human Primate for Vectored Gene Delivery. J. Vis. Exp. (174), e62645, doi:10.3791/62645 (2021).

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