Summary

Studie av dendrittisk celleutvikling ved kort hårnål RNA-mediert gen knockdown i en hematopoietisk stamme og forfedercellelinje in vitro

Published: March 07, 2022
doi:

Summary

Her gir vi en protokoll for screening av potensielle transkripsjonsfaktorer involvert i utviklingen av dendritisk celle (DC) ved hjelp av lentiviral transduksjon av shRNA for å oppnå stabile knockdown-cellelinjer for in vitro DC-differensiering.

Abstract

Dendrittiske celler (DCs) er viktige antigen-presenterende celler som forbinder medfødte og adaptive immunresponser. Domenekontrollere er heterogene og kan deles inn i konvensjonelle domenekontrollere (CDC-er) og plasmacytoid-domenekontrollere (PDC-er). cDC-er spesialiserer seg på å presentere antigener for og aktivere naive T-celler. På den annen side kan PDC-er produsere store mengder type I interferoner (IFN-I) under virusinfeksjon. Spesifikasjonen av domenekontrollere skjer på et tidlig stadium av DC-forfedre i benmargen (BM) og defineres av et nettverk av transkripsjonsfaktorer (TFer). CDCer uttrykker for eksempel SVÆRT ID2, mens PDCer uttrykker E2-2. Siden flere og flere delsett av domenekontrollere identifiseres, er det en økende interesse for å forstå spesifikke TFer som kontrollerer DC-utvikling. Her etablerer vi en metode for å screene TFer som er kritiske for DCs differensiering in vitro ved å levere lentivirus som bærer kort hårnål RNA (shRNA) inn i en udødeliggjort hematopoietisk stamme og stamcelle (iHSPCs) linje. Etter utvelgelsen og in vitro differensiering analyseres cDC- og pDC-potensialet til de stabile nedslagscellelinjene ved strømningscytometri. Denne tilnærmingen gir en plattform for å identifisere gener som potensielt styrer DC-skjebner fra forfedre in vitro.

Introduction

Domenekontrollere er sentrale regulatorer for medfødt og adaptiv immunitet1. Domenekontrollere er hovedsakelig klassifisert i to funksjonelt forskjellige populasjoner, nemlig PDCer og CDC-er. I tillegg består cDCer av to delsett, nemlig type I og type II cDCer eller cDC1s og cDC2s, henholdsvis2. pDC-er, som uttrykker BST2, Siglec-H og mellomnivåer av CD11c hos mus3,4, er cellene som kan skille ut store mengder IFN-I under betennelse og virusinfeksjon5. På grunn av deres robuste IFN-I-produserende evne mistenkes de også å spille en nøkkelrolle i utviklingen av autoimmune sykdommer, inkludert systemisk lupus erythematosus (SLE)6. cDC1s, definert av overflateuttrykket til XCR1, CD8a, CLEC9A og CD103 hos mus7, er spesialisert på aktivering og polarisering av cytotoksiske CD8 + T-celler (CTLer) gjennom antigen krysspresentasjon, og dermed initiere type I immunitet som svar på intracellulære patogener og kreft8,9. På den annen side kan cDC2s, som uttrykker CD11b og CD172α (også kjent som Sirpα) hos både mennesker og mus, aktivere CD4+ T-celler og fremme type II immunrespons mot allergen og parasitter10, samt modulere type III-immunitet etter ekstracellulære bakterier og mikrobiotagjenkjenning11,12.

Diversifisering av DCer bestemmes av en gruppe TFer fra hematopoietiske stamme- og stamceller (HSPCer) i BM. E2-2 (kodet av Tcf4) er en hovedregulator for differensiering og funksjon av PDCer13,14. Derimot driver hemmeren av DNA-binding 2 (ID2) cDC-spesifikasjonen og hemmer pDC-utvikling gjennom blokkering av E-proteinaktivitet15. Videre krever utviklingen av cDC1s IRF8 og BATF3, mens differensiering av cDC2s er svært avhengig av IRF416. Nyere arbeider har utforsket heterogeniteten til PC-er17 og CDC-er og deres transkripsjonsregulering18. På grunn av kompleksiteten i DC-nettverket er det et udekket behov for å etablere en plattform for å identifisere andre TFer som kontrollerer utviklingen og funksjonaliteten til domenekontrollere.

Her brukte vi en iHSPC som ble generert ved å uttrykke østrogenregulert kjernefysisk translokasjon av Hoxb8 i BM-celler (også referert til som Hoxb8-FL-celler)19. iHSPCer kan spre seg og forbli i et uavklart stadium i nærvær av β-østradiol og Flt3 ligand (FL), mens de begynner å skille seg ut i forskjellige DC-typer i nærvær av FL ved tilbaketrekking av β-østradiol19. Basert på denne funksjonen kan vi slå ned gener av interesse på forfedrestadiet, etterfulgt av å undersøke effekten på in vitro differensiering av PDC og CDC. Derfor er denne metoden et kraftig verktøy for å oppdage genene som regulerer utviklingen og funksjonen til domenekontrollere.

Protocol

Håndtering av lentivirus utføres i henhold til reguleringen av Institutt for miljøhelse og sikkerhet ved National Taiwan University College of Medicine. 1. Utarbeidelse av udødelige hematopoietiske stamme- og stamcellelinjer (iHSPCer) Vedlikehold iHSPC-cellelinjen i fullstendig RPMI 1640 medium som inneholder 100 ng/ml FL og 1 μM β-østradiol. Før cellene i et forhold på 1:10 hver tredje dag.MERK: Lag komplett RPMI 1640 medium ved å supplere med 10% foster bovi…

Representative Results

Kartet over lentiviral vektor pLKO.1-Puro er vist (figur 1). Etter levering av lentivirus som uttrykte shRNA mot LacZ (en ikke-målrettende kontroll), Tcf4 og Id2 i iHSPCer, viste knockdown-effektiviteten bekreftet av RT-qPCR at uttrykket for Tcf4 ble redusert i shTcf4 iHSPCer, sammenlignet med shLacZ iHSPCs (figur 2A). På den annen side ble det reduserte uttrykket for Id2 også observert i shId…

Discussion

Lentivirusbaserte shRNA-vektorer brukes ofte til genaktivering ved viral transduksjon i celler og tillater stabil integrasjon i vertsgenomet. Imidlertid må ulike transduksjonseffektivitet i forskjellige celletyper vurderes, og en rekke tilnærminger er tatt for å overvinne dette problemet.

Polybrene er en polycationic polymer som kan nøytralisere ladningene på cellemembranen, og dermed forbedre bindingen av virionen til cellene under transduksjon20. Selv om det er …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige for teknisk støtte fra Dr. Tz-Ling Chen. Vi takker National RNAi Core Facility (Academia Sinica, Taiwan) for å ha levert shRNA lentivirus (http://rnai.genmed.sinica.edu.tw). Dette arbeidet ble støttet av Vitenskaps- og teknologidepartementet, Taiwan (MOST 108-2320-B-002-037-MY3 og MOST 109-2320-B-002-054-MY3).

Materials

Antibodies
APC/Cy7 anti-mouse CD11c Antibody Biolegend 117324 (Clone: N418)
FITC anti-mouse/human CD11b Antibody Biolegend 101206 (Clone: M1/70)
PE anti-mouse/human B220 Antibody Biolegend 103208 (Clone: RA3-6B2)
Cell culture
1.5 mL Micro tube  ExtraGene TUBE-170-C
12-well tissue culture-treated plate Falcon 353043
Fetal bovine serum (FBS) Corning 35-010-CV
RPMI 1640 medium gibco 11875-085
Reagent
β-estradiol Sigma-Aldrich E2758-250MG
β-mercaptoethanol (β-ME) Sigma-Aldrich M6250
FACS buffer home-made Formula: 1xPBS+0.5 %FBS+0.1%NaN3
Flt3 ligand (FL) home-made
Polybrene Sigma-Aldrich TR-1003-G
Puromycin Invivogen ant-pr-1
TRIsure BIOLINE BIO-38032
shRNA (Taregt sequence/clone ID) Company
shId2  (GCTTATGTCGAATGATAGCAA/TRCN0000054390) The RNAi Consortium (TRC)
shLacZ (CGCGATCGTAATCACCCGAGT/TRCN0000072224) The RNAi Consortium (TRC)
shTcf4 (GCTGAGTGATTTACTGGATTT/TRCN0000012094) The RNAi Consortium (TRC)

References

  1. Steinman, R. M., Witmer, M. D. Lymphoid dendritic cells are potent stimulators of the primary mixed leukocyte reaction in mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 75 (10), 5132-5136 (1978).
  2. Guilliams, M., et al. Dendritic cells, monocytes and macrophages: a unified nomenclature based on ontogeny. Nature Reviews Immunology. 14 (8), 571-578 (2014).
  3. Blasius, A. L., Cella, M., Maldonado, J., Takai, T., Colonna, M. Siglec-H is an IPC-specific receptor that modulates type I IFN secretion through DAP12. Blood. 107 (6), 2474-2476 (2006).
  4. Swiecki, M., Colonna, M. Unraveling the functions of plasmacytoid dendritic cells during viral infections, autoimmunity, and tolerance. Immunology Reviews. 234 (1), 142-162 (2010).
  5. Liu, Y. -. J. IPC: Professional Type 1 interferon-producing cells and plasmacytoid dendritic cell precursors. Annual Review of Immunology. 23 (1), 275-306 (2005).
  6. Panda, S. K., Kolbeck, R., Sanjuan, M. A. Plasmacytoid dendritic cells in autoimmunity. Current Opinion in Immunology. 44, 20-25 (2017).
  7. Durai, V., Murphy, K. M. Functions of murine dendritic cells. Immunity. 45 (4), 719-736 (2016).
  8. Mashayekhi, M., et al. CD8α(+) dendritic cells are the critical source of interleukin-12 that controls acute infection by Toxoplasma gondii tachyzoites. Immunity. 35 (2), 249-259 (2011).
  9. Anderson, D. A., Dutertre, C. -. A., Ginhoux, F., Murphy, K. M. Genetic models of human and mouse dendritic cell development and function. Nature Reviews Immunology. 21 (2), 101-115 (2021).
  10. Plantinga, M., et al. Conventional and monocyte-derived CD11b(+) dendritic cells initiate and maintain T helper 2 cell-mediated immunity to house dust mite allergen. Immunity. 38 (2), 322-335 (2013).
  11. Persson, E. K., et al. IRF4 transcription-factor-dependent CD103(+)CD11b(+) dendritic cells drive mucosal T helper 17 cell differentiation. Immunity. 38 (5), 958-969 (2013).
  12. Kumamoto, Y., et al. CD301b+ dermal dendritic cells drive T helper 2 cell-mediated immunity. Immunity. 39 (4), 733-743 (2013).
  13. Cisse, B., et al. Transcription factor E2-2 is an essential and specific regulator of plasmacytoid dendritic cell development. Cell. 135 (1), 37-48 (2008).
  14. Grajkowska, L. T., et al. Isoform-specific expression and feedback regulation of E protein TCF4 control dendritic cell lineage specification. Immunity. 46 (1), 65-77 (2017).
  15. Jackson, J. T., et al. Id2 expression delineates differential checkpoints in the genetic program of CD8α+ and CD103+ dendritic cell lineages. The EMBO Journal. 30 (13), 2690-2704 (2011).
  16. Suzuki, S., et al. Critical roles of interferon regulatory factor 4 in CD11bhighCD8alpha- dendritic cell development. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 101 (24), 8981-8986 (2004).
  17. Rodrigues, P. F., et al. Distinct progenitor lineages contribute to the heterogeneity of plasmacytoid dendritic cells. Nature Immunology. 19 (7), 711-722 (2018).
  18. Brown, C. C., et al. Transcriptional basis of mouse and human dendritic cell heterogeneity. Cell. 179 (4), 846-863 (2019).
  19. Redecke, V., et al. Hematopoietic progenitor cell lines with myeloid and lymphoid potential. Nature Methods. 10 (8), 795-803 (2013).
  20. Abe, A., Miyanohara, A., Friedmann, T. Polybrene increases the efficiency of gene transfer by lipofection. Gene Therapy. 5 (5), 708-711 (1998).
  21. Sorgi, F. L., Bhattacharya, S., Huang, L. Protamine sulfate enhances lipid-mediated gene transfer. Gene Therapy. 4 (9), 961-968 (1997).
  22. Kirkling, M. E., et al. Notch signaling facilitates in vitro generation of cross-presenting classical dendritic cells. Cell Reports. 23 (12), 3658-3672 (2018).
  23. Pearce, E. J., Everts, B. Dendritic cell metabolism. Nature Reviews. Immunology. 15 (1), 18-29 (2015).
  24. Wculek, S. K., Khouili, S. C., Priego, E., Heras-Murillo, I., Sancho, D. Metabolic Control of Dendritic Cell Functions: Digesting Information. Frontiers in Immunology. 10 (775), (2019).
  25. Saxton, R. A., Sabatini, D. M. mTOR signaling in growth, metabolism, and disease. Cell. 168 (6), 960-976 (2017).
check_url/62730?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hsiao, Y., Häcker, H., Lee, C. Study of Dendritic Cell Development by Short Hairpin RNA-Mediated Gene Knockdown in a Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Line In vitro. J. Vis. Exp. (181), e62730, doi:10.3791/62730 (2022).

View Video