Summary

Rat Ex Vivo Lung Perfusion Model의 설계 및 구현

Published: May 26, 2023
doi:

Summary

Ex vivo lungs는 in vivo 실험의 교란 변수를 배제하면서 생리학적 데이터를 수집하기 위한 다양한 실험에 유용합니다. 상용 설정은 비용이 많이 들고 수집할 수 있는 데이터 유형이 제한되는 경우가 많습니다. 다양한 연구 설계에 적용할 수 있는 완전 모듈식 설정을 구축하는 방법을 설명합니다.

Abstract

Ex vivo lung preparations는 다양한 연구 분야로 전환될 수 있는 유용한 모델로, 해당 in vivoin vitro 모델을 보완합니다. 고립된 폐를 사용하고자 하는 실험실은 저렴하고 신뢰할 수 있으며 관심 주제에 맞게 쉽게 조정할 수 있는 설정을 확립하기 위해 중요한 단계와 내재된 문제를 인식해야 합니다. 이 논문은 심박출량의 변화와 무관하게 폐혈관 긴장도에 대한 약물 및 가스 효과를 연구하기 위한 생체 외 쥐 폐 환기 및 관류를 위한 DIY(do it yourself) 모델을 설명합니다. 이 모델을 만드는 것에는 a) 장치의 설계 및 구성, b) 폐 분리 절차가 포함됩니다. 이 모델은 상용 대안보다 비용 효율적이면서도 특정 연구 질문의 변화에 적응할 수 있을 만큼 모듈화된 설정을 제공합니다. 다양한 연구 주제에 사용할 수 있는 일관된 모델을 보장하기 위해 다양한 장애물을 해결해야 했습니다. 일단 확립된 이 모델은 다양한 질문에 매우 적응할 수 있는 것으로 입증되었으며 다양한 연구 분야에 맞게 쉽게 변경할 수 있습니다.

Introduction

체외 폐 관류(EVLP) 기법1은 지난 10년 동안 폐 이식2, 허혈/재관류3, 폐 대사4 및 면역 반응5을 연구하는 수단으로 사용이 증가하고 있다. 격리되어 있지만 온전한 환기 및 관류된 폐는 신경 및 호르몬 입력 또는 생체 내 혈류역학 변화와 같은 잠재적 교란 요인 없이 잠재적 중재 및/또는 치료법에 대한 폐 혈관 구조를 포함한 폐의 반응을 직접 평가할 수 있는 매우 중요한 기능을 제공합니다. 동시에, 그들은 체외 조건과 대조적으로 환기와 관류의 생리적 상호 작용을 유지합니다. 예를 들어, 폐5의 면역 반응을 조사하는 제안은 폐 이식을 위한 기증자 풀 크기6를 늘리는 데 초점을 맞춘 연구와 동일한 품질의 데이터를 필요로 합니다. EVLP는 마우스3, 랫트 7,8,9,10,11,12, 돼지 13 및 인간 2를 포함한 다양한 종에 걸쳐 사용할 수 있습니다. 따라서 다양한 실험 매개변수로부터 신뢰할 수 있는 데이터를 생성할 수 있는 모델을 확립할 필요가 있습니다. 임상적 관련성은 EVLP 모델을 도구로 사용하여 후속 연구에서 생성됩니다.

대부분의 종에 대해 상업용 설정을 구매할 수 있지만 비용이 많이 들고 연구자를 특정 브랜드의 장비 및 독점 소프트웨어로 제한할 수 있습니다. 즉시 사용 가능한 설정에서 벗어나는 경우(예: 한 종에서 다른 종으로 이동) 예측과 제공된 설정을 우회해야 하며, 이는 어렵거나 불가능한 것으로 판명될 수 있습니다. 다음에서는 모듈식이고 비용 효율적인 쥐 격리 폐를 위한 DIY(do it yourself) 설정과 폐를 분리하는 수술 절차에 대해 설명합니다.

Protocol

실험의 생체 내 부분(전신 마취에서 안락사까지)은 해당 IACUC(Institutional Animal Care and Use Committee)의 사전 승인이 필요합니다. 본 명세서에 기술된 모든 절차는 테네시주 내슈빌에 있는 밴더빌트 대학 의료 센터의 IACUC에 의해 승인(프로토콜 번호 M1700168)되었으며, ARRIVE 가이드라인14에 따라 수행되었다. 실험에 앞서, 모든 쥐들은 연구소의 동물 보호 시설에 수용되어 물과 음식…

Representative Results

10 분의 안정화 및 기준선 판독 후, 우리는 10 마리의 수컷 Sprague Dawley 쥐의 첫 번째 세트를 5 개의 작은 그룹으로 무작위 배정했습니다 : 5, 7.5, 8, 9 또는 10 분 (그룹 당 n = 2) 및 재관류; 이러한 제한된 예비 용량 찾기 실험은 기도 압력 및 부종 형성의 가파르고 돌이킬 수 없는 증가가 궁극적으로 발생하기 전에 충분한 환기 및 재관류를 허용할 수 있는 가능한 가장 긴 허혈 시간을 식별하기 위해 수행?…

Discussion

이 설정을 사용하여 실험실에서 100개 이상의 실험이 성공적으로 수행되었습니다. 이 맞춤형 설정의 모듈식 설계는 실험 요구 사항의 잠재적 변경에 대한 뛰어난 유연성을 제공했습니다. 다른 설정에서는 말단 장기에 의한 일정한 산소 소비 및CO2 생성을 모방하기 위해 탈산소화기(18)를 사용하지만, 이 단순화된 모델은 폐 혈관 긴장도에 대한 상이한 가스 조성의 영향을 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

미국 재향군인회 생물의학 연구소 R&D 서비스(U.S. Department of Veteran Affairs Biomedical Laboratory R&D Service)의 Merit Review Award(101 BX003482), NIH 보조금(5R01 HL123227), 미국심장협회(American Heart Association)의 Transformative Project Award(962204) 및 Dr. Riess에게 수여된 기관 기금이 부분적으로 지원을 제공했습니다. Balzer 박사는 Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation)로부터 프로젝트 번호 BA 6287/1-1로부터 관련 없는 연구비를 지원받았습니다. 저자들은 이 연구에 귀중한 기여를 한 Matthew D. Olsen, Chun Zhou, Zhu Li, Rebecca C. Riess에게 감사의 뜻을 전한다.

Materials

1,000 mL Glass Beaker Pyrex, Chicago, IL
1,500 mL Glass Beaker Pyrex, Chicago, IL
Air Trap Compliance Chamber Radnoti 130149
Bioamplifiers CWE Inc BPM-832
Clamps Fisher Scientific S02626
DAQ (Data Acquisition) National Instruments, Austin, TX NI USB-6343
Gas Mixer CWE Inc, Ardmore, PA GSM-4
Heating Coil Radnoti, Covina, CA 158822
Heating Plate Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 11-100-49SH
Heparin Pfizer W63422
LabVIEW Full Development System 2014 National Instruments
Pentobarbital Diamondback Drugs G2270-0235-50
pH700 Probe OAKTON, Vernon Hills, IL  EW-35419-10
Polystat Water Bath Cole-Parmer EW-12121-02
Rodent Ventilator Harvard Apparatus, Holliston, MA Model 683
Roller Pump Cole-Parmer, Wertheim, Germany  Ismatec REGLO Digital MS 2/8
Sprague Dawley Rat Charles River, Wilmington, MA Strain code 001
VetScan i-STAT Abraxis, Chicago, IL i-STAT 1

References

  1. Uhlig, S., Taylor, A. E. . Methods in Pulmonary Research. , (1998).
  2. Ghaidan, H., et al. Ten year follow-up of lung transplantations using initially rejected donor lungs after reconditioning using ex vivo lung perfusion. Journal of Cardiothoracic Surgery. 14 (1), 125 (2019).
  3. Stone, M. L., et al. Ex vivo perfusion with adenosine A2A receptor agonist enhances rehabilitation of murine donor lungs after circulatory death. Transplantation. 99 (12), 2494-2503 (2015).
  4. Valenza, F., et al. The consumption of glucose during ex vivo lung perfusion correlates with lung edema. Transplantation Proceedings. 43 (4), 993-996 (2011).
  5. Sayner, S. L., et al. Paradoxical cAMP-induced lung endothelial hyperpermeability revealed by Pseudomonas aeruginosa ExoY. Circulation Research. 95 (2), 196-203 (2004).
  6. McAuley, D. F., et al. Clinical grade allogeneic human mesenchymal stem cells restore alveolar fluid clearance in human lungs rejected for transplantation. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 306 (9), L809-L815 (2014).
  7. Pego-Fernandes, P. M., et al. Experimental model of isolated lung perfusion in rats: first Brazilian experience using the IL-2 isolated perfused rat or guinea pig lung system. Transplantation Proceedings. 42 (2), 444-447 (2010).
  8. Noda, K., et al. Successful prolonged ex vivo lung perfusion for graft preservation in rats. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 45 (3), e54-e60 (2014).
  9. Nelson, K., et al. Method of isolated ex vivo lung perfusion in a rat model: lessons learned from developing a rat EVLP program. Journal of Visualized Experiments. (96), e52309 (2015).
  10. Bassani, G. A., et al. Ex vivo lung perfusion in the rat: detailed procedure and videos. PLoS One. 11 (12), e0167898 (2016).
  11. Watson, K. E., Segal, G. S., Conhaim, R. L. Negative pressure ventilation enhances acinar perfusion in isolated rat lungs. Pulmonary Circulation. 8 (1), 2045893217753596 (2018).
  12. Ohsumi, A., et al. A method for translational rat ex vivo lung perfusion experimentation. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 319 (1), L61-L70 (2020).
  13. Hozain, A. E., et al. Multiday maintenance of extracorporeal lungs using cross-circulation with conscious swine. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 159 (4), 1640-1653 (2020).
  14. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 8 (6), e1000412 (2010).
  15. van Zanden, J. E., Leuvenink, H. G. D., Verschuuren, E. A. M., Erasmus, M. E., Hottenrott, M. C. A translational rat model for ex vivo lung perfusion of pre-injured lungs after brain death. PLoS One. 16 (12), e0260705 (2021).
  16. Cleveland, W. J., et al. Implementation of LabVIEW as a virtual instrument in a cost-effective isolated lung setup. The FASEB Journal. 33 (1), 846 (2019).
  17. Jamieson, S. W., Stinson, E. B., Oyer, P. E., Baldwin, J. C., Shumway, N. E. Operative technique for heart-lung transplantation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 87 (6), 930-935 (1984).
  18. Liu, M., et al. Alterations of nitric oxide synthase expression and activity during rat lung transplantation. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 278 (5), L1071-L1081 (2000).
  19. Riess, M. L., et al. Glucose measurements in blood-free balanced salt solutions with three devices (i-STAT®, glucose test strips and ACCU-CHEK® Aviva). Anesthesia and Analgesia. 128 (5), 924 (2019).
  20. Menezes, A. Q., et al. Comparison of Celsior and Perfadex lung preservation solutions in rat lungs subjected to 6 and 12 hours of ischemia using an ex-vivo lung perfusion system. Clinics. 67 (11), 1309-1314 (2012).
  21. Riess, M. L., et al. Electrolyte measurements in blood-free balanced salt solutions – comparison of i-STAT® with ABL80. Anesthesia and Analgesia. 130 (5), 984 (2020).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Cleveland, W. J., Hees, J. E., Balzer, C., Douglas, H. F., Stevens, T., Riess, M. L. Design and Implementation of a Rat Ex Vivo Lung Perfusion Model. J. Vis. Exp. (195), e64740, doi:10.3791/64740 (2023).

View Video