Summary

Etablering af en diafyseal lårbensfrakturmodel hos mus

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en kirurgisk procedure til etablering af en diafyseal fraktur i lårbenet hos mus, som stabiliseres med en intramedullær ledning, til brudhelingsundersøgelser.

Abstract

Knogler har en betydelig regenerativ kapacitet. Imidlertid er brudheling en kompleks proces, og afhængigt af sværhedsgraden af læsionerne og patientens alder og generelle sundhedsstatus kan der opstå fejl, hvilket fører til forsinket forening eller ikke-union. På grund af det stigende antal brud som følge af højenergitraumer og aldring er der et presserende behov for udvikling af innovative terapeutiske strategier til forbedring af knoglereparation baseret på kombinationen af skelet-/mesenkymale stamceller/stromale celler og biomimetiske biomaterialer. Til dette formål er brugen af pålidelige dyremodeller grundlæggende for bedre at forstå de vigtigste cellulære og molekylære mekanismer, der bestemmer helingsresultaterne. Af alle modellerne er musen den foretrukne forskningsmodel, fordi den tilbyder en bred vifte af transgene stammer og reagenser til eksperimentel analyse. Imidlertid kan etablering af brud hos mus være teknisk udfordrende på grund af deres lille størrelse. Derfor har denne artikel til formål at demonstrere procedurerne for kirurgisk etablering af en diafyseal lårbensbrud hos mus, som er stabiliseret med en intramedullær ledning og ligner den mest almindelige knoglereparationsproces gennem bruskcallusdannelse.

Introduction

Skelettet er et vitalt og funktionelt alsidigt organ. Skeletets knogler muliggør kropsholdning og bevægelse, beskytter de indre organer, producerer hormoner, der integrerer fysiologiske reaktioner, og er stedet for hæmatopoiesis og mineralopbevaring1. Hvis brækket, knogler har en bemærkelsesværdig evne til at regenerere og fuldt ud genoprette deres præ-skade form og funktion. Helingsprocessen begynder med dannelsen af et hæmatom og et inflammatorisk respons, som inducerer aktivering og kondensering af skeletstamceller / stamceller fra periosteum, endosteum og knoglemarv og deres efterfølgende differentiering til dannelse af den bløde bruskcallus. Brobygningen af de brudte ender sker derefter gennem en proces, der ligner endokondral knogledannelse, hvor det bruskstillads udvider og derefter mineraliserer og danner den hårde osseøse callus. Endelig ombygges den hårde callus gradvist af osteoklaster og osteoblaster for at genoprette den oprindelige knoglestruktur 2,3.

Selvom brudhelingsprocessen er ret robust, involverer den en indviklet opsummering af begivenheder og påvirkes signifikant af flere individuelle faktorer, herunder patientens generelle sundhedsstatus, alder og køn samt skadefaktorer, såsom tilstanden for mekanisk stabilisering af den brækkede knogle, forekomsten af infektion og sværhedsgraden af den omgivende bløddelsskade4, 5,6. Derfor er fejl almindelige, hvilket fører til udvikling af ikke-fagforening, hvilket i høj grad påvirker patientens rehabilitering og livskvalitet 7,8. På grund af det stigende antal brud som følge af højenergitraumer og aldring samt de høje omkostninger ved behandlinger er ikke-fagforeningsfrakturer blevet en byrde for sundhedssystemer over hele verden 9,10. Denne stigende byrde understreger det presserende behov for innovative terapeutiske strategier til forbedring af knoglereparation11,12 baseret på kombinationen af skelet / mesenkymale stamceller / stromale celler og biomimetiske biomaterialer13,14.

I forfølgelsen af dette mål er dyremodeller blevet brugt i vid udstrækning i undersøgelser, der sigter mod at forstå den grundlæggende biologi af brudhelingsmekanismer og i proof-of-concept prækliniske undersøgelser, der sigter mod at udtænke nye terapeutiske strategier til fremme af knoglereparation 15,16,17. Modeller med små dyr, såsom mus, er fremragende til frakturhelingsundersøgelser på grund af den brede tilgængelighed af genetisk modificerede stammer og reagenser til eksperimentelle analyser og deres lave vedligeholdelsesomkostninger. Derudover har mus et hurtigt helingstidsforløb, som giver mulighed for tidsmæssig analyse af alle faser af reparationsprocessen15. Imidlertid kan dyrets lille størrelse udgøre udfordringer for kirurgisk produktion af brud med fikseringstilstande svarende til dem, der anvendes hos mennesker. Denne protokol beskriver en enkel og billig model for brudheling hos mus ved hjælp af en åben lårbensosteotomi stabiliseret med en intramedullær ledning, der ligner den mest almindelige knoglereparationsproces gennem bruskhård dannelse og kan bruges både i grundlæggende og translationelle undersøgelser, hvor adgang til brudstedet er påkrævet.

Protocol

Alle forsøgene blev godkendt af Animal Use and Care Committee ved Center for Health Sciences ved Federal University of Rio de Janeiro (protokol nummer 101/21). Mandlige Balb/c-mus i alderen 10-12 uger (25-30 g legemsvægt) blev anvendt i dette studie. Det kirurgiske indgreb tager ca. 15-20 minutter pr. mus. Før hver procedure skal de nødvendige instrumenter (angivet i materialetabellen) organiseres over et sterilt kirurgisk felt, der dækker operationsbordet (figur 1A). D…

Representative Results

Den mest enkle og umiddelbare måde at evaluere succesen med den kirurgiske procedure i frembringelsen af bruddet er røntgenbilleddannelse. Røntgenbilleder kan udføres umiddelbart efter operationen, hvor musen stadig er under bedøvelse, og derefter 7 dage, 14 dage og 21 dage efter bruddet for at evaluere callusdannelse og progression. Acceptable brudmønstre er dem, hvor cortices er fuldt brudt, ledningerne er korrekt placeret inden for medullær kanal, og brudlinjerne er tværgående (med en vinkel på 90 ° til kno…

Discussion

Da antallet af brud stiger på verdensplan 9,10,25, bliver innovative behandlinger for ikke-fagforeninger stadig mere presserende. Da frakturheling involverer en kompleks og stramt orkestreret opsummering af begivenheder, der opstår over en lang tidsskala3, er brugen af gyldige dyremodeller central for at forbedre vores forståelse af de mekanismer, der bestemmer succesen med knoglereparation og for at v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af Carlos Chagas Filho Foundation for Research Support of the State of Rio de Janeiro (FAPERJ).

Materials

Alcohol 70º Merck 109-56-8 Or any general available supplier
Canada balsam (mounting medium) Merck C1795 Or any general available supplier
Cefazoline ABL Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Coverslip Merck CSL284525 Or any general available supplier
Dental X-Ray Generator Focus Sold by Instrumentarium Dental Inc. 
DEPC water Merck W4502 Or any general available supplier
Dissecting Scissor ABC Instrumentos 0327 Similar brands of the item may be used according to local availability
EDTA Vetec 60REAVET014340 Similar brands of the item may be used according to local availability
Eosin solution Laborclin EA-65 Similar brands of the item may be used according to local availability
Ethanol P.A Vetec 60REAVET012053 Similar brands of the item may be used according to local availability
Gauze pads Cremer Not applicable Or any general available supplier
Harris Hematoxylin Solution Laborclin 620503 Similar brands of the item may be used according to local availability
Heating pad Tonkey Electrical Technology E114273 Similar brands of the item may be used according to local availability
Histological slides Merck CSL294875X25 Or any general available supplier
Histology cassettes Merck H0542-1CS Or any general available supplier
Hydrochloric acid – 37% Merck 258148 Similar brands of the item may be used according to local availability
Insulin syringe BD 324918 Or any general available supplier
Iodopovidone sponge Rioquímica 372106 Or any general available supplier
Ketamine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Lacribel collyrium Cristalia Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Microtome Leica 149AUTO00C1
Mouse Tooth Forceps Tweezer ABC Instrumentos 0164 Similar brands of the item may be used according to local availability
Needle 26 G BD 2239 Or any general available supplier
Needle Holder  Golgran 135-18 Similar brands of the item may be used according to local availability
Nonresorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1546-NT Or any general available supplier
Paraffin Exodo 8002 – 74 – 2 Similar brands of the item may be used according to local availability
Paraformaldehyde Sigma 30525-89-4 Similar brands of the item may be used according to local availability
PBS 1x  Lonza  BE17-516F Similar brands of the item may be used according to local availability
Resorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1596-45B Or any general available supplier
Rod Wire SS CrNi 0.016" Orthometric 56.50.2016
Scalpel nº 11 Descarpak 15782 Or any general available supplier
Serrated Tip Tweezer Quinelato QC.404.12 Similar brands of the item may be used according to local availability
Shaver Phillips Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Surgical tape 3M 2734 Or any general available supplier
Surgical tnt field Polarfix 6153 Or any general available supplier
Tramadol hydrochloride Teuto  Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Water bath for histology Leica HI1210
Xylazine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Xylene Dinamica 60READIN001105 Similar brands of the item may be used according to local availability

References

  1. Florencio-Silva, R., Sasso, G. R., Sasso-Cerri, E., Simoes, M. J., Cerri, P. S. Biology of bone tissue: Structure, function, and factors that influence bone cells. BioMed Research International. 2015, 421746 (2015).
  2. Bahney, C. S., et al. Cellular biology of fracture healing. Journal of Orthopedic Research. 37 (1), 35-50 (2019).
  3. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11 (1), 45-54 (2015).
  4. Perren, S. M. Fracture healing: Fracture healing understood as the result of a fascinating cascade of physical and biological interactions. Part II. Acta Chirurgiae Orthopaedicae et Traumatologiae Cechoslovaca. 82 (1), 13-21 (2015).
  5. Giannoudis, P. V., Krettek, C., Lowenberg, D. W., Tosounidis, T., Borrelli, J. Fracture healing adjuncts-The world’s perspective on what works. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 43-47 (2018).
  6. Kates, S. L., et al. Outside the bone: What is happening systemically to influence fracture healing. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 33-36 (2018).
  7. Ding, Z. C., Lin, Y. K., Gan, Y. K., Tang, T. T. Molecular pathogenesis of fracture nonunion. Journal of Orthopaedic Translation. (14), 45-56 (2018).
  8. Calori, G. M., et al. Non-unions. Clinical Cases in Mineral Bone Metabolism. 14 (2), 186-188 (2017).
  9. Ekegren, C. L., Edwards, E. R., de Steiger, R., Gabbe, B. J. Incidence, costs and predictors of non-union, delayed union and mal-union following long bone fracture. Internation Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (12), 2845 (2018).
  10. Aziziyeh, R., et al. The burden of osteoporosis in four Latin American countries: Brazil, Mexico, Colombia, and Argentina. Journal of Medical Economics. 22 (7), 638-644 (2019).
  11. Kostenuik, P., Mirza, F. M. Fracture healing physiology and the quest for therapies for delayed healing and nonunion. Journal of Orthopaedic Research. 35 (2), 213-223 (2017).
  12. Gomez-Barrena, E., et al. fracture healing: cell therapy in delayed unions and nonunions. Bone. 70, 93-101 (2015).
  13. Schlundt, C., et al. Clinical and research approaches to treat non-union fracture. Current Osteoporosis Reports. 16 (2), 155-168 (2018).
  14. Gomez-Barrena, E., et al. Feasibility and safety of treating non-unions in tibia, femur and humerus with autologous, expanded, bone marrow-derived mesenchymal stromal cells associated with biphasic calcium phosphate biomaterials in a multicentric, non-comparative trial. Biomaterials. 196, 100-108 (2018).
  15. Ryan, G., et al. Systemically impaired fracture healing in small animal research: A review of fracture repair models. Journal of Orthopedic Research. 39 (7), 1359-1367 (2021).
  16. Marmor, M. T., Dailey, H., Marcucio, R., Hunt, A. C. Biomedical research models in the science of fracture healing – Pitfalls & promises. Injury. 51 (10), 2118-2128 (2020).
  17. Schindeler, A., Mills, R. J., Bobyn, J. D., Little, D. G. Preclinical models for orthopedic research and bone tissue engineering. Journal of Orthopedic Research. 36 (3), 832-840 (2018).
  18. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (2), 5563 (2011).
  19. Stollings, L. M., et al. Immune modulation by volatile anesthetics. Anesthesiology. 125 (2), 399-411 (2016).
  20. Sedghi, S., Kutscher, H. L., Davidson, B. A., Knight, P. R. Volatile anesthetics and immunity. Immunological Investigations. 46 (8), 793-804 (2017).
  21. Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).
  22. Komárek, V., Hedrich, H. J. Chapter 2.2. Gross anatomy. The Laboratory Mouse (Second Edition). , 145-159 (2012).
  23. Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation. Journal of Visualized Experiments. (110), e53936 (2016).
  24. An, Y. H., Moreira, P. L., Kang, Q. K., Gruber, H. E., An, Y. H., Martin, K. L. Principles of embedding and common protocols. Handbook of Histology Methods for Bone and Cartilage. , 185-197 (2003).
  25. Enninghorst, N., McDougall, D., Evans, J. A., Sisak, K., Balogh, Z. J. Population-based epidemiology of femur shaft fractures. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 74 (6), 1516-1520 (2013).
  26. Gunderson, Z. J., Campbell, Z. R., McKinley, T. O., Natoli, R. M., Kacena, M. A. A comprehensive review of mouse diaphyseal femur fracture models. Injury. 51 (7), 1439-1447 (2020).
  27. Haffner-Luntzer, M., Fischer, V., Ignatius, A. Differences in fracture healing between female and male C57BL/6J mice. Frontiers in Physiology. 12, 712494 (2021).
  28. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  29. Streubel, P. N., Desai, P., Suk, M. Comparison of RIA and conventional reamed nailing for treatment of femur shaft fractures. Injury. 41, 51-56 (2010).

Play Video

Cite This Article
Braga Frade, B., Dias da Cunha Muller, L., Bonfim, D. C. Establishing a Diaphyseal Femur Fracture Model in Mice. J. Vis. Exp. (190), e64766, doi:10.3791/64766 (2022).

View Video