Summary

कैलिनेक्ट्स सैपिडस में न्यूरोपेप्टाइड्स की बहुआयामी मास स्पेक्ट्रोमेट्रिक जांच

Published: May 31, 2022
doi:

Summary

न्यूरोपेप्टाइड्स के मास स्पेक्ट्रोमेट्रिक लक्षण वर्णन अनुक्रम, मात्रा और स्थानीयकरण जानकारी प्रदान करता है। यह अनुकूलित वर्कफ़्लो न केवल न्यूरोपेप्टाइड अध्ययनों के लिए उपयोगी है, बल्कि अन्य अंतर्जात पेप्टाइड्स के लिए भी उपयोगी है। यहां प्रदान किए गए प्रोटोकॉल नमूना तैयारी, एमएस अधिग्रहण, एमएस विश्लेषण, और एलसी-ईएसआई-एमएस, मालडी-एमएस स्पॉटिंग और मालडी-एमएस इमेजिंग का उपयोग करके न्यूरोपेप्टाइड्स के डेटाबेस उत्पादन का वर्णन करते हैं।

Abstract

न्यूरोपेप्टाइड्स सिग्नलिंग अणु हैं जो लगभग सभी शारीरिक और व्यवहारिक प्रक्रियाओं को विनियमित करते हैं, जैसे कि विकास, प्रजनन, भोजन का सेवन, और बाहरी तनावों की प्रतिक्रिया। फिर भी, जैव रासायनिक तंत्र और न्यूरोपेप्टाइड्स के पूर्ण पूरक और उनकी कार्यात्मक भूमिकाओं को खराब तरीके से समझा जाता है। इन अंतर्जात पेप्टाइड्स के लक्षण वर्णन सिग्नलिंग अणुओं के इस वर्ग के भीतर विशाल विविधता से बाधित है। इसके अतिरिक्त, न्यूरोपेप्टाइड्स सांद्रता में बायोएक्टिव होते हैं 100x – न्यूरोट्रांसमीटर की तुलना में 1000x कम और सिनैप्टिक रिलीज के बाद एंजाइमेटिक गिरावट के लिए प्रवण होते हैं। मास स्पेक्ट्रोमेट्री (एमएस) एक अत्यधिक संवेदनशील विश्लेषणात्मक उपकरण है जो व्यापक रूप से एक प्राथमिकता ज्ञान के बिना एनालिस्ट की पहचान, मात्रा निर्धारित और स्थानीयकरण कर सकता है। यह विश्व स्तर पर प्रोफाइलिंग न्यूरोपेप्टाइड्स और उपन्यास पेप्टाइड्स की खोज में सहायता करने के लिए अच्छी तरह से अनुकूल है। पेप्टाइड्स के इस वर्ग की कम बहुतायत और उच्च रासायनिक विविधता के कारण, कई नमूना तैयारी विधियों, एमएस अधिग्रहण मापदंडों और डेटा विश्लेषण रणनीतियों को इष्टतम न्यूरोपेप्टाइड लक्षण वर्णन की अनुमति देने के लिए प्रोटिओमिक्स तकनीकों से अनुकूलित किया गया है। यहां, तरल क्रोमैटोग्राफी (एलसी) -एमएस और मैट्रिक्स-असिस्टेड लेजर desorption / ionization (MALDI) -MS का उपयोग करके अनुक्रम लक्षण वर्णन, मात्रा और स्थानीयकरण के लिए जटिल जैविक ऊतकों से न्यूरोपेप्टाइड्स को अलग करने के लिए विधियों का वर्णन किया गया है। नीले केकड़े से एक न्यूरोपेप्टाइड डेटाबेस तैयार करने के लिए एक प्रोटोकॉल, कैलिनेक्ट्स सैपिडस, व्यापक जीनोमिक जानकारी के बिना एक जीव, शामिल है। इन वर्कफ़्लोज़ को विभिन्न प्रकार के उपकरणों का उपयोग करके विभिन्न प्रजातियों में अंतर्जात पेप्टाइड्स के अन्य वर्गों का अध्ययन करने के लिए अनुकूलित किया जा सकता है।

Introduction

तंत्रिका तंत्र जटिल है और एक जीव में संकेतों को प्रसारित करने के लिए न्यूरॉन्स के एक नेटवर्क की आवश्यकता होती है। तंत्रिका तंत्र संवेदी जानकारी और जैविक प्रतिक्रिया का समन्वय करता है। सिग्नल ट्रांसमिशन में शामिल जटिल और जटिल इंटरैक्शन को न्यूरोट्रांसमीटर, स्टेरॉयड और न्यूरोपेप्टाइड्स जैसे कई अलग-अलग सिग्नलिंग अणुओं की आवश्यकता होती है। चूंकि न्यूरोपेप्टाइड्स सबसे विविध और शक्तिशाली सिग्नलिंग अणु हैं जो तनाव और अन्य उत्तेजनाओं के लिए शारीरिक प्रतिक्रियाओं को सक्रिय करने में महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं, इसलिए इन शारीरिक प्रक्रियाओं में उनकी विशिष्ट भूमिका निर्धारित करना दिलचस्पी है। न्यूरोपेप्टाइड फ़ंक्शन उनकी अमीनो एसिड संरचना से संबंधित है, जो गतिशीलता, रिसेप्टर इंटरैक्शन और आत्मीयता1 को निर्धारित करता है। हिस्टोकेमिस्ट्री जैसी तकनीकें, जो महत्वपूर्ण हैं क्योंकि न्यूरोपेप्टाइड्स को ऊतक के विभिन्न क्षेत्रों में संश्लेषित, संग्रहीत और जारी किया जा सकता है, और इलेक्ट्रोफिजियोलॉजी को न्यूरोपेप्टाइड संरचना और फ़ंक्शन 2,3,4 की जांच करने के लिए नियोजित किया गया है, लेकिन ये विधियां न्यूरोपेप्टाइड्स की विशाल अनुक्रम विविधता को हल करने के लिए थ्रूपुट और विशिष्टता द्वारा सीमित हैं।

मास स्पेक्ट्रोमेट्री (एमएस) न्यूरोपेप्टाइड संरचना और बहुतायत के उच्च थ्रूपुट विश्लेषण को सक्षम बनाता है। यह विभिन्न एमएस तकनीकों के माध्यम से किया जा सकता है, सबसे अधिक तरल क्रोमैटोग्राफी-इलेक्ट्रोस्प्रे आयनीकरण एमएस (एलसी-ईएसआई-एमएस) 5 और मैट्रिक्स-असिस्टेड लेजर desorption / ionization MS (MALDI-MS)6। उच्च सटीकता द्रव्यमान माप और एमएस विखंडन का उपयोग करते हुए, एमएस अपने कार्य 7,8 का पता लगाने में सहायता करने के लिए एक प्राथमिकता ज्ञान के बिना जटिल मिश्रण से न्यूरोपेप्टाइड्स को अमीनो एसिड अनुक्रम और पोस्ट-ट्रांसलेशनल संशोधन (पीटीएम) की स्थिति असाइन करने की क्षमता प्रदान करता है। गुणात्मक जानकारी के अलावा, एमएस लेबल-मुक्त मात्रा (एलएफक्यू) या लेबल-आधारित विधियों जैसे आइसोटोपिक या आइसोबेरिक लेबलिंग9 के माध्यम से न्यूरोपेप्टाइड्स की मात्रात्मक जानकारी को सक्षम बनाता है। एलएफक्यू के मुख्य लाभों में इसकी सादगी, विश्लेषण की कम लागत और नमूना तैयारी के कदम कम हो गए हैं जो नमूना हानि को कम कर सकते हैं। हालांकि, LFQ के नुकसान में बढ़ी हुई साधन समय लागत शामिल है क्योंकि इसे रन-टू-रन परिवर्तनशीलता से मात्रात्मक त्रुटि को संबोधित करने के लिए कई तकनीकी प्रतिकृतियों की आवश्यकता होती है। यह छोटे बदलावों को सही ढंग से मापने की क्षमता में कमी की ओर भी जाता है। लेबल-आधारित विधियों को कम व्यवस्थित भिन्नता के अधीन किया जाता है क्योंकि कई नमूनों को विभिन्न प्रकार के स्थिर आइसोटोप का उपयोग करके अलग-अलग लेबल किया जा सकता है, एक नमूने में संयुक्त किया जा सकता है, और एक साथ मास स्पेक्ट्रोमेट्री के माध्यम से विश्लेषण किया जा सकता है। यह थ्रूपुट को भी बढ़ाता है, हालांकि आइसोटोपिक लेबल संश्लेषित करने या खरीदने के लिए समय लेने वाला और महंगा हो सकता है। पूर्ण स्कैन मास स्पेक्ट्रा (एमएस 1) वर्णक्रमीय जटिलता भी बढ़ जाती है क्योंकि मल्टीप्लेक्सिंग बढ़ जाती है, जो अद्वितीय न्यूरोपेप्टाइड्स की संख्या को कम कर देती है जो खंडित होने में सक्षम होती है और इसलिए, पहचानकी जाती है। इसके विपरीत, आइसोबेरिक लेबलिंग एमएस 1 स्तर पर वर्णक्रमीय जटिलता को नहीं बढ़ाता है, हालांकि यह न्यूरोपेप्टाइड्स जैसे कम बहुतायत वाले एनालिस्ट के लिए चुनौतियों का परिचय देता है। जैसा कि आइसोबेरिक मात्रा टुकड़ा आयन द्रव्यमान स्पेक्ट्रा (एमएस 2) स्तर पर किया जाता है, कम-बहुतायत वाले न्यूरोपेप्टाइड्स को परिमाणित करने में असमर्थ हो सकता है क्योंकि विखंडन के लिए अधिक प्रचुर मात्रा में मैट्रिक्स घटकों का चयन किया जा सकता है और चयनित लोगों में परिमाणित करने के लिए उच्च पर्याप्त बहुतायत नहीं हो सकती है। आइसोटोपिक लेबलिंग के साथ, प्रत्येक पहचाने गए पेप्टाइड पर मात्रा का प्रदर्शन किया जा सकता है।

पहचान और परिमाणीकरण के अलावा, स्थानीयकरण जानकारी एमएस द्वारा MALDI-MS इमेजिंग (MALDI-MSI)10 के माध्यम से प्राप्त की जा सकती है। एक नमूना सतह पर एक लेजर rastering द्वारा, एमएस स्पेक्ट्रा प्रत्येक m / z मान के लिए एक गर्मी मानचित्र छवि में संकलित किया जा सकता है। परिस्थितियों में विभिन्न क्षेत्रों में क्षणिक न्यूरोपेप्टाइड सिग्नल तीव्रता का मानचित्रण कार्य निर्धारण11 के लिए मूल्यवान जानकारी प्रदान कर सकता है। न्यूरोपेप्टाइड्स का स्थानीयकरण विशेष रूप से महत्वपूर्ण है क्योंकि न्यूरोपेप्टाइड फ़ंक्शन स्थान12 के आधार पर भिन्न हो सकता है।

न्यूरोपेप्टाइड्स अन्य सिग्नलिंग अणुओं की तुलना में विवो में कम बहुतायत में पाए जाते हैं, जैसे कि न्यूरोट्रांसमीटर, और इस प्रकार पता लगाने के लिए संवेदनशील तरीकों की आवश्यकता होतीहै 13। यह उच्च बहुतायत मैट्रिक्स घटकों को हटाने के माध्यम से प्राप्त किया जा सकता है, जैसे लिपिड11,14। सामान्य प्रोटिओमिक्स वर्कफ़्लो की तुलना में न्यूरोपेप्टाइड्स के विश्लेषण के लिए अतिरिक्त विचार किए जाने की आवश्यकता होती है, मुख्य रूप से क्योंकि अधिकांश न्यूरोपेप्टिडोमिक विश्लेषण एंजाइमेटिक पाचन को छोड़ देते हैं। यह न्यूरोपेप्टाइड डेटा विश्लेषण के लिए सॉफ्टवेयर विकल्पों को सीमित करता है क्योंकि अधिकांश को पेप्टाइड डिटेक्शन द्वारा सूचित प्रोटिओमिक्स डेटा और प्रोटीन मैचों के आधार पर एल्गोरिदम के साथ बनाया गया था। हालांकि, कई सॉफ़्टवेयर जैसे PEAKS15 उनकी डे नोवो अनुक्रमण क्षमताओं के कारण न्यूरोपेप्टाइड विश्लेषण के लिए अधिक अनुकूल है। निष्कर्षण विधि से एमएस डेटा विश्लेषण तक शुरू होने वाले न्यूरोपेप्टाइड्स के विश्लेषण के लिए कई कारकों पर विचार करने की आवश्यकता है।

यहां वर्णित प्रोटोकॉल में नमूना तैयारी और डाइमिथाइल आइसोटोपिक लेबलिंग, डेटा अधिग्रहण, और एलसी-ईएसआई-एमएस, मालडी-एमएस और मालडी-एमएसआई द्वारा न्यूरोपेप्टाइड्स के डेटा विश्लेषण के लिए तरीके शामिल हैं। कई प्रयोगों के प्रतिनिधि परिणामों के माध्यम से, नीले केकड़ों, कैलिनेक्ट्स सैपिडस से न्यूरोपेप्टाइड्स की पहचान करने, मात्रा निर्धारित करने और स्थानीयकरण करने के लिए इन तरीकों की उपयोगिता और क्षमता का प्रदर्शन किया जाता है। तंत्रिका तंत्र को बेहतर ढंग से समझने के लिए, मॉडल सिस्टम आमतौर पर उपयोग किए जाते हैं। कई जीवों में पूरी तरह से अनुक्रमित जीनोम उपलब्ध नहीं होता है, जो पेप्टाइड स्तर पर व्यापक न्यूरोपेप्टाइड खोज को रोकता है। इस चुनौती को कम करने के लिए, पूर्ण जीनोम जानकारी के बिना जीवों के लिए डेटाबेस उत्पन्न करने के लिए उपन्यास न्यूरोपेप्टाइड्स और ट्रांसक्रिप्टोम खनन की पहचान करने के लिए एक प्रोटोकॉल शामिल है। यहां प्रस्तुत सभी प्रोटोकॉल को किसी भी प्रजाति से न्यूरोपेप्टाइड नमूनों के लिए अनुकूलित किया जा सकता है, साथ ही साथ किसी भी अंतर्जात पेप्टाइड्स के विश्लेषण के लिए लागू किया जा सकता है।

Protocol

वर्णित सभी ऊतक नमूने विस्कॉन्सिन-मैडिसन विश्वविद्यालय के दिशानिर्देशों के अनुपालन में किए गए थे। 1. न्यूरोपेप्टाइड्स के एलसी-ईएसआई-एमएस विश्लेषण न्यूरोपेप्टाइड निष्कर्षण और desalt…

Representative Results

नमूना तैयारी और MS विश्लेषण के लिए वर्कफ़्लो चित्र 1 में दर्शाया गया है। न्यूरोनल ऊतक के विच्छेदन के बाद, न्यूरोपेप्टाइड नमूनों को शुद्ध करने के लिए होमोजेनाइजेशन, निष्कर्षण और डिसाल्टिंग क?…

Discussion

तंत्रिका तंत्र में पाए जाने वाले न्यूरोपेप्टाइड्स और अंतर्जात पेप्टाइड्स की सटीक पहचान, परिमाणीकरण और स्थानीयकरण उनके कार्य23,24 को समझने की दिशा में महत्वपूर्ण हैं। मास स्पेक्ट…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस शोध को राष्ट्रीय विज्ञान फाउंडेशन (CHE-1710140 और CHE-2108223) और राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (NIH) द्वारा अनुदान R01DK071801 के माध्यम से समर्थित किया गया था। एपी एनआईएच रसायन विज्ञान-जीव विज्ञान इंटरफ़ेस प्रशिक्षण अनुदान (T32 GM008505) द्वारा भाग में समर्थित था। N.V.Q. को नेशनल इंस्टीट्यूट ऑफ हेल्थ द्वारा भाग में समर्थित किया गया था, रूथ एल किर्शस्टीन नेशनल रिसर्च सर्विस अवार्ड के तहत नेशनल हार्ट लंग एंड ब्लड इंस्टीट्यूट से विस्कॉन्सिन-मैडिसन कार्डियोवैस्कुलर रिसर्च सेंटर (T32 HL007936) के विश्वविद्यालय के लिए। एलएल एनआईएच अनुदान R56 MH110215, S10RR029531, और S10OD025084, साथ ही साथ एक विलास विशिष्ट उपलब्धि प्रोफेसरशिप और चार्ल्स मेलबोर्न जॉनसन प्रोफेसरशिप से विस्कॉन्सिन पूर्व छात्र अनुसंधान फाउंडेशन और विस्कॉन्सिन-मैडिसन स्कूल ऑफ फार्मेसी द्वारा प्रदान किए गए वित्त पोषण के साथ वित्त पोषण समर्थन स्वीकार करना चाहते हैं।

Materials

Chemicals, Reagents, and Consumables
2,5-Dihydroxybenzoic acid (DHB) matrix Supelco 39319
Acetic acid Fisher Chemical A38S-500
Acetonitrile Optima LC/MS grade Fisher Chemical A955-500
Ammonium bicarbonate Sigma-Aldrich 9830
Borane pyridine Sigma-Aldrich 179752
Bruker peptide calibration mix Bruker Daltonics NC9846988
Capillary Polymicro 1068150019 to make nanoflow column (75 µm inner diameter x 360 µm outer diameter)
Cryostat cup Sigma-Aldrich E6032 any cup or mold should work
 Microcentrifuge Tubes Eppendorf 30108434
Formaldehyde Sigma-Aldrich 252549
Formaldehyde – D2 Sigma-Aldrich 492620
Formic acid Optima LC/MS grade Fisher Chemical A117-50
Gelatin Difco 214340 place in 37 °C water bath to melt
Hydrophobic barrier pen Vector Labs 15553953
Indium tin oxide (ITO)-coated glass slides Delta Technologies CB-90IN-S107 25 mm x 75 mm x 0.8 mm (width x length x thickness)
LC-MS vials Thermo TFMSCERT5000-30LVW
Methanol Optima LC/MS Grade Fisher Chemical A456-500
Parafilm Sigma-Aldrich P7793 Hydrophobic film
pH-Indicator strips Supelco 109450
Red phosphorus clusters Sigma-Aldrich 343242
Reversed phase C18 material Waters 186002350 manually packed into nanoflow column
Wite-out pen BIC 150810
ZipTip Millipore Z720070
Instruments and Tools
Automatic matrix sprayer system- M5 HTX Technologies, LLC
Centrifuge – 5424 R Eppendorf 05-401-205
Cryostat- HM 550 Thermo Fisher Scientific 956564A
Desiccant Drierite 2088701
Forceps WPI 501764
MALDI stainless steel target plate Bruker Daltonics 8280781
Pipet-Lite XLS Rainin 17014391 200 µL
Q Exactive Plus Hybrid Quadrupole-Orbitrap Thermo Fisher Scientific IQLAAEGAAPFALGMBDK
RapifleX MALDI-TOF/TOF Bruker Daltonics
SpeedVac – SVC100 Savant SVC-100D
Ultrasonic Cleaner Bransonic 2510R-MTH for sonication
Ultrasonic homogenizer Fisher Scientific FB120110 FB120 Sonic Dismembrator with CL-18 Probe
Vaccum pump- Alcatel 2008 A Ideal Vacuum Products P10976 ultimate pressure = 1 x 10-4 Torr
Vortex Mixer Corning 6775
Water bath (37C) – Isotemp 110 Fisher Scientific 15-460-10
Data Analysis Software
Expasy https://web.expasy.org/translate/
FlexAnalysis Bruker Daltonics
FlexControl Bruker Daltonics
FlexImaging Bruker Daltonics
PEAKS Studio Bioinformatics Solutions, Inc.
SCiLS Lab https://scils.de/
SignalP 5.0 https://services.healthtech.dtu.dk/service.php?SignalP-5.0
tBLASTn http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi?PROGRAM=tblastn&BLAST_
PROGRAMS=tblastn&PAGE_
TYPE=BlastSearch&SHOW_
DEFAULTS=on&LINK_LOC
=blasthome

References

  1. Hökfelt, T., et al. Neuropeptides – an overview. Neuropharmacology. 39 (8), 1337-1356 (2000).
  2. Radhakrishnan, V., Henry, J. L. Electrophysiology of neuropeptides in the sensory spinal cord. Progress in Brain Research. 104, 175-195 (1995).
  3. Nässel, D. R., Ekström, P. Detection of neuropeptides by immunocytochemistry. Methods in Molecular Biology. 72, 71-101 (1997).
  4. Martins, J., et al. Activation of Neuropeptide Y Receptors Modulates Retinal Ganglion Cell Physiology and Exerts Neuroprotective Actions In Vitro. ASN Neuro. 7 (4), 1759091415598292 (2015).
  5. Racaityte, K., Lutz, E. S. M., Unger, K. K., Lubda, D., Boos, K. S. Analysis of neuropeptide Y and its metabolites by high-performance liquid chromatography-electrospray ionization mass spectrometry and integrated sample clean-up with a novel restricted-access sulphonic acid cation exchanger. Journal of Chromatography. A. 890 (1), 135-144 (2000).
  6. Salisbury, J. P., et al. A rapid MALDI-TOF mass spectrometry workflow for Drosophila melanogaster differential neuropeptidomics. Molecular Brain. 6, 60 (2013).
  7. Schmerberg, C. M., Li, L. Function-driven discovery of neuropeptides with mass spectrometry-based tools. Protein and Peptide Letters. 20 (6), 681-694 (2013).
  8. Lee, J. E. Neuropeptidomics: Mass Spectrometry-Based Identification and Quantitation of Neuropeptides. Genomics & Informatics. 14 (1), 12-19 (2016).
  9. Sauer, C. S., Phetsanthad, A., Riusech, O. L., Li, L. Developing mass spectrometry for the quantitative analysis of neuropeptides. Expert Review of Proteomics. 18 (7), 607-621 (2021).
  10. Pratavieira, M., et al. MALDI Imaging Analysis of Neuropeptides in Africanized Honeybee ( Apis mellifera) Brain: Effect of Aggressiveness. Journal of Proteome Research. 17 (7), 2358-2369 (2018).
  11. Buchberger, A. R., Vu, N. Q., Johnson, J., DeLaney, K., Li, L. A Simple and Effective Sample Preparation Strategy for MALDI-MS Imaging of Neuropeptide Changes in the Crustacean Brain Due to Hypoxia and Hypercapnia Stress. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 31 (5), 1058-1065 (2020).
  12. Vu, N. Q., DeLaney, K., Li, L. Neuropeptidomics: Improvements in Mass Spectrometry Imaging Analysis and Recent Advancements. Current Protein & Peptide Science. 22 (2), 158-169 (2021).
  13. Li, L., Sweedler, J. V. Peptides in the brain: mass spectrometry-based measurement approaches and challenges. Annual Review of Analytical Chemistry (Palo Alto, Calif). 1, 451-483 (2008).
  14. Li, N., et al. Sequential Precipitation and Delipidation Enables Efficient Enrichment of Low-Molecular Weight Proteins and Peptides from Human Plasma. Journal of Proteome Research. 19 (8), 3340-3351 (2020).
  15. Zhang, J., et al. PEAKS DB: de novo sequencing assisted database search for sensitive and accurate peptide identification. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 11 (4), (2012).
  16. Sturm, R. M., Greer, T., Woodards, N., Gemperline, E., Li, L. Mass spectrometric evaluation of neuropeptidomic profiles upon heat stabilization treatment of neuroendocrine tissues in crustaceans. Journal of Proteome Research. 12 (2), 743-752 (2013).
  17. Gutierrez, G. J., Grashow, R. G. Cancer borealis stomatogastric nervous system dissection. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (25), e1207 (2009).
  18. DeLaney, K., et al. PRESnovo: Prescreening Prior to de novo Sequencing to Improve Accuracy and Sensitivity of Neuropeptide Identification. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 31 (7), 1358-1371 (2020).
  19. Oleisky, E. R., Stanhope, M. E., Hull, J. J., Christie, A. E., Dickinson, P. S. Differential neuropeptide modulation of premotor and motor neurons in the lobster cardiac ganglion. Journal of Neurophysiology. 124 (4), 1241-1256 (2020).
  20. Ma, M., et al. Combining in silico transcriptome mining and biological mass spectrometry for neuropeptide discovery in the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Peptides. 31 (1), 27-43 (2010).
  21. Christie, A. E., Stemmler, E. A., Dickinson, P. S. Crustacean neuropeptides. Cellular and Molecular Life Sciences : CMLS. 67 (24), 4135-4169 (2010).
  22. DeLaney, K., et al. New techniques, applications and perspectives in neuropeptide research. The Journal of Experimental Biology. 221, (2018).
  23. Habenstein, J., et al. Transcriptomic, peptidomic, and mass spectrometry imaging analysis of the brain in the ant Cataglyphis nodus. Journal of Neurochemistry. 158 (2), 391-412 (2021).
  24. Maes, K., et al. Improved sensitivity of the nano ultra-high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometric analysis of low-concentrated neuropeptides by reducing aspecific adsorption and optimizing the injection solvent. Journal of Chromatography. A. 1360, 217-228 (2014).
  25. Li, G., et al. Nanosecond photochemically promoted click chemistry for enhanced neuropeptide visualization and rapid protein labeling. Nature Communications. 10 (1), 4697 (2019).
  26. Corbière, A., et al. Strategies for the Identification of Bioactive Neuropeptides in Vertebrates. Frontiers in Neuroscience. 13, 948 (2019).
  27. Chen, R., Ma, M., Hui, L., Zhang, J., Li, L. Measurement of neuropeptides in crustacean hemolymph via MALDI mass spectrometry. Journal of American Society for Mass Spectrometry. 20 (4), 708-718 (2009).
  28. Fridjonsdottir, E., Nilsson, A., Wadensten, H., Andrén, P. E. Brain Tissue Sample Stabilization and Extraction Strategies for Neuropeptidomics. Peptidomics: Methods and Strategies. , 41-49 (2018).
  29. Buchberger, A. R., DeLaney, K., Johnson, J., Li, L. Mass Spectrometry Imaging: A Review of Emerging Advancements and Future Insights. Analytical Chemistry. 90 (1), 240-265 (2018).
  30. Phetsanthad, A., et al. Recent advances in mass spectrometry analysis of neuropeptides. Mass Spectrometry Reviews. , 21734 (2021).
  31. Pérez-Cova, M., Bedia, C., Stoll, D. R., Tauler, R., Jaumot, J. MSroi: A pre-processing tool for mass spectrometry-based studies. Chemometrics and Intelligent Laboratory Systems. 215, 104333 (2021).
  32. Christie, A. E., Chi, M. Prediction of the neuropeptidomes of members of the Astacidea (Crustacea, Decapoda) using publicly accessible transcriptome shotgun assembly (TSA) sequence data. General and Comparative Endocrinology. 224, 38-60 (2015).
  33. Livnat, I., et al. A d-Amino Acid-Containing Neuropeptide Discovery Funnel. Analytical Chemistry. 88 (23), 11868-11876 (2016).
  34. Lehrer, R. I., Ganz, T. Defensins: endogenous antibiotic peptides from human leukocytes. Ciba Foundation Symposium. 171, 276-290 (1992).
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Cite This Article
Phetsanthad, A., Vu, N. Q., Li, L. Multi-Faceted Mass Spectrometric Investigation of Neuropeptides in Callinectes sapidus. J. Vis. Exp. (183), e63322, doi:10.3791/63322 (2022).

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