Denne protokollen beskriver isolering av pulmonale interstitielle makrofager (IM) og deres adoptivoverføring etter IL-33-stimulering av lungealveolene i en musemodell, noe som kan lette in vivo-studien av idiopatisk lungefibrose (IPF).
Den inflammatoriske responsen forårsaket av tidlig lungeskade er en av de viktigste årsakene til utviklingen av idiopatisk lungefibrose (IPF), som ledsages av aktivering av inflammatoriske celler som makrofager og nøytrofiler, samt frigjøring av inflammatoriske faktorer, inkludert TNF-α, IL-1β og IL-6. Tidlig inflammasjon forårsaket av aktiverte pulmonale interstitielle makrofager (IM) som respons på IL-33-stimulering er kjent for å spille en viktig rolle i den patologiske prosessen med IPF. Denne protokollen beskriver adoptivoverføring av IM stimulert av IL-33 til lungene hos mus for å studere IPF-utvikling. Det involverer isolering og kultur av primære IM fra vertsmuslungene, etterfulgt av adoptivoverføring av stimulerte IM til alveolene hos bleomycin (BLM)-induserte IPF-mottakermus (som tidligere har blitt utarmet av alveolære makrofager ved behandling med clodronatliposomer), og den patologiske evalueringen av disse musene. De representative resultatene viser at adoptivoverføring av IL-33-stimulerte makrofager forverrer lungefibrose hos mus, noe som tyder på at etableringen av makrofag-adoptivoverføringseksperimentet er et godt teknisk middel for å studere IPF-patologi.
Idiopatisk lungefibrose (IPF) er en diffus lungebetennelsessykdom forårsaket av mange faktorer1. I cytokinmikromiljøet til Th1- og Th2-immunresponsen kan makrofager polariseres til klassisk aktiverte makrofager (M1) og alternativt aktiverte makrofager (M2). Lipopolysakkarider (LPS) eller cytokinet IFN- γ induserer M1-makrofager til å polarisere og produsere proinflammatoriske cytokiner, inkludert iNOS, IL-1, IL-6, TNF-α og IL-12. I motsetning til dette driver type II-cytokinene IL-4 og IL-13 polariseringen av M2-makrofager, som kan produsere forskjellige fibroblastvekstfremmende faktorer, som TGF-β og PDGF, som fremmer lungefibrose2. Den patologiske prosessen med IPF ledsages av makrofagaktivering og infiltrasjon. IPF medierer skadereparasjon, betennelse og fibrose gjennom frigjøring av cytokiner3. Siden bare begrensede terapeutiske alternativer er tilgjengelige, har det å utforske de molekylærpatologiske mekanismene ved IPF stor betydning for å utvikle nye strategier for forebygging og behandling av IPF. Tidligere studier av vår gruppe og andre forskere 4,5 har bekreftet økt frisetting av IL-33 hos IPF-pasienter og i musemodeller med bleomycin (BLM)-indusert IPF. IL-33 frigjøres av epitel- og endotelceller under fibrose og er involvert i makrofagaktivering, noe som resulterer i unormal spredning av fibroblaster, leukocyttinfiltrasjon og eventuelt tap av lungefunksjon5. Den nåværende protokollen beskriver adoptivoverføring av IL-33-stimulerte interstitielle makrofager (IM) inn i alveolene som et middel til å studere IPF-utvikling i musemodeller. Her ble IM isolert fra lungevevet til vertsmus, dyrket in vitro, stimulert med IL-33 i 24 timer, og deretter adoptivt overført til alveolene hos mottakermus ved trakealinjeksjon. Den direkte samlingen av stimulerte musemakrofager og deres adoptivoverføring til mottakeralveolene ble funnet å forverre graden av lungefibrose og kan tydeligere illustrere påvirkningen av stimulerende faktorer på fibrose sammenlignet med tidligere studier6. Teknikken som beskrives i denne artikkelen, kan gjøre det mulig for forskere å undersøke funksjonen til makrofager stimulert av potensielle cytokiner i utviklingen av IPF.
Denne studien gir en effektiv metode for å tømme, isolere, kultur og overføre makrofager, noe som kan bidra til å studere mekanismene for lungefibrose hos mus. Det er mange metoder for uttømming av makrofager fra mus, for eksempel trakealadministrasjon, injeksjon av halevene og nasal innånding11. Denne studien optimaliserte nasal innåndingsmetoden, som er enkel å betjene og effektivt kan tømme lungemakrofager 8,9. Etter IL-33-stim…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne anerkjenner Special Topic of Laboratory Management of Jiangnan University: Construction of Digital Slice Library Based on Pathological Specimens (JDSYS202223) og National Natural Science Foundation of China (81800065).
DMEM | Life technologies Biotechnology,USA | 1508012 | |
Arterial indwelling needle | B Braun Melsingen AG,Germany | 21G15G8393 | |
BD Accuri C6 Plus | Becton Dickinson,USA | ||
Bleomycin | Biotang, USA | Ab9465 | |
Carbon dioxide incubator | Thermo Forma, USA | Thermo Forma370 | |
CD11b | R&D Systems,USA | 1124F | |
CD11c | R&D Systems,USA | N418 | |
Cell culture dish | Thermo Forma, USA | 174926 | |
Clodronate liposomes | Clodronate liposomes,Netherlands | CI-150-150 | |
Collagenase A | Sigma-Aldrich, USA | 10103578001 | |
F4/80 | R&D Systems,USA | 521204 | |
Falcon Cell Strainer | Becton,Dickinson and Company, USA | 352340 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Life technologies,USA | 1047571 | |
Hematoxylin Eosin | Nanjing Jiancheng Technology,China | 06-570 | |
LightCycler 480 PCR detection system | Roche, USA | ||
Murine recombinant factor IL-33 | Peprotech, USA | 210-33 | |
Nikon microscope | Nikon Corporation, Japan | 941185 | |
Penicillin, streptomycin | Life technologies,USA | 877113 | |
Phosphate buffer (PBS) | Guangdong Huankai Microbial Technology ,China | 1535882 | |
RBC lysis buffer | Beyotime Biotechnology Company,China | C3702 | |
RNA Isolater | Vazyme company,China | R401-01-AA | Total RNA extraction reagent |
RWD Inhalation Anesthesia Machine | Shenzhen Rayward Life Technology ,China | R500 | |
Semi-automatic paraffin slicer | Leica, Germany | LeicaRM2245 | |
SYBR Premix Ex Taq | Takara, Japan | 410800 | |
Trypsin 0.25% | Life Technologies, USA | 1627172 |