Summary

Analyser av proteinuri, njurinfiltration av leukocyter och njuravsättning av proteiner hos lupusbenägna MRL/lpr-möss

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver en metod för att spåra lupusprogression hos möss. Två ytterligare procedurer presenteras för att karakterisera lupusnefrit baserat på cellinfiltration och proteinavsättning i njurarna.

Abstract

Systemisk lupus erythematosus (SLE) är en autoimmun sjukdom utan känt botemedel och kännetecknas av ihållande inflammation i många organ, inklusive njurarna. Under sådana omständigheter förlorar njuren sin förmåga att rengöra avfall från blodet och reglera salt- och vätskekoncentrationer, vilket så småningom leder till njursvikt. Kvinnor, särskilt de i fertil ålder, diagnostiseras nio gånger oftare än män. Njursjukdom är den vanligaste dödsorsaken hos SLE-patienter. Detta protokoll beskriver en snabb och enkel metod för att mäta utsöndrade proteinnivåer i insamlad urin och spåra lupusprogression över tid. Dessutom tillhandahålls ett tillvägagångssätt för att isolera njurmononukleära celler baserat på storlek och densitetsval för att undersöka njurinfiltration av leukocyter. Vidare har en immunohistokemisk metod utvecklats för att karakterisera proteinavsättning i glomeruli- och leukocytinfiltrationen i tubulointerstitiella utrymmet. Tillsammans kan dessa metoder hjälpa till att undersöka utvecklingen av kronisk inflammation i samband med njurarna hos lupusbenägna MRL/lpr-möss.

Introduction

Njurens primära funktion är eliminering av giftiga ämnen genom urin samtidigt som homeostasen av vatten och salter bibehålls1. Denna funktion hotas hos patienter med systemisk lupus erythematosus (SLE), vilket leder till så kallad lupusnefrit (LN). LN är en följd av att immunsystemet attackerar njurarna, vilket leder till ihållande njurinflammation och därför förlorar sin förmåga att rengöra avfall från blodet och reglera salt- och vätskekoncentrationer. Detta kommer så småningom att leda till njursvikt, vilket kan vara dödligt. Under den nefritiska processen rekryteras cirkulerande B-celler, T-celler och monocyter till njurarna och utsöndrar kemokiner, cytokiner och immunkomplexbildande autoantikroppar. Detta resulterar i slutändan i endotelcellskador, membranskador, renal tubulär atrofi och fibros2.

MRL/Mp-Faslpr (MRL/lpr) lupusbenägna möss är en klassisk musmodell som uppvisar lupusliknande kliniska tecken som liknar humant SLE3. Denna modell har varit avgörande för att förstå en av de främsta orsakerna till dödlighet hos SLE-patienter, lupusnefrit (LN)4. I både humant och mus-SLE kännetecknas LN av gradvis inflammation utlöst av njuravsättning av immunkomplex, följt av komplementaktivering, rekrytering av inflammatoriska celler och förlust av njurfunktion5. Immunkomplexavsättningen är det första steget för att inducera kemokin- och cytokinproduktion av inneboende njurceller, vilket utökar det inflammatoriska svaret genom att rekrytera immunceller6. Det aktuella protokollet presenterar flera tekniker för att följa njursjukdomsprogression som analyserar cellinfiltration och immunkomplexavsättning.

Urin som samlas in varje vecka möjliggör detektering och visualisering av proteinuriens tidsförlopp före, under och efter lupusdebut. Proteinuri som biomarkör kan bestämma den biologiska utvecklingen av LN. Andra fördelar med denna teknik är att den är icke-invasiv, kostnadseffektiv och lätt att implementera7. När njuren fungerar perfekt är proteinurinivån konsekvent låg; Hos MRL/lpr-möss observeras dock efter 8-9 veckors ålder en gradvis ökning av proteinurinivån, som så småningom är tillräckligt hög för att orsaka njursvikt8. Flera reagensremsor och kolorimetriska reagenser är kommersiellt tillgängliga för att övervaka problemet. Bradford-analysen är dock billig och mycket exakt för att bestämma uppkomsten av proteinuri och förloppet av lupusnefrit. Denna analys är snabb och reagenset påverkas inte av närvaron av lösningsmedel, buffertar, reduktionsmedel och metallkelaterande medel som kan finnas i ditt prov 9,10,11.

En viktig aspekt att tänka på är cellinfiltration i njuren. Dessa infiltrat främjar patogenes genom att utlösa utsöndringen av lösliga faktorer såsom cytokiner för att förvärra inflammation12. För att bättre förstå vilka cellpopulationer som finns i infiltraten är en användbar metod att isolera leukocyter13. Här används detektering av njurinfiltration av B-celler som ett exempel. Förfarandet börjar med en matsmältningsprocess med deoxiribonukleas (DNase) och kollagenas, följt av densitetsgradientseparation som tar bort skräp, röda blodkroppar och täta granulocyter. Anledningen till att isolera B-celler (CD19+) och plasmaceller (CD138+) är att lupusnjurar kan koncentrera dessa celler14. Det föreslås att närvaron av B-celler i små aggregat i njurarna kan indikera klonal expansion och följaktligen immunoglobulin (Ig) produktion. Plasmaceller är välkända för att vara närvarande i dessa aggregat också15. När leukocyter har isolerats kan fluorescensaktiverad cellsortering (FACS) användas för att analysera cellerna av intresse vid färgning med olika fluorescenskonjugerade antikroppar.

Immunofluorescens är en av de immunhistokemiska (IHC) detektionsmetoderna som möjliggör fluorescerande visualisering av proteiner i 4 μm tjocka njurvävnadsprover. Andra IHC-detektionsmetoder beror på analyternas natur, bindningskemi och andra faktorer16. Immunofluorescens är en snabb identifieringsmetod som utsätter antigenet för dess motsvarighetsantikropp märkt med en specifik fluorokrom (eller ett fluorescerande färgämne). När den är upphetsad producerar den ljus som ett fluorescensmikroskop kan upptäcka. Denna teknik kan användas för att observera avsättningen av komplement C3 och IgG2a17. Överdriven komplementkaskadaktivering kan associeras med ett okontrollerat immunsvar och funktionsförlust18. Immunavsättning av anti-dubbelsträngade DNA (anti-dsDNA) autoantikroppar i njuren är ett stort problem19, där de med IgG2a-isotyp har associerats med LN20. Specifikt uppvisar anti-dsDNA-antikroppar mer patogenicitet och affinitet till kärnmaterial och bildar immunkomplex21. När IgG2a är närvarande aktiveras komplementkaskaden, inklusive C3, för att rensa immunkomplexen22. C3- och IgG2a-markörerna kan kvantifieras individuellt eller överlagras för att fastställa deras korrelation.

I synnerhet är serumkreatininmätning en annan pålitlig teknik som kan användas tillsammans med mikroskopisk hematuri och njurbiopsier för att diagnostisera LN23. Närvaron av proteinuri är emellertid en stark indikator på glomerulär skada. I den meningen kan övervakning av proteinurinivån under lupus upptäcka sjukdomsdebut och komplettera andra metoder för att diagnostisera lupus. Dessutom kan immunkomplex avsatta i glomeruli inducera ett inflammatoriskt svar, aktivera komplementsystemet och rekrytera mer inflammatoriska celler. En annan anmärkningsvärd punkt i detta protokoll är B-cellinfiltration i njurarna. Detta, tillsammans med de infiltrerade T-cellerna, förstärker lokala immunsvar som utlöser organskador. Viktigt är att klassificeringen av LN inte bara baseras på glomerulära morfologiska förändringar som ses i mikroskopi utan också immunavlagringar observerade med immunofluorescens. Därför erbjuds i detta protokoll exakta och kostnadseffektiva metoder för analys av njurfunktionen i laboratorieinställningar.

Protocol

Detta protokoll är godkänt av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) vid Virginia Tech. Eftersom lupussjukdom har en högre incidens hos kvinnor användes endast kvinnliga MRL/lpr-möss. Provtagningen påbörjades vid 4 veckors ålder och avslutades vid 15 veckor. Mössen erhölls från kommersiella källor (se materialförteckning) och föddes upp och hölls i en specifik patogenfri miljö enligt de institutionella riktlinjerna. 1. Proteinuritest…

Representative Results

Protokollet använder flera metoder för att bedöma MRL/lpr-möss för lupusnefrit. Först beskrivs ett förfarande för att studera ökade proteinurinivåer på grund av njursvikt över tid. Som visas i figur 1, honmöss behandlades med oral sondmatning av 200 μl fosfatbuffrad saltlösning (1x PBS) som kontrollgrupp och probiotiska Lactobacillus reuteri som behandlingsgrupp, i en koncentration av 109 cfu/ml, två gånger i veckan. Behandlingen började vid 3 veckors å…

Discussion

LN är en ledande dödsorsak hos SLE-patienter, och faktorer som förvärrar sjukdomen är fortfarande oklara. Tillämpningen av detta protokoll är att karakterisera njurfunktionen med hjälp av flera metoder, inklusive mätning av proteinuri, FACS-analys av isolerade njurleukocyter och immunofluorescensfärgning av frysta njursektioner.

En viktig punkt att tänka på när man samlar urin är att man måste vara konsekvent med tiden på dagen och platsen för urinuppsamling. Möss är nattlig…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Flow Cytometry Core Facility, Histopathology Laboratory, Fralin Imaging Center vid Virginia Polytechnic Institute och State University för teknisk support. Detta arbete stöds av olika NIH och interna bidrag.

Materials

10x Tris-Buffered Saline (TBS) Thermo Fisher Scientific J60764.K2
2-mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 21985-023
Anti-Human/Mouse C3 Cedarlane CL7632F
Anti-Mouse CD138 BV711 Biolegend 142519
Anti-Mouse CD45 AF700 Biolegend 103127
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A9418-100G
Collagenase D Sigma-Aldrich 11088882001
Confocal Microscope LSM 880 Zeiss LSM 880
Coplin jar Fisher Scientific 50-212-281
Cryomold Fisher Scientific NC9511236
Density gradient medium GE Healthcare 17-1440-02 Percoll
DEPC-Treated water Thermo Fisher Scientific AM9906
DNase I Sigma-Aldrich D4527
dsDNA-EC InvivoGen tlrl-ecdna
Ethylenediaminetetraacetic Acid Fisher Scientific S311-500 EDTA
EVOS M5000 Microscope imaging system Thermo Fisher Scientific AMF5000
FACS Fusion Cell sorter BD Biosciences FACS Fusion
Fetal Bovine Serum – Premium, Heat Inactivated R&D systems S11150H
Fisherbrand 96-Well Polystyrene Plates Fisher Scientific 12-565-501
Graphpad prism GraphPad N/A
Hank’s Balanced Salt Solution Thermo Fisher Scientific 14175-079
HEPES Thermo Fisher Scientific 15630-080
ImageJ software National Institutes of Health N/A
Lactobacillus reuteri Kandler et al. ATCC 23272
MEM non-essential amino acids Thermo Fisher Scientific 11140-050
MRL/MpJ-Fas lpr /J Mice (MRL/lpr) Jackson Lab 485
Nail enamel N/A N/A Any conventional store
O.C.T compound Tisse-Tek 4583
PAP pen Sigma-Aldrich Z377821
Peel-A-Way Disposable Embedding Molds Polysciences R-30
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140-122
Phosphate-buffered saline (PBS) Thermo Fisher Scientific 70011069
Pierce 20x TBS Buffer Thermo Fisher Scientific 28358
Pierce Coomassie Plus (Bradford) Assay kit Thermo Fisher Scientific 23236 Albumin standard included
ProLon Gold Antifade Mountant ThermoFisher P36934
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 BD Biosciences 553141 FcR block
RPMI 1640 Thermo Fisher Scientific 11875-093
Sodium pyruvate Thermo Fisher Scientific 11360-070
SpectraMax M5 Molecular Devices N/A SoftMax Pro 6.1 software
Sterile cell Strainers 100 µM Fisher Scientific 22363549
Tween 20 Fisher Scientific BP337-500
Vancomycin Hydrochloride Goldbio V-200-1
Zombie Aqua Biolegend 423102 fluorescent dye for flow cytometry analysis

References

  1. Tsokos, G. C. Systemic Lupus Erythematosus. New England Journal of Medicine. 365 (22), 2110-2121 (2011).
  2. Davidson, A., Aranow, C. Lupus nephritis: lessons from murine models. Nature Reviews Rheumatology. 6 (1), 13-20 (2010).
  3. Maldonado, M. A., et al. The role of environmental antigens in the spontaneous development of autoimmunity in MRL-lpr mice. Journal of Immunology. 162 (11), 6322-6330 (1999).
  4. Lech, M., Anders, H. J. The pathogenesis of lupus nephritis. Journal of the American Society of Nephrology. 24 (9), 1357-1366 (2013).
  5. Bagavant, H., Fu, S. M. Pathogenesis of kidney disease in systemic lupus erythematosus. Current Opinion in Rheumatology. 21 (5), 489-494 (2009).
  6. Li, Q. Z., et al. Identification of autoantibody clusters that best predict lupus disease activity using glomerular proteome arrays. Journal of Clinical Investigation. 115 (12), 3428-3439 (2005).
  7. Aragón, C. C., et al. Urinary biomarkers in lupus nephritis. Journal of Translational Autoimmunity. 3, 100042 (2020).
  8. Mu, Q., et al. Control of lupus nephritis by changes of gut microbiota. Microbiome. 5 (1), 73 (2017).
  9. Lu, T. -. S., Yiao, S. -. Y., Lim, K., Jensen, R. V., Hsiao, L. -. L. Interpretation of biological and mechanical variations between the Lowry versus Bradford method for protein quantification. North American Journal of Medical Sciences. 2 (7), 325-328 (2010).
  10. Lamb, E. J., MacKenzie, F., Stevens, P. E. How should proteinuria be detected and measured. Annals of Clinical Biochemistry. 46, 205-217 (2009).
  11. Viswanathan, G., Upadhyay, A. Assessment of proteinuria. Advances in Chronic Kidney Disease. 18 (4), 243-248 (2011).
  12. Hsieh, C., et al. Predicting outcomes of lupus nephritis with tubulointerstitial inflammation and scarring. Arthritis Care & Research. 63 (6), 865-874 (2011).
  13. Hill, G. S., Delahousse, M., Nochy, D., Mandet, C., Bariéty, J. Proteinuria and tubulointerstitial lesions in lupus nephritis. Kidney International. 60 (5), 1893-1903 (2001).
  14. Chang, A., et al. In situ B cell-mediated immune responses and tubulointerstitial inflammation in human lupus nephritis. Journal of Immunology. 186 (3), 1849-1860 (2011).
  15. Schrezenmeier, E., Jayne, D., Dörner, T. Targeting B Cells and plasma cells in glomerular diseases: translational perspectives. Journal of the American Society of Nephrology. 29 (3), 741 (2018).
  16. Fitzgibbons, P. L., et al. Principles of analytic validation of immunohistochemical assays: Guideline from the college of American pathologists pathology and laboratory quality center. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 138 (11), 1432-1443 (2014).
  17. Lewis, M. J., Botto, M. Complement deficiencies in humans and animals: links to autoimmunity. Autoimmunity. 39 (5), 367-378 (2006).
  18. Watanabe, H., et al. Modulation of renal disease in MRL/lpr mice genetically deficient in the alternative complement pathway factor B. Journal of Immunology. 164 (2), 786-794 (2000).
  19. Yin, Z., et al. IL-10 regulates murine lupus. Journal of Immunology. 169 (4), 2148-2155 (2002).
  20. Singh, R. R., et al. Differential contribution of IL-4 and STAT6 vs STAT4 to the development of lupus nephritis. Journal of Immunology. 170 (9), 4818-4825 (2003).
  21. van Bavel, C. C., Fenton, K. A., Rekvig, O. P., vander Vlag, J., Berden, J. H. Glomerular targets of nephritogenic autoantibodies in systemic lupus erythematosus. Arthritis & Rheumatism. 58 (7), 1892-1899 (2008).
  22. Zuniga, R., et al. Identification of IgG subclasses and C-reactive protein in lupus nephritis: the relationship between the composition of immune deposits and FCgamma receptor type IIA alleles. Arthritis & Rheumatism. 48 (2), 460-470 (2003).
  23. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  24. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72 (1), 248-254 (1976).
  25. Cabana-Puig, X., et al. Phenotypic drift in lupus-prone MRL/lpr Mice: potential roles of micrornas and gut microbiota. Immunohorizons. 6 (1), 36-46 (2022).
  26. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  27. Kienzle, N., Young, D., Zehntner, S., Bushell, G., Sculley, T. B. DNaseI treatment is a prerequisite for the amplification of cDNA from episomal-based genes. Biotechniques. 20 (4), 612-616 (1996).
  28. Park, J. G. -., et al. Immune cell composition in normal human kidneys. Scientific Reports. 10 (1), 15678 (2020).
  29. Im, K., Mareninov, S., Diaz, M. F. P., Yong, W. H. An introduction to performing immunofluorescence staining. Methods in Molecular Biology. 1897, 299-311 (2019).
  30. Okutucu, B., Dınçer, A., Habib, &. #. 2. 1. 4. ;., Zıhnıoglu, F. Comparison of five methods for determination of total plasma protein concentration. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 70 (5), 709-711 (2007).
check_url/63506?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cabana-Puig, X., Luo, X. M. Analyses of Proteinuria, Renal Infiltration of Leukocytes, and Renal Deposition of Proteins in Lupus-prone MRL/lpr Mice. J. Vis. Exp. (184), e63506, doi:10.3791/63506 (2022).

View Video