Summary

Einsatz aeroponischer Systeme für die klonale Vermehrung von Cannabis

Published: December 01, 2021
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Summary

Dieses Protokoll wurde entwickelt, um Anleitungsinformationen für die klonale Vermehrung von Cannabis sativa L. durch die Implementierung aeroponischer Systeme bereitzustellen. Die hier beschriebene Methode umfasst alle notwendigen Vorräte und Protokolle, um wünschenswerte morphologische und chemische Eigenschaften in der Gattung Cannabis erfolgreich zu reproduzieren.

Abstract

Dieses Protokoll beschreibt die Standardisierung einer effizienten klonalen Vermehrungstechnik von Hanf unter Verwendung aeroponischer Systeme. Primäre Triebstecklinge wurden aus zwei Hanfsorten namens “Cherry Wine” und “Red Robin” (17-20% mit CBD) herausgeschnitten, die als “Mutterpflanze” dienten. Eine Auxin-Vorstufe (Indol-3-Buttersäure) wurde aufgetragen, um die Wurzelentwicklung im basalen Teil der ausgeschnittenen Stecklinge vor dem Einsetzen in das System zu stimulieren. Stecklinge wurden alle drei Tage leicht mit der Nährnebellösung besprüht, um die Ernährung zu unterstützen, da die Lösung die essentiellen Makronährstoffe wie Stickstoff, Phosphor und Kalium enthält. Das Wasserreservoir des aeroponischen Systems hielt einen pH-Bereich zwischen 5,0-6,0 und eine Wassertemperatur zwischen 20-22 ° C aufrecht. Eine Tauchwasserpumpe wurde verwendet, um Wasser zu den Stecklingen zu liefern. Die Triebspitzenschnitte wurden 10 Tage lang mit 24 h Licht pro Tag versorgt, bis die Wurzelentwicklung stattfand, auf die die bewurzelten Stecklinge zu Forschungszwecken transplantiert wurden. Diese aeroponischen Systeme haben sich als wünschenswerte Ergebnisse für die Cannabisvermehrung erwiesen. Die hier beschriebene Methode lindert potenzielle Zeitbeschränkungen, die sich aus traditionellen Methoden ergeben, um ein effizienteres Mittel für die asexuelle Vermehrung von Cannabis zu ermöglichen.

Introduction

Cannabis sativa L. ist eine einjährige, zweihäusige, blühende Pflanze aus der Familie der Cannabaceae. Cannabinoide, die vorwiegend in Drüsentrichomen auf der äußeren epidermalen Schicht von Hochblattgeweben an weiblichen Blütenständen1 produziert werden, werden vor allem aufgrund ihrer zunehmend anerkannten medizinischen Eigenschaften zu einem immer beliebteren Forschungsthema. Cannabidiol (CBD) ist nach Δ9-Tetrahydrocannabinol (THC) das zweithäufigste Cannabinoid in Cannabis und wird einer Vielzahl von medizinischen Vorteilen zugeschrieben, darunter analgetische Eigenschaften2, Anti-Krampf-Eigenschaften3, antidepressive Eigenschaften4, Verringerung des Diabetesrisikos5 und Behandlung verschiedener Schlafstörungen6. Aufgrund der Vielzahl von gesundheitlichen Vorteilen, die mit den Metaboliten der Cannabispflanze verbunden sind, besteht eine wachsende Nachfrage nach ihrer kommerziellen Produktion7. Um dieser Nachfrage gerecht zu werden, werden die Anbaumethoden ständig verbessert und neu erfunden, um der aufstrebenden Cannabisindustrie kontinuierlich konsistentes, hochwertiges Pflanzenmaterial zu liefern.

Die Vermehrung von Cannabis kann auf zwei Arten erleichtert werden: sexuelle oder asexuelle Fortpflanzung. Ein Beispiel für sexuelle Fortpflanzung ist die Bestäubung einer weiblichen Eizelle mit Pollen aus den Staubblättern eines Männchens, was zu einem Samen führt, der gekeimt werden kann. Die Samenkeimung ist eine zuverlässige Anbaumethode, die für Züchtungs- und Kultivierungszwecke verwendet wurde, bei der wünschenswerte phänotypische Merkmale in den Elternlinien ausgewählt werden, um die Qualität der Nachkommen zu verbessern Cannabispflanzen , einschließlich Merkmalen wie Trockenheitstoleranz, Insektenresistenz, erhöhtem Ertrag und erhöhter Potenz8 . Unbeabsichtigte Fremdbestäubung ist jedoch ein inhärentes Risiko bei der sexuellen Fortpflanzung und verursacht unerwünschte Nachkommen, was zum potenziellen Verlust wünschenswerter Merkmale oder zur Einführung unerwünschter Merkmale führt. Ein Beispiel für diese unbeabsichtigte Bestäubung wird durch Hanfzüchter hervorgehoben, die Hanfsamen erhalten, die mit THC-produzierendem Pollen bestäubt wurden, was zu erheblichen wirtschaftlichen Verlusten aufgrund der nicht konformen Pflanzen führt (>0,3% Gesamt-THC w/w)9. Um eine Ernte zu erzeugen, die nur aus Weibchen besteht, muss außerdem ein feminisierter Samen anstelle eines nicht feminisierten Samens ausgesät werden, was zu Hermaphroditismus und anderen unerwünschten Merkmalen führen kann, die zu wirtschaftlichem Verlust führen. Um die Einschränkung der sexuellen Fortpflanzung von Cannabis zu überwinden, wurde die asexuelle Fortpflanzung in kommerziellen Produktionsmodellen der Cannabisindustrie umfassend praktiziert10.

Die asexuelle Fortpflanzung von Cannabis erfordert nur eine einzige Pflanze, was die Vermehrung eines einzigen Genotyps ermöglicht, der die kommerzielle Produktion von Pflanzen mit wünschenswerten agronomischen und pharmazeutischen Eigenschaften ermöglicht. Eine häufige Form der asexuellen Cannabis-Fortpflanzung besteht darin, kleine Teile einer weiblichen Pflanze zu schneiden und in ein erdloses Substrat11 einzufügen, das von einer Feuchtigkeitskuppel bedeckt ist, um die Wurzelbildung zu induzieren. Obwohl sich diese Methode als erfolgreich erwiesen hat, ist ein häufiger Nachteil die Ansammlung einer hohen Luftfeuchtigkeit (normalerweise 80% oder höher) in der Kuppel, die eine ideale Wachstumsumgebung für pilzliche Krankheitserreger bietet, die für neue, empfindliche Stecklinge schädlich sein können. Eine weitere Form der asexuellen Vermehrung ist die Mikrovermehrung mittels Gewebekultur, bei der sterile Techniken die Vermehrung von insekten-, mikroben- und virusfreiem Cannabispflanzenmaterial auf begrenztem Raum ermöglichen12. Dieser Prozess ist jedoch teuer, zeitaufwendig und erfordert ausgebildete Labortechniker, die für große Cannabisanlagen im Allgemeinen nicht zugänglich sind.

Es gibt nur sehr wenige veröffentlichte Forschungsberichte über die klonale Vermehrung von Cannabis. Um eine Grundlage für das Verständnis der asexuellen Fortpflanzung von Cannabis für Forschungszwecke und die industrielle Produktion zu schaffen, zielte diese Studie darauf ab, die Leichtigkeit und Zugänglichkeit des Einsatzes aeroponischer Systeme für die klonale Vermehrung von Cannabis zu demonstrieren. Aeroponische Systeme sind ideal für die asexuelle Vermehrung von Cannabis, indem sie die Stecklinge konsequent mit nährstoffreichem Wasser versorgen, rechtzeitig eine frühe Wurzelbildung induzieren und es ermöglichen, dass eine Pflanze bei Bedarf auf unbestimmte Zeit erhalten bleibt.

Protocol

1. Erzeugung einer Mutterpflanze zur klonalen Vermehrung Wählen Sie eine gesunde, weibliche Mutterpflanze, die wünschenswerte morphologische und chemische Eigenschaften aufweist, die für ihre beabsichtigte Verwendung spezifisch sind. Lassen Sie die Mutterpflanze die geeignete Größe (etwa 25 reife Triebe) für die klonale Vermehrung (d. H. Stecklinge) erreichen. Lassen Sie die Mutterpflanzen im vegetativen Wachstumsstadium (hell: dunkel = 18 h:6 h) bleiben, um das Triebw…

Representative Results

Um die Effizienz des beschriebenen aeroponischen Systems zu validieren, wurden insgesamt 10 bzw. 12 gesunde 14 cm lange Triebe aus den Mutterpflanzen “Kirschwein” bzw. “Rotkehlchen” entnommen (Abbildung 1A,B). Nach dem Eintauchen in das Rooting-Induktionsmedium wurden die Klone in das System eingebracht (Abbildung 2A). Der Aufbau und Betrieb eines aeroponischen Systems ist in Abbildung 2A schematisch dargestellt.</p…

Discussion

Mit der steigenden Nachfrage nach Cannabispflanzen mit konstantem Cannabinoidgehalt wurden in der Cannabisindustrie verschiedene klonale Vermehrungsmethoden genutzt. Die asexuelle Vermehrung zeigt mehrere Vorteile gegenüber sexuellen Methoden für eine groß angelegte, konsistente Produktion. Ein aeroponisches Vermehrungssystem ist eine modifizierte Version eines hydroponischen Systems, das einen belüfteten nährstoffreichen Wassernebel verwendet, um eine schnelle Wurzelentwicklung zu ermöglichen. Da…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Forschung wurde vom Institut für Cannabisforschung an der Colorado State University-Pueblo und dem Ministerium für Wissenschaft und IKT (2021-DD-UP-0379) und der Stadt Chuncheon (Hanfforschung und -entwicklung und Industrialisierung, 2020-2021) unterstützt.

Materials

1-part Fox Farm Fox Farm Soil Mix
1-part Promix Promix Soil Mix
1-part Roots Organic Original Auora Innovations Soil Mix
1-part Wiggle Worm Earth Worm Castings UNCO Industries Soil Mix
Algae and Bacterial Cleaning Solution (Clear Rez) EZ Clone SKU#: 225 8 fl. Oz.
Artificial Lighting AgroBrite SKU#: 1399 T5 324W 4' 6-Tube Fixture with Lamps
Cannabis Mother plant 1 (Cherry Wine) Summit CBD N/A Donated material
Cannabis Mother Plant 2 (Red Wine) Trilogene SKU: 0101RR
Corresponding Plastic Lid Office Depot N/A 38.1 cm x 25.4 cm
Drill Bit 1 Dewalt DW1586 38.1 mm spade drill bit
Drill Bit 2 Dewalt DW1308 3.175 mm drill bit
Flora/Bloom (Nutrient Solution)-5 mL General Hydroponics SKU#: 726 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) (Available Phosphate 5.0%, Soluble Potash 4.0%, Magnesium 1.5%, Sulfur 1.0%)
FloraGrow (Nutrient Solution)- 5 mL General Hydroponics SKU#: 724 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) ((Total Nitrogen 2.0% (0.25% Ammoniacal Nitrogen, 1.75% Nitrate Nitrogen), Available Phosphate 1.0%, Soluble Potash 6.0%, Magnesium 0.5%))
FloraMicro (Nutrient Solution)- 5 mL General Hydroponics SKU#: 759 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) ((Total Nitrogen 5.0% (0.3% Ammoniacal Nitrogen, 4.7% Nitrate Nitrogen), Soluble Potash 1.0%, Calcium 5.0%, Boron 0.01%, Cobalt 0.0005%, Copper 0.01%, Iron 0.1%, Manganese 0.05%, Molybdenum 0.0008%, Zinc 0.015%))
Horticultural Scissors Shear Perfection SKU#: 12620 Platinum Stainless Steel Bonsai Scissors (2.4")
Isopropyl Alcohol Equate Walmart # 574133562 70% concentration
Nutrient Mist Solution (Clonex Mist) Growth Technology SKU#: 4889 10.14 fl. Oz (300 ml) (Total Nitrogen: 5.9 × 10-4 %, Available Phosphate: 4.0 × 10-4 %, Soluble Potash: 5.0 × 10-4 %)
pH Down General Hydroponics SKU#: 733 946 ml (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg)
pH Up General Hydroponics SKU#: 730 946 ml (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg)
Plastic Container Office Depot N/A 38.1 cm x 25.4 cm x 30.48 cm
Power Drill Dewalt DCD709B 20-Volt Max ½” Drill
Rockwool Cubes Grodan SKU#: 830 38.1 mm
Rooting Solution (Clonex Rooting Gel) Growth Technology SKU#: 939 3.4 fl. Oz. (100 ml) (Indolebutyric Acid – 0.31%)
Statistic Software (Prism) GraphPad Inc.
Submersible Water Pump ActiveAQUA SKU: AAPW250 Model: AAPW250, Voltage 120V, Power 16W

References

  1. ElSohly, M. A., Radwan, M. M., Gul, W., Chandra, S., Galal, A. Phytochemistry of Cannabis sativa L. Progress in the Chemistry of Organic Natural Products. 103, 1-36 (2017).
  2. Cunetti, L., et al. Chronic pain treatment with cannabidiol in kidney transplant patients in Uruguay. Transplantation Proceedings. 50 (2), 461-464 (2018).
  3. Hausman-Kedem, M., Menascu, S., Kramer, U. Efficacy of CBD-enriched medical cannabis for treatment of refractory epilepsy in children and adolescents – An observational, longitudinal study. Brain & Development. 40 (7), 544-551 (2018).
  4. Linge, R., et al. Cannabidiol induces rapid-acting antidepressant-like effects and enhances cortical 5-HT/glutamate neurotransmission: role of 5-HT1A receptors. Neuropharmacology. 103, 16-26 (2016).
  5. Lehmann, C., et al. Experimental cannabidiol treatment reduces early pancreatic inflammation in type 1 diabetes. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 64 (4), 655-662 (2016).
  6. Shannon, S., Lewis, N., Lee, H., Hughes, S. Cannabidiol in anxiety and sleep: A large case series. The Permanente Journal. 23, 18-41 (2019).
  7. Russo, E. B. History of cannabis and its preparations in saga, science, and sobriquet. Chemistry & Biodiversity. 4 (8), 1614-1648 (2007).
  8. Vera, C. L., Hanks, A. Hemp production in Western Canada. Journal of Industrial Hemp. 9 (2), 79-86 (2004).
  9. . Hot hemp: How high THC levels can ruin a legal hemp harvest Available from: https://www.westword.com/marijuana/hot-hemp-how-high-thc-levels-can-ruin-a-legal-hemp-harvest-9963683 (2018)
  10. Lata, H., Chandra, S., Techen, N., Khan, I. A., ElSohly, M. A. Assessment of the genetic stability of micropropagated plants of Cannabis sativa by ISSR markers. Planta Medica. 76 (1), 97-100 (2010).
  11. Caplan, D., Dixon, M., Zheng, Y. Optimal rate of organic fertilizer during the flowering stage for Cannabis grown in two coir-based substrates. HortScience. 52 (12), 1796 (2017).
  12. Monthony, A. S., Page, S. R., Hesami, M., Jones, A. M. P. The past, present and future of Cannabis sativa tissue culture. Plants (Basel). 10 (1), 185 (2021).
  13. Clarke, R. C., Merlin, M. D. Cannabis domestication, breeding history, present-day genetic diversity, and future prospects. Critical Reviews in Plant Sciences. 35 (5-6), 293-327 (2016).
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Cite This Article
Regas, T., Han, J., Pauli, C. S., Park, S. Employing Aeroponic Systems for the Clonal Propagation of Cannabis. J. Vis. Exp. (178), e63117, doi:10.3791/63117 (2021).

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