Här presenterar vi ett standardiserat protokoll för övervakning av gut försurning i Drosophila melanogaster med optimal utgång. Vi använder först detta protokoll för tarmförsurning övervakning i Drosophila melanogaster och sedan visa dess användning i icke-modell Drosophila arter.
Fruktflugan midgut består av flera regioner, som var och en består av celler som utför unika fysiologiska funktioner som krävs för att tarmen ska fungera korrekt. En sådan region, kopparcellsområdet (CCR), är lokaliserad till mitten av mitten av geväret och består delvis av en grupp celler som kallas kopparceller. Kopparceller är involverade i magsyrautsöndring, en evolutionärt bevarad process vars exakta roll är dåligt förstådd. Detta dokument beskriver förbättringar i det nuvarande protokollet som används för att analysera försurning av den vuxna Drosophila melanogaster gut och visar att det kan användas på andra arter av flugor. I synnerhet visar detta dokument att tarmförsurning är beroende av flugans näringsstatus och presenterar ett protokoll baserat på detta nya fynd. Sammantaget visar detta protokoll den potentiella nyttan av att studera Drosophila kopparceller för att avslöja allmänna principer som ligger till grund för mekanismerna för gut försurning.
I insektsmagen delar kopparceller cellulära och funktionella likheter med de syraproducerande magparietala cellerna (även känd som oxyntic) i däggdjursmagen. Denna grupp av celler släpper ut syra i tarmlumen. Funktionen av syrautsöndring och anatomi bevaras evolutionärt. De viktigaste komponenterna i den urladdade syran är saltsyra och kaliumklorid. Den kemiska mekanismen för syrabildning i cellerna beror på kolsyrahydras. Detta enzym genererar en bikarbonatjon från CO2 och vatten, som frigör en kolxyljon som sedan släpps ut i lumen genom en protonpump i utbyte mot kalium. Klorid och kaliumjoner transporteras in i lumen genom ledningskanaler som resulterar i bildandet av saltsyra och kaliumklorid, huvudkomponenten i magsaft1,2,3,4.
Även om mekanismerna för syrabildning är väl förstådda, är mycket mindre känt om de fysiologiska mekanismerna som reglerar sur utsöndring. Målet med att utveckla denna metod är att hjälpa till att bättre avgränsa de cellulära vägarna som samordnar syrabildning och utsöndring och bestämma syrans roll för att medla tarmfysiologi och homeostas. Grunden bakom utvecklingen och användningen av denna teknik är att tillhandahålla en konsekvent och pålitlig metod för att studera processen för tarmförsurning i Drosophila och icke-modellorganismer. Även om det för närvarande finns ett standardprotokoll för bestämning av Drosophila midgut-försurning2,5,6, observerades signifikant variabilitet i omfattningen av försurning i vilda (WT) flugor när man använde detta protokoll för att studera kopparcellsfunktionen. För att förstå grunden för denna observerade variabilitet och få konsekventa resultat optimerades flera aspekter av standardprotokollet enligt beskrivningen nedan.
Ett kritiskt steg i detta protokoll är korrekt dissekering av tarmen för att visualisera CCR för försurning fenotyp. Syran som frigörs från kopparcellerna begränsas till CCR när tarmen är intakt. Under dissekering kan läckage som orsakas av bristning i tarmarna leda till diffusion av syra från CCR och resultera i en tarm som felaktigt poängsatts som en negativ försurning. Dessutom bleknar den gula färgen som indikerar försurning inom 5-10 min efter dissekering, vilket understryker vikten av att poängsätt…
The authors have nothing to disclose.
Författarna erkänner att stöd för arbete i författarens laboratorium tillhandahålls av en HHMI Faculty Scholar Award och startfonder från Children’s Research Institute vid UT Southwestern Medical Center.
Bromophenol blue | Sigma-Aldrich | B0126 | |
cellSens software | Olympus | Image aqusition (https://www.olympus-lifescience.com/en/software/cellsens) | |
D. simulans | Drosophila Species Stock Center at the University of California | Riverside California1 (https://www.drosophilaspecies.com/) | |
D. erecta | Drosophila Species Stock Center at the University of California | Dere cy1(https://www.drosophilaspecies.com/) | |
D. pseudoobscura | Drosophila Species Stock Center at the University of California | Eugene, Oregon(https://www.drosophilaspecies.com/) | |
D. mojavensis | Drosophila Species Stock Center at the University of California | Chocolate Mountains, California (https://www.drosophilaspecies.com/) | |
Forceps | Inox Biology | Catalog# 11252-20 | |
Fuji | Fuji | Image processing (https://hpc.nih.gov/apps/Fiji.html) | |
Glass slide | VWR | Catalog#16005-108 | |
Kim wipes Tissue | Kimtech | ||
Microscope and camera | Olympus SZ61 microscope equipped with an Olympus D-27 digital camera | Imaging | |
Oregon R | Bloomington Drosophila Stock | (https://bdsc.indiana.edu/ # 2376) | |
Petri dishes | Fisher Scientific | Catalog #FB0875713A | |
Phosphate-buffered Saline (PBS) | HyClone | Catalog # SH30258.01 | |
Stereomicroscope | Olympus SZ51 | Visual magnification |