Summary

Undersøgelse af eksperimentelle organdonationsmodeller til lungetransplantation

Published: March 15, 2024
doi:

Summary

Denne undersøgelse viser etableringen af tre forskellige lungedonationsmodeller (post-hjernedød, post-kredsløbsdød donation og post-hæmoragisk chokdonation). Det sammenligner de inflammatoriske processer og patologiske lidelser forbundet med disse hændelser.

Abstract

Eksperimentelle modeller er vigtige værktøjer til forståelse af de etiologiske fænomener, der er involveret i forskellige patofysiologiske begivenheder. I denne sammenhæng bruges forskellige dyremodeller til at studere de elementer, der udløser patofysiologien af primær transplantatdysfunktion efter transplantation for at evaluere potentielle behandlinger. I øjeblikket kan vi opdele eksperimentelle donationsmodeller i to store grupper: donation efter hjernedød og donation efter kredsløbsstop. Desuden bør de skadelige virkninger forbundet med hæmoragisk shock overvejes, når man overvejer dyremodeller for organdonation. Her beskriver vi etableringen af tre forskellige lungedonationsmodeller (post-hjernedødsdonation, post-kredsløbsdød donation og post-hæmoragisk chokdonation) og sammenligner de inflammatoriske processer og patologiske lidelser forbundet med disse hændelser. Målet er at give det videnskabelige samfund pålidelige dyremodeller for lungedonation til at studere de tilknyttede patologiske mekanismer og søge efter nye terapeutiske mål for at optimere antallet af levedygtige transplantater til transplantation.

Introduction

Klinisk relevans
Organtransplantation er en veletableret terapeutisk mulighed for flere alvorlige patologier. I de senere år er der opnået mange fremskridt inden for de kliniske og eksperimentelle områder af organtransplantation, såsom større viden om patofysiologien ved primær transplantatdysfunktion (PGD) og fremskridt inden for intensivpleje, immunologi og farmakologi 1,2,3. På trods af resultaterne og forbedringerne i kvaliteten af de relaterede kirurgiske og farmakologiske procedurer er forholdet mellem antallet af tilgængelige organer og antallet af modtagere på ventelisten fortsat en af de største udfordringer 2,4. I denne henseende har den videnskabelige litteratur foreslået dyremodeller til undersøgelse af terapier, der kan anvendes på organdonorer til behandling og / eller bevarelse af organerne indtil transplantationstidspunktet 5,6,7,8.

Ved at efterligne de forskellige hændelser, der observeres i klinisk praksis, tillader dyremodeller undersøgelsen af de associerede patologiske mekanismer og deres respektive terapeutiske tilgange. Den eksperimentelle induktion af disse begivenheder har i de fleste isolerede tilfælde genereret eksperimentelle modeller for organ- og vævsdonation, der er bredt undersøgt i den videnskabelige litteratur om organtransplantation 6,7,8,9. Disse undersøgelser anvender forskellige metodologiske strategier, såsom dem, der inducerer hjernedød (BD), hæmoragisk chok (HS) og kredsløbsdød (CD), da disse begivenheder er forbundet med forskellige skadelige processer, der kompromitterer funktionaliteten af de donerede organer og væv.

Hjernedød (BD)
BD er forbundet med en række begivenheder, der fører til den progressive forringelse af forskellige systemer. Det sker normalt, når en akut eller gradvis stigning i intrakranielt tryk (ICP) sker på grund af hjernetraumer eller blødning. Denne stigning i ICP fremmer en stigning i blodtrykket i et forsøg på at opretholde en stabil cerebral blodgennemstrømning i en proces kendt som Cushings refleks10,11. Disse akutte ændringer kan resultere i kardiovaskulære, endokrine, og neurologiske dysfunktioner, der kompromitterer mængden og kvaliteten af de donerede organer, ud over at påvirke post-transplantation sygelighed og dødelighed 10,11,12,13.

Hæmoragisk chok (HS)
HS er igen ofte forbundet med organdonorer, da de fleste af dem er ofre for traumer med betydeligt tab af blodvolumen. Nogle organer, såsom lunger og hjerte, er særligt sårbare over for HS på grund af hypovolæmi og deraf følgende vævshypoperfusion14. HS inducerer lungeskade gennem øget kapillærpermeabilitet, ødem og infiltration af inflammatoriske celler, mekanismer, der tilsammen kompromitterer gasudveksling og fører til progressiv organforringelse, hvilket følgelig afsporer donationsprocessen 6,14.

Kredsløbsdød (CD)
Brugen af post-cd-donation er vokset eksponentielt i store verdenscentre og bidrager dermed til stigningen i antallet af indsamlede organer. Organer genvundet fra post-CD-donorer er sårbare over for virkningerne af varm iskæmi, som opstår efter et interval med lav (agonisk fase) eller ingen blodforsyning (asystolisk fase)8,15. Hypoperfusion eller fravær af blodgennemstrømning vil føre til vævshypoxi forbundet med det pludselige tab af ATP og akkumulering af metaboliske toksiner i væv15. På trods af den nuværende anvendelse til transplantation i klinisk praksis hersker der fortsat stor tvivl om virkningen af anvendelsen af disse organer på kvaliteten af transplantatet efter transplantationen og på patienternes overlevelse15. Således vokser brugen af eksperimentelle modeller til en bedre forståelse af de etiologiske faktorer forbundet med CD også 8,15,16,17.

Eksperimentelle modeller
Der er forskellige eksperimentelle organdonationsmodeller (BD, HS og CD). Undersøgelser fokuserer dog ofte kun på én strategi ad gangen. Der er et mærkbart hul i undersøgelser, der kombinerer eller sammenligner to eller flere strategier. Disse modeller er meget nyttige i udviklingen af terapier, der søger at øge antallet af donationer og dermed mindske ventelisten over potentielle modtagere. De dyrearter, der anvendes til dette formål, varierer fra undersøgelse til undersøgelse, hvor svinemodeller vælges mere almindeligt, når målet er en mere direkte oversættelse med human morfofysiologi og mindre tekniske vanskeligheder i det kirurgiske indgreb på grund af dyrets størrelse. På trods af fordelene er logistiske vanskeligheder og høje omkostninger forbundet med svinemodellen. På den anden side favoriserer de lave omkostninger og muligheden for biologisk manipulation brugen af gnavermodeller, så forskeren kan starte fra en pålidelig model til at reproducere og behandle læsioner samt at integrere den viden, der er erhvervet inden for organtransplantation.

Her præsenterer vi en gnavermodel af hjernedød, kredsløbsdød og hæmoragisk chokdonation. Vi beskriver inflammatoriske processer og patologiske tilstande forbundet med hver af disse modeller.

Protocol

Dyreforsøg overholdt den etiske komité for brug og pleje af forsøgsdyr ved det medicinske fakultet ved universitetet i São Paulo (protokolnummer 112/16). 1. Gruppering af dyr Tildel tilfældigt tolv hanrotter fra Sprague Dawley (250-300 g) til en af tre forsøgsgrupper (n=4) for at analysere og sammenligne effekterne forbundet med dyremodellerne. Tildel dyr til hæmoragisk chokgruppe (HS, n = 4): dyr, der udsættes for vaskulær kateterisering …

Representative Results

Gennemsnitligt arterielt tryk (MAP)For at bestemme de hæmodynamiske konsekvenser af BD og HS blev MAP evalueret over protokollens 360 minutter. Baselinemålingen blev indsamlet efter hudfjernelse og kranieboring og før blodalikvote indsamling for dyr, der blev udsat for henholdsvis BD eller HS. Før BD- og HS-induktion var baseline MAP for de to grupper ens (BD: 110,5 ± 6,1 vs. HS: 105,8 ± 2,3 mmHg; p = 0,5; tovejs ANOVA). Efter kateterinsufflation oplevede BD-gruppen en pludselig stigning i blod…

Discussion

I de senere år har det stigende antal diagnoser af hjernedød ført til, at det er blevet den største udbyder af organer og væv beregnet til transplantation. Denne vækst har imidlertid været ledsaget af en utrolig stigning i donationer efter kredsløbsdød. På trods af sin multifaktorielle karakter begynder de fleste af de udløsende mekanismer for dødsårsagerne efter eller ledsager traumer med omfattende tab af blodindhold 4,18.

<p class="jove_conten…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker FAPESP (Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo) for at yde økonomisk støtte.

Materials

14-gauge angiocath DB 38186714 Orotracheal intubation
2.0-silk Brasuture AA553 Tracheal tube fixation
24-gauge angiocath DB 38181214 Arterial and venous access
4.0-silk Brasuture AA551 Fixation of arterial and venous cannulas
Alcoholic chlorhexidine digluconate solution (2%). Vic Pharma Y/N Asepsis
Trichotomy apparatus Oster Y/N Clipping device
Precision balance Shimadzu D314800051 Analysis of the wet/dry weight ratio
Barbiturate (Thiopental) Cristália 18080003 DC induction
Balloon catheter (Fogarty-4F) Edwards Life Since 120804 BD induction
Neonatal extender Embramed 497267 Used as catheters with the aid of the 24 G angiocath
FlexiVent Scireq 1142254 Analysis of ventilatory parameters
Heparin Blau Farmaceutica SA 7000982-06 Anticoagulant
Isoflurane Cristália 10,29,80,130 Inhalation anesthesia
Micropipette (1000 µL) Eppendorf 347765Z Handling of small- volume liquids
Micropipette (20 µL) Eppendorf H19385F Handling of small- volume liquids
Microscope Zeiss 1601004545 Assistance in the visualization of structures for the surgical procedure
Multiparameter monitor Dixtal 101503775 MAP registration
Motorized drill Midetronic MCA0439 Used to drill a 1 mm caliber borehole
Neubauer chamber Kasvi D15-BL Cell count
Pediatric laryngoscope Oxygel Y/N Assistance during tracheal intubation
Syringe (3 mL) SR 3330N4 Hydration and exsanguination during HS protocol
Pressure transducer Edwards Life Since P23XL MAP registration
Metallic tracheal tube Biomedical 006316/12 Rigid cannula for analysis with the FlexiVent ventilator
Isoflurane vaporizer Harvard Bioscience 1,02,698 Anesthesia system
Mechanical ventilator for small animals (683) Harvard Apparatus MA1 55-0000 Mechanical ventilation
xMap methodology Millipore RECYTMAG-65K-04 Analysis of inflammatory markers

References

  1. Paterno, F., et al. Clinical implications of donor warm and cold ischemia time in donor after circulatory death liver transplantation. Liver Transplantation. 25 (9), 1342-1352 (2019).
  2. Yusen, R. D., et al. The registry of the International Society for heart and lung transplantation: thirty-third adult lung and heart-lung transplant report-2016; focus theme: primary diagnostic indications for transplant. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (10), 1170-1184 (2016).
  3. Jung, H. Y., et al. Comparison of transplant outcomes for low-level and standard-level tacrolimus at different time points after kidney transplantation. Journal of Korean Medical Science. 34 (12), e103 (2019).
  4. Cypel, M., et al. The International Society for heart and lung transplantation donation after circulatory death registry report. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 34 (10), 1278-1282 (2015).
  5. Drake, M., Bernard, A., Hessel, E. Brain death. Surgical Clinics of North America. 97 (6), 1255-1273 (2017).
  6. Nepomuceno, N. A., et al. Effect of hypertonic saline in the pretreatment of lung donors with hemorrhagic shock. Journal of Surgical Research. 225, 181-188 (2018).
  7. Menegat, L., et al. Evidence of bone marrow downregulation in brain-dead rats. International Journal of Experimental Pathology. (3), 158-165 (2017).
  8. Iskender, I., et al. Effects of warm versus cold ischemic donor lung preservation on the underlying mechanisms of injuries during ischemia and reperfusion. Transplantation. (5), 760-768 (2018).
  9. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo perfusion prevents lung injury compared to extended cold preservation for transplantation. American Journal of Transplantation. 9 (10), 2262-2269 (2009).
  10. Wauters, S., et al. Evaluating lung injury at increasing time intervals in a murine brain death model. Journal of Surgical Research. 183 (1), 419-426 (2013).
  11. Smith, M. Physiologic changes during brain stem death–lessons for management of the organ donor. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 23 (9), S217-S222 (2004).
  12. Belhaj, A., et al. Mechanical versus humoral determinants of brain death-induced lung injury. PLoS One. 12 (7), e0181899 (2017).
  13. Kolkert, J. L., et al. The gradual onset brain death model: a relevant model to study organ donation and its consequences on the outcome after transplantation. Laboratory Animals. 41 (3), 363-371 (2007).
  14. Rocha-E-Silva, M. Cardiovascular effects of shock and trauma in experimental models: A review. Revista Brasileira de Cirurgia Cardiovascular. 31 (1), 45-51 (2016).
  15. Manara, A. R., Murphy, P. G., O’Callaghan, G. Donation after circulatory death. British Journal of Anaesthesia. 108, i108-i121 (2012).
  16. Dhital, K. K., et al. Adult heart transplantation with distant procurement and ex-vivo preservation of donor hearts after circulatory death: a case series. The Lancet. 385 (9987), 2585-2591 (2015).
  17. Boucek, M. M., et al. Pediatric heart transplantation after declaration of cardiocirculatory death. The New England Journal of Medicine. 359 (7), 709-714 (2008).
  18. Kramer, A. H., Baht, R., Doig, C. J. Time trends in organ donation after neurologic determination of death: a cohort study. CMAJ Open. 5 (1), E19-E27 (2017).
  19. Reino, D. C., et al. Trauma hemorrhagic shock-induced lung injury involves a gut-lymph-induced TLR4 pathway in mice. PLoS One. 6 (8), e14829 (2011).
  20. Pascual, J. L., et al. Hypertonic saline resuscitation of hemorrhagic shock diminishes neutrophil rolling and adherence to endothelium and reduces in vivo vascular leakage. Annals of Surgery. 236 (5), 634-642 (2002).
  21. Van Zanden, J. E., et al. Rat donor lung quality deteriorates more after fast than slow brain death induction. PLoS One. 15 (11), e0242827 (2020).
  22. Shivalkar, B., et al. Variable effects of explosive or gradual increase of intracranial pressure on myocardial structure and function. Circulation. 87 (1), 230-239 (1993).
  23. López-Aguilar, J., et al. Massive brain injury enhances lung damage in an isolated lung model of ventilator-induced lung injury. Critical Care Medicine. 33 (5), 1077-1083 (2005).
  24. Catania, A., Lonati, C., Sordi, A., Gatti, S. Detrimental consequences of brain injury on peripheral cells. Brain, Behavior, and Immunity. 23 (7), 877-884 (2009).
  25. McKeating, E. G., Andrews, P. J., Mascia, L. Leukocyte adhesion molecule profiles and outcome after traumatic brain injury. Acta Neurochirurgica Supplement. 71, 200-202 (1998).
  26. Ott, L., McClain, C. J., Gillespie, M., Young, B. Cytokines and metabolic dysfunction after severe head injury. Journal of Neurotrauma. 11 (5), 447-472 (1994).
  27. Avlonitis, V. S., Wigfield, C. H., Kirby, J. A., Dark, J. H. The hemodynamic mechanisms of lung injury and systemic inflammatory response following brain death in the transplant donor. American Journal of Transplantation. 5 (4), 684-693 (2005).
  28. De Jesus Correia, C., et al. Hypertonic saline reduces cell infiltration into the lungs after brain death in rats. Pulmonary Pharmacology & Therapeutics. 61, 101901 (2020).
  29. Kalsotra, A., Zhao, J., Anakk, S., Dash, P. K., Strobel, H. W. Brain trauma leads to enhanced lung inflammation and injury: evidence for role of P4504Fs in resolution. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 27 (5), 963-974 (2007).
  30. Simas, R., Zanoni, F. L., Silva, R., Moreira, L. F. P. Brain death effects on lung microvasculature in an experimental model of lung donor. Journal Brasileiro de Pneumologia. 46 (2), e20180299 (2020).
  31. Moore, K. The physiological response to hemorrhagic shock. Journal of Emergency Nursing. 40 (6), 629-631 (2014).
  32. Fülöp, A., Turóczi, Z., Garbaisz, D., Harsányi, L., Szijártó, A. Experimental models of hemorrhagic shock: a review. European Surgical Research. 50 (2), 57-70 (2013).
  33. Hillen, G. P., Gaisford, W. D., Jensen, C. G. Pulmonary changes in treated and untreated hemorrhagic shock. I. Early functional and ultrastructural alterations after moderate shock. The American Journal of Surgery. 122 (5), 639-649 (1971).
  34. Sprung, J., Mackenzie, C. F., Green, M. D., O’Dwyer, J., Barnas, G. M. Chest wall and lung mechanics during acute hemorrhage in anesthetized dogs. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 11 (5), 608-612 (1997).
  35. Liu, X., et al. Inhibition of BTK protects lungs from trauma-hemorrhagic shock-induced injury in rats. Molecular Medicine Reports. 16 (1), 192-200 (2017).
  36. Maeshima, K., et al. Prevention of hemorrhagic shock-induced lung injury by heme arginate treatment in rats. Biochemical Pharmacology. 69 (11), 1667-1680 (2005).
  37. Gao, J., et al. Effects of different resuscitation fluids on acute lung injury in a rat model of uncontrolled hemorrhagic shock and infection. The Journal of Trauma. 67 (6), 1213-1219 (2009).
  38. Wohlauer, M., et al. Nebulized hypertonic saline attenuates acute lung injury following trauma and hemorrhagic shock via inhibition of matrix metalloproteinase-13. Critical Care Medicine. 40 (9), 2647-2653 (2012).
  39. Morrissey, P. E., Monaco, A. P. Donation after circulatory death: current practices, ongoing challenges, and potential improvements. Transplantation. 97 (3), 258-264 (2014).
  40. Snell, G. I., Levvey, B. J., Levin, K., Paraskeva, M., Westall, G. Donation after brain death versus donation after circulatory death: lung donor management issues. Seminars in Respiratory and Critical Care Medicine. 39 (2), 138-147 (2018).
  41. Iskender, I., et al. Effects of warm versus cold ischemic donor lung preservation on the underlying mechanisms of injuries during ischemia and reperfusion. Transplantation. 102 (5), 760-768 (2018).
  42. Yamamoto, S., et al. Activations of mitogen-activated protein kinases and regulation of their downstream molecules after rat lung transplantation from donors after cardiac death. Transplantation Proceedings. 43 (10), 3628-3633 (2011).
  43. Kang, C. H., et al. Transcriptional signatures in donor lungs from donation after cardiac death vs after brain death: a functional pathway analysis. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 30 (3), 289-298 (2011).
check_url/62975?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nepomuceno, N. A., Moreira Ruiz, L., Oliveira-Melo, P., Ikeoka Eroles, N. C., Gomes Viana, I., Pêgo-Fernandes, P. M., de Oliveira Braga, K. A. Study of Experimental Organ Donation Models for Lung Transplantation. J. Vis. Exp. (205), e62975, doi:10.3791/62975 (2024).

View Video