Summary

Övervakning av tarmförsurning i den vuxna Drosophila Intestine

Published: October 11, 2021
doi:

Summary

Här presenterar vi ett standardiserat protokoll för övervakning av gut försurning i Drosophila melanogaster med optimal utgång. Vi använder först detta protokoll för tarmförsurning övervakning i Drosophila melanogaster och sedan visa dess användning i icke-modell Drosophila arter.

Abstract

Fruktflugan midgut består av flera regioner, som var och en består av celler som utför unika fysiologiska funktioner som krävs för att tarmen ska fungera korrekt. En sådan region, kopparcellsområdet (CCR), är lokaliserad till mitten av mitten av geväret och består delvis av en grupp celler som kallas kopparceller. Kopparceller är involverade i magsyrautsöndring, en evolutionärt bevarad process vars exakta roll är dåligt förstådd. Detta dokument beskriver förbättringar i det nuvarande protokollet som används för att analysera försurning av den vuxna Drosophila melanogaster gut och visar att det kan användas på andra arter av flugor. I synnerhet visar detta dokument att tarmförsurning är beroende av flugans näringsstatus och presenterar ett protokoll baserat på detta nya fynd. Sammantaget visar detta protokoll den potentiella nyttan av att studera Drosophila kopparceller för att avslöja allmänna principer som ligger till grund för mekanismerna för gut försurning.

Introduction

I insektsmagen delar kopparceller cellulära och funktionella likheter med de syraproducerande magparietala cellerna (även känd som oxyntic) i däggdjursmagen. Denna grupp av celler släpper ut syra i tarmlumen. Funktionen av syrautsöndring och anatomi bevaras evolutionärt. De viktigaste komponenterna i den urladdade syran är saltsyra och kaliumklorid. Den kemiska mekanismen för syrabildning i cellerna beror på kolsyrahydras. Detta enzym genererar en bikarbonatjon från CO2 och vatten, som frigör en kolxyljon som sedan släpps ut i lumen genom en protonpump i utbyte mot kalium. Klorid och kaliumjoner transporteras in i lumen genom ledningskanaler som resulterar i bildandet av saltsyra och kaliumklorid, huvudkomponenten i magsaft1,2,3,4.

Även om mekanismerna för syrabildning är väl förstådda, är mycket mindre känt om de fysiologiska mekanismerna som reglerar sur utsöndring. Målet med att utveckla denna metod är att hjälpa till att bättre avgränsa de cellulära vägarna som samordnar syrabildning och utsöndring och bestämma syrans roll för att medla tarmfysiologi och homeostas. Grunden bakom utvecklingen och användningen av denna teknik är att tillhandahålla en konsekvent och pålitlig metod för att studera processen för tarmförsurning i Drosophila och icke-modellorganismer. Även om det för närvarande finns ett standardprotokoll för bestämning av Drosophila midgut-försurning2,5,6, observerades signifikant variabilitet i omfattningen av försurning i vilda (WT) flugor när man använde detta protokoll för att studera kopparcellsfunktionen. För att förstå grunden för denna observerade variabilitet och få konsekventa resultat optimerades flera aspekter av standardprotokollet enligt beskrivningen nedan.

Protocol

OBS: Standardlaboratoriumlinjen Oregon R användes som en WT-kontroll. Alla flugor uppfödds på standard majsmjöl-melass medium (innehållande melass, agar, jäst, majsmjöl, tegosept, propionsyra och vatten) vid rumstemperatur med 12/12 h ljus /mörk dygnsrytm. 1. Förberedelser för analysen Samla kvinnliga flugor (0-2 dagar gamla, icke-jungfruliga) under CO2-anestesi och låt dem återhämta sig på standard majsmjölsmat i minst 3 dagar före experim…

Representative Results

Vi svalt Oregon R kvinnliga flugor i mer än 20 h och sedan mata dem med mat kompletterad med BPB (2%) för ~ 12 h, som beskrivits tidigare7,8,9,10,11. Bromofenolblå (BPB) är ett pH-avkännande färgämne. Den ändras från gult vid pH 3,0 till blått vid pH 4,6 och högre. Efter tarmdisekering, som tidigare rapporterats, visade sig vissa flugor producera sy…

Discussion

Ett kritiskt steg i detta protokoll är korrekt dissekering av tarmen för att visualisera CCR för försurning fenotyp. Syran som frigörs från kopparcellerna begränsas till CCR när tarmen är intakt. Under dissekering kan läckage som orsakas av bristning i tarmarna leda till diffusion av syra från CCR och resultera i en tarm som felaktigt poängsatts som en negativ försurning. Dessutom bleknar den gula färgen som indikerar försurning inom 5-10 min efter dissekering, vilket understryker vikten av att poängsätt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner att stöd för arbete i författarens laboratorium tillhandahålls av en HHMI Faculty Scholar Award och startfonder från Children’s Research Institute vid UT Southwestern Medical Center.

Materials

Bromophenol blue Sigma-Aldrich B0126
cellSens software Olympus Image aqusition (https://www.olympus-lifescience.com/en/software/cellsens)
D. simulans Drosophila Species Stock Center at the University of California Riverside California1 (https://www.drosophilaspecies.com/)
D. erecta Drosophila Species Stock Center at the University of California Dere cy1(https://www.drosophilaspecies.com/)
D. pseudoobscura Drosophila Species Stock Center at the University of California Eugene, Oregon(https://www.drosophilaspecies.com/)
D. mojavensis Drosophila Species Stock Center at the University of California Chocolate Mountains, California (https://www.drosophilaspecies.com/)
Forceps Inox Biology Catalog# 11252-20
Fuji Fuji Image processing (https://hpc.nih.gov/apps/Fiji.html)
Glass slide VWR Catalog#16005-108
Kim wipes Tissue Kimtech
Microscope and camera Olympus SZ61 microscope equipped with an Olympus D-27 digital camera Imaging
Oregon R Bloomington Drosophila Stock (https://bdsc.indiana.edu/ # 2376)
Petri dishes Fisher Scientific Catalog #FB0875713A
Phosphate-buffered Saline (PBS) HyClone Catalog # SH30258.01
Stereomicroscope Olympus SZ51 Visual magnification

References

  1. Hollander, F. The composition and mechanism of formation of gastric acid secretion. Science. 110 (2846), 57-63 (1949).
  2. Forte, J. G., Zhu, L. Apical recycling of the gastric parietal cell H, K-ATPase. Annual Review of Physiology. 72, 273-296 (2010).
  3. Samuelson, L. C., Hinkle, K. L. Insights into the regulation of gastric acid secretion through analysis of genetically engineered mice. Annual Review of Physiology. 65, 383-400 (2003).
  4. Yao, X., Forte, J. G. Cell biology of acid secretion by the parietal cell. Annual Review of Physiology. 65, 103-131 (2003).
  5. Driver, I., Ohlstein, B. Specification of regional intestinal stem cell identity during Drosophila metamorphosis. Development. 141 (9), 1848-1856 (2014).
  6. Overend, , et al. Molecular mechanism and functional significance of acid generation in the Drosophila midgut. Scientific Reports. 6, 27242 (2016).
  7. Shanbhag, S., Tripathi, S. Epithelial ultrastructure and cellular mechanisms of acid and base transport in the Drosophila midgut. Journal of Experimental Biology. 212, 1731-1744 (2009).
  8. Dubreuil, R. R. Copper cells and stomach acid secretion in the Drosophila midgut. International Journal of Biochemistry and Cell Biology. 36 (5), 745-752 (2004).
  9. Martorell, , et al. Conserved mechanisms of tumorigenesis in the Drosophila adult midgut. PLoS ONE. 9 (2), 88413 (2014).
  10. Strand, M., Micchelli, C. A. Regional control of Drosophila gut stem cell proliferation: EGF establishes GSSC proliferative set point & controls emergence from quiescence. PLoS One. 8 (11), 80608 (2013).
  11. Storelli, G., et al. Drosophila perpetuates nutritional mutualism by promoting the fitness of its intestinal symbiont Lactobacillus plantarum. Cell Metabolism. 27 (2), 362-377 (2018).
  12. Abu, F., et al. Communicating the nutritional value of sugar in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (12), 2829-2838 (2018).
  13. Blecker, U., Gold, B. D. Gastritis and ulcer disease in childhood. European Journal of Pediatrics. 158 (7), 541-546 (1999).
check_url/63141?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Abu, F., Ohlstein, B. Monitoring Gut Acidification in the Adult Drosophila Intestine. J. Vis. Exp. (176), e63141, doi:10.3791/63141 (2021).

View Video