Summary

Adoptiv overføring av IL-33-stimulerte makrofager i bleomycininduserte musemodeller for å studere deres effekt på idiopatisk lungefibrose in vivo

Published: May 05, 2023
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver isolering av pulmonale interstitielle makrofager (IM) og deres adoptivoverføring etter IL-33-stimulering av lungealveolene i en musemodell, noe som kan lette in vivo-studien av idiopatisk lungefibrose (IPF).

Abstract

Den inflammatoriske responsen forårsaket av tidlig lungeskade er en av de viktigste årsakene til utviklingen av idiopatisk lungefibrose (IPF), som ledsages av aktivering av inflammatoriske celler som makrofager og nøytrofiler, samt frigjøring av inflammatoriske faktorer, inkludert TNF-α, IL-1β og IL-6. Tidlig inflammasjon forårsaket av aktiverte pulmonale interstitielle makrofager (IM) som respons på IL-33-stimulering er kjent for å spille en viktig rolle i den patologiske prosessen med IPF. Denne protokollen beskriver adoptivoverføring av IM stimulert av IL-33 til lungene hos mus for å studere IPF-utvikling. Det involverer isolering og kultur av primære IM fra vertsmuslungene, etterfulgt av adoptivoverføring av stimulerte IM til alveolene hos bleomycin (BLM)-induserte IPF-mottakermus (som tidligere har blitt utarmet av alveolære makrofager ved behandling med clodronatliposomer), og den patologiske evalueringen av disse musene. De representative resultatene viser at adoptivoverføring av IL-33-stimulerte makrofager forverrer lungefibrose hos mus, noe som tyder på at etableringen av makrofag-adoptivoverføringseksperimentet er et godt teknisk middel for å studere IPF-patologi.

Introduction

Idiopatisk lungefibrose (IPF) er en diffus lungebetennelsessykdom forårsaket av mange faktorer1. I cytokinmikromiljøet til Th1- og Th2-immunresponsen kan makrofager polariseres til klassisk aktiverte makrofager (M1) og alternativt aktiverte makrofager (M2). Lipopolysakkarider (LPS) eller cytokinet IFN- γ induserer M1-makrofager til å polarisere og produsere proinflammatoriske cytokiner, inkludert iNOS, IL-1, IL-6, TNF-α og IL-12. I motsetning til dette driver type II-cytokinene IL-4 og IL-13 polariseringen av M2-makrofager, som kan produsere forskjellige fibroblastvekstfremmende faktorer, som TGF-β og PDGF, som fremmer lungefibrose2. Den patologiske prosessen med IPF ledsages av makrofagaktivering og infiltrasjon. IPF medierer skadereparasjon, betennelse og fibrose gjennom frigjøring av cytokiner3. Siden bare begrensede terapeutiske alternativer er tilgjengelige, har det å utforske de molekylærpatologiske mekanismene ved IPF stor betydning for å utvikle nye strategier for forebygging og behandling av IPF. Tidligere studier av vår gruppe og andre forskere 4,5 har bekreftet økt frisetting av IL-33 hos IPF-pasienter og i musemodeller med bleomycin (BLM)-indusert IPF. IL-33 frigjøres av epitel- og endotelceller under fibrose og er involvert i makrofagaktivering, noe som resulterer i unormal spredning av fibroblaster, leukocyttinfiltrasjon og eventuelt tap av lungefunksjon5. Den nåværende protokollen beskriver adoptivoverføring av IL-33-stimulerte interstitielle makrofager (IM) inn i alveolene som et middel til å studere IPF-utvikling i musemodeller. Her ble IM isolert fra lungevevet til vertsmus, dyrket in vitro, stimulert med IL-33 i 24 timer, og deretter adoptivt overført til alveolene hos mottakermus ved trakealinjeksjon. Den direkte samlingen av stimulerte musemakrofager og deres adoptivoverføring til mottakeralveolene ble funnet å forverre graden av lungefibrose og kan tydeligere illustrere påvirkningen av stimulerende faktorer på fibrose sammenlignet med tidligere studier6. Teknikken som beskrives i denne artikkelen, kan gjøre det mulig for forskere å undersøke funksjonen til makrofager stimulert av potensielle cytokiner i utviklingen av IPF.

Protocol

Alle forsøkene ble utført i henhold til veiledningen for stell og bruk av forsøksdyr. Alle dyreforsøkene ble godkjent av Experimental Animal Welfare Ethics Committee ved Jiangnan University (JN nr. 20211130m1720615[501]). MERK: Totalt ble 10 mannlige C57BL/6 mus i alderen 6-8 uker gamle og veier 20-25 g brukt i denne studien. De tre eksperimentelle gruppene i studien inkluderte tre mottakermus hver, og en vertsmus ble brukt til IM-isolasjonen. 1…

Representative Results

Protokollen som brukes her er oppsummert i flytskjemaet i figur 1. Inhalasjon av klodronatliposomer gjennom nesen (figur 2) ble brukt til å tømme lungemakrofagene hos voksne C57BL/6-mus, og dette ga en god mottakermusemodell. Pulmonale direktemeldinger ble isolert fra en annen ubehandlet mus (vertsmus) (figur 3A, B) og dyrket in vitro. De isolerte makrofagene ble stimulert med IL-33 i 24 timer og derette…

Discussion

Denne studien gir en effektiv metode for å tømme, isolere, kultur og overføre makrofager, noe som kan bidra til å studere mekanismene for lungefibrose hos mus. Det er mange metoder for uttømming av makrofager fra mus, for eksempel trakealadministrasjon, injeksjon av halevene og nasal innånding11. Denne studien optimaliserte nasal innåndingsmetoden, som er enkel å betjene og effektivt kan tømme lungemakrofager 8,9. Etter IL-33-stim…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkjenner Special Topic of Laboratory Management of Jiangnan University: Construction of Digital Slice Library Based on Pathological Specimens (JDSYS202223) og National Natural Science Foundation of China (81800065).

Materials

 DMEM Life technologies Biotechnology,USA 1508012
Arterial indwelling needle B Braun Melsingen AG,Germany 21G15G8393
BD Accuri C6 Plus Becton Dickinson,USA
Bleomycin Biotang, USA Ab9465
Carbon dioxide incubator Thermo Forma, USA Thermo Forma370
CD11b R&D Systems,USA 1124F
CD11c R&D Systems,USA N418
Cell culture dish Thermo Forma, USA 174926
Clodronate liposomes  Clodronate liposomes,Netherlands CI-150-150
Collagenase A Sigma-Aldrich, USA 10103578001
F4/80 R&D Systems,USA 521204
Falcon Cell Strainer Becton,Dickinson and Company, USA 352340
Fetal bovine serum (FBS) Life technologies,USA 1047571
Hematoxylin Eosin  Nanjing Jiancheng Technology,China 06-570
LightCycler 480 PCR detection system Roche, USA
Murine recombinant factor IL-33 Peprotech, USA 210-33
Nikon microscope Nikon Corporation, Japan 941185
Penicillin, streptomycin Life technologies,USA 877113
Phosphate buffer (PBS) Guangdong Huankai Microbial Technology ,China 1535882
RBC lysis buffer Beyotime Biotechnology Company,China C3702
RNA Isolater Vazyme company,China R401-01-AA Total RNA extraction reagent
RWD Inhalation Anesthesia Machine Shenzhen Rayward Life Technology ,China R500
Semi-automatic paraffin slicer Leica, Germany LeicaRM2245
SYBR Premix Ex Taq Takara, Japan 410800
Trypsin 0.25% Life Technologies, USA 1627172

References

  1. Heukels, P., Moor, C. C., vonder Thüsen, J. H., Wijsenbeek, M. S., Kool, M. Inflammation and immunity in IPF pathogenesis and treatment. Respiratory Medicine. 147, 79-91 (2019).
  2. Zhang, Y., Zhang, Y., Li, X., Zhang, M., Lv, J. Microarray analysis of circular RNA expression patterns in polarized macrophages. International Journal of Molecular Medicine. 39 (2), 373-379 (2017).
  3. Lee, J. W., et al. The role of macrophages in the development of acute and chronic inflammatory lung diseases. Cells. 10 (4), 897 (2021).
  4. Luzina, I. G., et al. Interleukin-33 potentiates bleomycin-induced lung injury. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 49 (6), 999-1008 (2013).
  5. Nie, Y., et al. AKT2 regulates pulmonary inflammation and fibrosis via modulating macrophage activation. Journal of Immunology. 198 (11), 4470-4480 (2017).
  6. Qian, F., et al. The transcription factor PU.1 promotes alternative macrophage polarization and asthmatic airway inflammation. Journal of Molecular Cell Biology. 7 (6), 557-567 (2015).
  7. Shah, S., Dhawan, V., Holm, R., Nagarsenker, M. S., Perrie, Y. Liposomes: Advancements and innovation in the manufacturing process. Advanced Drug Delivery Reviews. 154 (155), 102-122 (2020).
  8. He, W., et al. Alveolar macrophages are critical for broadly-reactive antibody-mediated protection against influenza A virus in mice. Nature Communications. 8 (1), 846 (2017).
  9. Eyal, F. G., Hamm, C. R., Parker, J. C. Reduction in alveolar macrophages attenuates acute ventilator induced lung injury in rats. Intensive Care Medicine. 33 (7), 1212-1218 (2007).
  10. Hübner, R. H., et al. Standardized quantification of pulmonary fibrosis in histological samples. Biotechniques. 44 (4), 507-517 (2008).
  11. Tacke, F., et al. Immature monocytes acquire antigens from other cells in the bone marrow and present them to T cells after maturing in the periphery. The Journal of Experimental Medicine. 203 (3), 583-597 (2006).
  12. Byrne, A. J., Maher, T. M., Lloyd, C. M. Pulmonary macrophages: A new therapeutic pathway in fibrosing lung disease. Trends in Molecular Medicine. 22 (4), 303-316 (2016).
  13. Wendisch, D., et al. SARS-CoV-2 infection triggers profibrotic macrophage responses and lung fibrosis. Cell. 184 (26), 6243-6261 (2021).
  14. Zhang, L., et al. Macrophages: Friend or foe in idiopathic pulmonary fibrosis. Respiratory Research. 19 (1), 170 (2018).
check_url/64742?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhai, X., Li, J., Nie, Y. Adoptive Transfer of IL-33-Stimulated Macrophages into Bleomycin-Induced Mouse Models to Study Their Effect on Idiopathic Pulmonary Fibrosis In Vivo. J. Vis. Exp. (195), e64742, doi:10.3791/64742 (2023).

View Video