Summary

Flödescytometrisk analys av flera mitokondriella parametrar i humaninducerade pluripotenta stamceller och deras neurala och glialderivat

Published: November 08, 2021
doi:

Summary

Denna studie rapporterar ett nytt tillvägagångssätt för att mäta flera mitokondriella funktionella parametrar baserat på flödescytometri och dubbel färgning med två fluorescerande reportrar eller antikroppar för att upptäcka förändringar i mitokondriell volym, mitokondriell membranpotential, reaktiv syreartsnivå, mitokondriell andningskedjesammansättning och mitokondriellt DNA.

Abstract

Mitokondrier är viktiga i patofysiologin hos många neurodegenerativa sjukdomar. Förändringar i mitokondriell volym, mitokondriell membranpotential (MMP), mitokondriell produktion av reaktiva syrearter (ROS) och mitokondriellt DNA (mtDNA) kopieringsnummer är ofta egenskaper hos dessa processer. Denna rapport beskriver en ny flödescytometribaserad metod för att mäta flera mitokondriella parametrar i olika celltyper, inklusive humaninducerade pluripotenta stamceller (iPSC) och iPSC-härledda neurala och glialceller. Denna flödesbaserade strategi använder levande celler för att mäta mitokondriell volym, MMP och ROS-nivåer, samt fasta celler för att uppskatta komponenter i mitokondriell andningskedja (MRC) och mtDNA-associerade proteiner såsom mitokondriell transkriptionsfaktor A (TFAM).

Genom samfärgning med fluorescerande reportrar, inklusive MitoTracker Green (MTG), tetrametylrhodaminetylester (TMRE) och MitoSox Red, kan förändringar i mitokondriell volym, MMP och mitokondriell ROS kvantifieras och relateras till mitokondriellt innehåll. Dubbelfärgning med antikroppar mot MRC-komplexa underenheter och translocase av yttre mitokondriellt membran 20 (TOMM20) möjliggör bedömning av MRC-subenhetsuttryck. Eftersom mängden TFAM är proportionell mot mtDNA-kopieringsnummer ger mätningen av TFAM per TOMM20 en indirekt mätning av mtDNA per mitokondriell volym. Hela protokollet kan utföras inom 2-3 timmar. Viktigt är att dessa protokoll tillåter mätning av mitokondriella parametrar, både på total nivå och den specifika nivån per mitokondriell volym, med användning av flödescytometri.

Introduction

Mitokondrier är viktiga organeller som finns i nästan alla eukaryota celler. Mitokondrier är ansvariga för energiförsörjningen genom att producera adenosintrifosfat (ATP) via oxidativ fosforylering och fungerar som metaboliska mellanhänder för biosyntes och metabolism. Mitokondrier är djupt involverade i många andra viktiga cellulära processer, såsom ROS-generering, celldöd och intracellulär Ca2+ reglering. Mitokondriell dysfunktion har associerats med olika neurodegenerativa sjukdomar, inklusive Parkinsons sjukdom (PD), Alzheimers sjukdom (AD), Huntingtons sjukdom (HD), Friedreichs ataxi (FRDA) och amyotrofisk lateralskleros (ALS)1. Ökad mitokondriell dysfunktion och mtDNA-abnormitet är också tänkt att bidra till människans åldrande 2,3.

Olika typer av mitokondriell dysfunktion förekommer vid neurodegenerativa sjukdomar, och förändringar i mitokondriell volym, MMP-depolarisering, produktion av ROS och förändringar i mtDNA-kopieringsnummer är vanliga 4,5,6,7. Därför är förmågan att mäta dessa och andra mitokondriella funktioner av stor betydelse när man studerar sjukdomsmekanismer och testar potentiella terapeutiska medel. Med tanke på bristen på djurmodeller som troget replikerar mänskliga neurodegenerativa sjukdomar är det dessutom ett viktigt steg mot en större förståelse av dessa sjukdomar och utvecklingen av nya terapier 2,3,8,9 att etablera lämpliga in vitro-modellsystem som rekapitulerar den mänskliga sjukdomen i hjärnceller.

Mänskliga iPSC kan användas för att generera olika hjärnceller, inklusive neuronala och icke-neuronala celler (dvs. gliaceller), och mitokondriell skada i samband med neurodegenerativ sjukdom har hittats i båda celltyperna 3,10,11,12,13. Lämpliga metoder för iPSC-differentiering till neurala och gliala släktlinjer finns tillgängliga14,15,16. Dessa celler utgör en unik människa/patientplattform för in vitro-sjukdomsmodellering och läkemedelsscreening. Vidare, eftersom dessa härrör från patienter, ger iPSC-härledda neuroner och gliaceller sjukdomsmodeller som återspeglar vad som händer hos människor mer exakt.

Hittills finns få praktiska och tillförlitliga metoder för att mäta flera mitokondriella funktionella parametrar i iPSC, särskilt levande neuroner och gliaceller, tillgängliga. Användningen av flödescytometri ger forskaren ett kraftfullt verktyg för att mäta biologiska parametrar, inklusive mitokondriell funktion, i enskilda celler. Detta protokoll ger detaljer för generering av olika typer av hjärnceller, inklusive neurala stamceller (NSC), neuroner och glialastrocyter från iPSCs, samt nya flödescytometribaserade metoder för att mäta flera mitokondriella parametrar i olika celltyper, inklusive iPSC och iPSC-härledda neurala och glialceller. Protokollet ger också en samfärgningsstrategi för att använda flödescytometri för att mäta mitokondriell volym, MMP, mitokondriell ROS-nivå, MRC-komplex och TFAM. Genom att införliva mått på mitokondriell volym eller massa tillåter dessa protokoll också mätning av både total nivå och specifik nivå per mitokondriell enhet.

Protocol

OBS: Se materialförteckningen och tilläggstabellen S1 för recept på alla medier och lösningar som används i detta protokoll. 1. Differentiering av humana iPSC till NCS, dopaminerga (DA) neuroner och astrocyter Förbered matrisbelagda plattor.Tina en injektionsflaska med 5 ml matris på is över natten. Späd 1 ml matris med 99 ml kall Advanced Dulbeccos modifierade Eagle Medium / Hams F-12 (avancerad DMEM / F12) (1% slu…

Representative Results

En schematisk beskrivning av differentieringsmetoden och flödescytometriska strategier visas i figur 3. Mänskliga iPSC differentieras till neurala rosetter och lyfts sedan in i suspensionskulturen för differentiering till neurala sfärer. Neurala sfärer differentieras ytterligare och mognar till DA-neuroner. Neurala sfärer dissocieras i enskilda celler för att generera gliala astrocyter, replated i monolager som NSC, och differentieras sedan till astrocyter. Detta protokoll tillhandah?…

Discussion

Häri finns protokoll för att generera iPSC-härledda neuroner och astrocyter och utvärdera flera aspekter av mitokondriell funktion med hjälp av flödescytometri. Dessa protokoll möjliggör effektiv omvandling av humana iPSC till både neuroner och glialastrocyter och detaljerad karakterisering av mitokondriell funktion, mestadels i levande celler. Protokollen ger också en samfärgningsflödescytometribaserad strategi för att förvärva och analysera flera mitokondriella funktioner, inklusive volym-, MMP- och mito…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Molecular Imaging Centre och Flow Cytometry Core Facility vid Universitetet i Bergen i Norge. Detta arbete stöddes av finansiering från norska forskningsrådet (bidragsnummer: 229652), Rakel og Otto Kr.Bruuns legat och China Scholarship Council (projektnummer: 201906220275).

Materials

anti-Oct4 Abcam ab19857, RRID:AB_445175 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody.
anti-SSEA4 Abcam ab16287, RRID:AB_778073 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 594 goat anti-mouse IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11005) as secondary antibody.
anti-Sox2 Abcam ab97959, RRID:AB_2341193 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody.
anti-Pax6 Abcam ab5790, RRID:AB_305110 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody.
anti-Nestin Santa Cruz Biotechnology sc-23927, RRID:AB_627994 Primary Antibody; use as 1:50, 20 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 594 goat anti-mouse IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11005) as secondary antibody.
anti-GFAP Abcam ab4674, RRID:AB_304558 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution;  use Alexa Fluor ® 594 goat anti-chicken IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11042) as secondary antibody.
anti-S100β  conjugated with Alexa Fluor 488 Abcam ab196442, RRID:AB_2722596 Primary Antibody; use as 1:400, 2.5 μL in 1000 μL staining solution;
anti-TH Abcam ab75875, RRID:AB_1310786 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody.
anti-Tuj 1 Abcam ab78078, RRID:AB_2256751 Primary Antibody; use as 1:1000, 1 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 594 goat anti-mouse IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11005) as secondary antibody.
anti-Synaptophysin Abcam ab32127, RRID:AB_2286949 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody.
anti-PSD-95 Abcam ab2723, RRID:AB_303248 Primary Antibody; use as 1:100, 10 μL in 1000 μL staining solution;  use Alexa Fluor ® 594 goat anti-chicken IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11042) as secondary antibody.
anti-TFAM conjugated with Alexa Fluor 488 Abcam ab198308 Primary Antibody; use as 1:400, 2.5 μL in 1000 μL staining solution; use mouse monoclonal IgG2b  Alexa Fluor® 488 as an isotype control.
anti-TOMM20 conjugated with Alexa Fluor 488 Santa Cruz Biotechnology Cat# sc-17764 RRID:AB_628381 Primary Antibody; use as 1:400, 2.5 μL in 1000 μL staining solution; use mouse monoclonal IgG2a  Alexa Fluor® 488 as an isotype control.
anti-NDUFB10 Abcam ab196019 Primary Antibody; use as 1:1000, 1 μL in 1000 μL staining solution; use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody; use rabbit monoclonal IgG as an isotype control.
anti-SDHA Abcam ab137040 Primary Antibody; use as 1:1000, 1 μL in 1000 μL staining solution;  use Alexa Fluor ® 488 goat anti-rabbit IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11008) as secondary antibody; use rabbit monoclonal IgG as an isotype control.
anti-COX IV Abcam ab14744, RRID:AB_301443 Primary Antibody; use as 1:1000, 1 μL in 1000 μL staining solution; use  Alexa Fluor ® 488 goat anti-mouse IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, Catalog # A-11001) as secondary antibody; use mouse monoclonal IgG as an isotype control.
Activin A PeproTech 120-14E Astrocyte differentiation medium ingredient
ABM Basal Medium Lonza CC-3187 Basal medium for astrocyte culture
AGM SingleQuots Supplement Pack Lonza CC-4123 Supplement for astrocyte culture
Antibiotic-Antimycotic Thermo Fisher Scientific 15240062 CDM ingredient
Advanced DMEM/F-12 Thermo Fisher Scientific 12634010 Basal medium for dilute Geltrex
Bovine Serum Albumin Europa Bioproducts EQBAH62-1000 Blocking agent to prevent non-specific binding of antibodies in immunostaining assays and CDM ingredient
BDNF PeproTech 450-02 DA neurons medium ingredient
B-27 Supplement Thermo Fisher Scientific 17504044 Astrocyte differentiation medium ingredient
BD Accuri C6 Plus Flow Cytometer BD Biosciences, USA
Chemically Defined Lipid Concentrate Thermo Fisher Scientific 11905031 CDM ingredient
Collagenase IV Thermo Fisher Scientific 17104019 Reagent for gentle dissociation of human iPSCs
CCD Microscope Camera Leica DFC3000 G Leica Microsystems, Germany
Corning non-treated culture dishes Sigma-Aldrich CLS430589 Suspension culture
DPBS Thermo Fisher Scientific 14190250 Used for a variety of cell culture wash
DMEM/F-12, GlutaMAX supplement Thermo Fisher Scientific 10565018 Astrocyte differentiation basal Medium
EDTA Thermo Fisher Scientific 15575020 Reagent for gentle dissociation of human iPSCs
Essential 8 Basal Medium Thermo Fisher Scientific A1516901 Basal medium for iPSC culture
Essential 8 Supplement (50X) Thermo Fisher Scientific A1517101 Supplement for iPSC culture
EGF Recombinant Human Protein Thermo Fisher Scientific PHG0314 Supplement for NSC culture
FGF-basic (AA 10–155) Recombinant Human Protein Thermo Fisher Scientific PHG0024 Supplement for NSC culture
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich 12103C Medium ingredient
FGF-basic PeproTech 100-18B Astrocyte differentiation medium ingredient
FCCP Abcam ab120081 Eliminates mitochondrial membrane potential and TMRE staining
Fluid aspiration system BVC control Vacuubrand, Germany
Formaldehyde (PFA) 16% Thermo Fisher Scientific 28908 Cell fixation
Geltrex Thermo Fisher Scientific A1413302 Used for attachment and maintenance of human iPSCs
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher Scientific 35050061 Supplement for NSC culture
GDNF Peprotech 450-10 DA neurons medium ingredient
Glycine Sigma-Aldrich G8898 Used for blocking buffer
Ham's F-12 Nutrient Mix Thermo Fisher Scientific 31765027 Basal medium for CDM
Heregulin beta-1 human Sigma-Aldrich SRP3055 Astrocyte differentiation medium ingredient
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H1399 Stain the nuclei for confocal image
Heracell 150i CO2 Incubators Fisher Scientific, USA
IMDM Thermo Fisher Scientific 21980032 Basal medium for CDM
Insulin Roche 1376497 CDM ingredient
InSolution AMPK Inhibitor Sigma-Aldrich 171261 Neural induction medium ingredient
Insulin-like Growth Factor-I human Sigma-Aldrich I3769 Astrocyte differentiation medium ingredient
KnockOut DMEM/F-12 medium Thermo Fisher Scientific 12660012 Basal medium for NSC culture
Laminin Sigma-Aldrich L2020 Promotes attachment and growth of neural cells in vitro
Leica TCS SP8 STED confocal microscope Leica Microsystems, Germany
Monothioglycerol Sigma-Aldrich M6145 CDM ingredient
MitoTracker Green FM Thermo Fisher Scientific M7514 Used for mitochondrial volume indicator
MitoSox Red Thermo Fisher Scientific M36008 Used for mitochondrial ROS indicator
N-Acetyl-L-cysteine Sigma-Aldrich A7250 Neural induction medium ingredient
N-2 Supplement Thermo Fisher Scientific 17502048 Astrocyte differentiation medium ingredient
Normal goat serum Thermo Fisher Scientific PCN5000 Used for blocking buffer
Orbital shakers – SSM1 Stuart Equipment, UK
Poly-L-ornithine solution Sigma-Aldrich P4957 Promotes attachment and growth of neural cells in vitro
Poly-D-lysine hydrobromide Sigma-Aldrich P7405 Promotes attachment and growth of neural cells in vitro
Purmorphamine STEMCELL Technologies 72204 Promotes DA neuron differentiation
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific P36930 Mounting the coverslip for confocal image
PBS 1x Thermo Fisher Scientific 18912014 Used for a variety of wash
Recombinant Human/Mouse FGF-8b Protein R&D Systems 423-F8-025/CF Promotes DA neuron differentiation
SB 431542 Tocris Bioscience TB1614-GMP Neural Induction Medium ingredient
StemPro Neural Supplement Thermo Fisher Scientific A10508-01 Supplement for NSCs culture
TrypLE Express Enzyme Thermo Fisher Scientific 12604013 Cell dissociation reagent
Transferrin Roche 652202 CDM ingredient
TRITON X-100 VWR International 9002-93-1 Used for cells permeabilization in immunostaining assays
TMRE Abcam ab113852 Used for mitochondrial membrane potential staining
Water Bath Jb Academy Basic Jba5 JBA5 Grant Instruments Grant Instruments, USA

References

  1. Wang, Y., Xu, E., Musich, P. R., Lin, F. Mitochondrial dysfunction in neurodegenerative diseases and the potential countermeasure. CNS Neuroscience & Therapeutics. 25 (7), 816-824 (2019).
  2. Chen, A., et al. Nicotinamide riboside and metformin ameliorate mitophagy defect in induced pluripotent stem cell-derived astrocytes with POLG mutations. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 737304 (2021).
  3. Liang, K. X., et al. Disease-specific phenotypes in iPSC-derived neural stem cells with POLG mutations. EMBO Molecular Medicine. 12 (10), 12146 (2020).
  4. Chen, H., Chan, D. C. Mitochondrial dynamics–fusion, fission, movement, and mitophagy–in neurodegenerative diseases. Human Molecular Genetics. 18, 169-176 (2009).
  5. Lin, M. T., Beal, M. F. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress in neurodegenerative diseases. Nature. 443 (7113), 787-795 (2006).
  6. Singh, A., Kukreti, R., Saso, L., Kukreti, S. Oxidative stress: A key modulator in neurodegenerative diseases. Molecules. 24 (8), 1583 (2019).
  7. Kondadi, A. K., Anand, R., Reichert, A. S. Functional interplay between cristae biogenesis, mitochondrial dynamics and mitochondrial DNA integrity. International Journal of Molecular Sciences. 20 (17), 4311 (2019).
  8. Sterneckert, J. L., Reinhardt, P., Schöler, H. R. Investigating human disease using stem cell models. Nature Reviews. Genetics. 15 (9), 625-639 (2014).
  9. Patani, R. Human stem cell models of disease and the prognosis of academic medicine. Nature Medicine. 26 (4), 449 (2020).
  10. Liang, K. X., et al. N-acetylcysteine amide ameliorates mitochondrial dysfunction and reduces oxidative stress in hiPSC-derived dopaminergic neurons with POLG mutation. Experimental Neurology. , 337 (2021).
  11. Kikuchi, T., et al. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson’s disease model. Nature. 548 (7669), 592-596 (2017).
  12. Juopperi, T. A., et al. Astrocytes generated from patient induced pluripotent stem cells recapitulate features of Huntington’s disease patient cells. Molecular Brain. 5, 17 (2012).
  13. Liang, K. X., et al. Stem cell derived astrocytes with POLG mutations and mitochondrial dysfunction including abnormal NAD+ metabolism is toxic for neurons. bioRxiv. , (2020).
  14. Liu, Q., et al. Human neural crest stem cells derived from human ESCs and induced pluripotent stem cells: induction, maintenance, and differentiation into functional schwann cells. Stem Cells Translational Medicine. 1 (4), 266-278 (2012).
  15. Hong, Y. J., Do, J. T. Neural lineage differentiation from pluripotent stem cells to mimic human brain tissues. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 400 (2019).
  16. Lundin, A., et al. Human iPS-derived astroglia from a stable neural precursor state show improved functionality compared with conventional astrocytic models. Stem Cell Reports. 10 (3), 1030-1045 (2018).
  17. Liang, K. X., et al. N-acetylcysteine amide ameliorates mitochondrial dysfunction and reduces oxidative stress in hiPSC-derived dopaminergic neurons with POLG mutation. Experimental Neurology. 337, 113536 (2021).
  18. Pendergrass, W., Wolf, N., Poot, M. Efficacy of MitoTracker Green™ and CMXrosamine to measure changes in mitochondrial membrane potentials in living cells and tissues. Cytometry. Part A. 61 (2), 162-169 (2004).
  19. Keij, J. F., Bell-Prince, C., Steinkamp, J. A. Staining of mitochondrial membranes with 10-nonyl acridine orange, MitoFluor Green, and MitoTracker Green is affected by mitochondrial membrane potential altering drugs. Cytometry. 39 (3), 203-210 (2000).
  20. Buckman, J. F., et al. MitoTracker labeling in primary neuronal and astrocytic cultures: influence of mitochondrial membrane potential and oxidants. Journal of Neuroscience Methods. 104 (2), 165-176 (2001).
  21. Zanchetta, L. M., Kirk, D., Lyng, F., Walsh, J., Murphy, J. E. Cell-density-dependent changes in mitochondrial membrane potential and reactive oxygen species production in human skin cells post sunlight exposure. Photodermatology, Photoimmunology & Photomedicine. 26 (6), 311-317 (2010).
check_url/63116?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liang, K. X., Chen, A., Kristiansen, C. K., Bindoff, L. A. Flow Cytometric Analysis of Multiple Mitochondrial Parameters in Human Induced Pluripotent Stem Cells and Their Neural and Glial Derivatives. J. Vis. Exp. (177), e63116, doi:10.3791/63116 (2021).

View Video