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Chemistry

ICP-MSによる多元素測定のための均質化およびマイクロ波支援湿式酸分解を用いた食品サンプルの調製(英語)

Published: December 22, 2023 doi: 10.3791/65624
Automatic Translation
1, 1, 1
1Faculty of Chemistry and Chemical Engineering, University of Maribor

Summary

提示されたプロトコルは、実験室ミキサーによるサンプルの均質化、マイクロ波支援湿式酸消化による68 wt% HNO3および30 wt% H2O 2の混合物を使用した食品サンプルの酸消化、および誘導結合プラズマ質量分析で実行される多元素測定について説明しています。 

Abstract

サンプル前処理は元素測定に不可欠であり、さまざまな手法が利用可能であり、そのうちの1つに均質化とそれに続く酸分解が含まれます。調製段階でのサンプルの取り扱いでは、潜在的な汚染や分析種の損失を排除または最小限に抑えるために、特別な注意が必要です。均質化は、粒子径の縮小とサンプル成分の均一化を同時に行うプロセスです。均質化後、サンプルは酸分解を受け、高温で酸と補助化学物質で消化され、固体サンプルが液体状態に変化します。このプロセスでは、元のサンプル中の金属が酸と反応して水溶性塩を形成します。酸分解によって調製されたサンプルは、誘導結合プラズマ質量分析法、誘導結合プラズマ発光分析法、原子吸光分析法、電気化学的方法、およびその他の分析技術などの技術を使用した元素分析に適しています。この研究では、誘導結合プラズマ質量分析を用いた多元素測定用の食品サンプルの調製について詳しく説明します。段階的な手順では、セラミックブレードを備えたラボサイズのミキサーを使用した均質化プロセスと、マイクロ波支援湿式酸分解を使用した密閉容器での酸分解が含まれます。5.0mLの68重量%HNO3および1.0mLの30重量%H2O2の混合物が補助試薬として機能する。このガイドでは、両方の段階に関連するプロセスについて説明します。

Introduction

元素分析は、さまざまなサンプルの元素組成を決定するための分析プロセスです。高濃度の金属(特に重金属1)は望ましくない健康問題を引き起こす可能性があるため、人体への金属の摂取を制御するために使用できます。重金属も主要な環境汚染物質の1つであるため、環境中の重金属の存在を制御する必要があります2。さらに、元素分析は、食品の地理的原産地を決定し3、食品 や水資源の品質を管理するためにも使用できます4。さらに、土壌中の微量栄養素と多量栄養素の測定5や、 鉱物や堆積物の化学組成を調べることで、歴史を通しての地質学的プロセスへの洞察を得るために使用されます6。また、さらなる金属再生のための電気および電子廃棄物中のレアメタルの存在を決定し7、薬物治療の成功を評価し8、金属インプラントの元素組成を検証するための研究も行われています9。

誘導結合プラズマ質量分析(ICP-MS)および誘導結合プラズマ発光分光分析(ICP-OES)は、さまざまなサンプルの元素分析に一般的に使用される技術です10。検出限界(LOD)と定量限界(LOQ)がng/Lと低い複数の元素を同時に測定できます。一般に、ICP-MS は ICP-OES12 と比較して LOD 値11 が低く、線形濃度範囲が広くなっています。元素組成を決定する他の技術には、マイクロ波誘起プラズマ発光分析法13と、フレーム原子吸光分析法、電熱原子吸光分析法2、冷蒸気原子吸光法、水素化物生成原子吸光分析法14など、原子吸光分析法(AAS)のいくつかの変種がある.さらに、LODとLOQが低い元素測定は、さまざまな電気分析法、特に陽極ストリッピングボルタンメトリー15,16で可能です。もちろん、サンプルの元素組成を決定する方法は他にもありますが、上記の方法ほど頻繁には採用されていません。

固体試料の元素の直接測定は、レーザー誘起ブレークダウン分光法と蛍光X線を用いて実現可能である17。ただし、ICP-MS、ICP-OES、およびAASによる元素測定では、固体サンプルを液体状態に変換する必要があります。この目的のために、酸分解は酸および補助試薬(ほとんどの場合H2O2)を用いて行われる。酸分解は高温高圧で行われ、サンプルの有機部分を気体生成物に変換し、金属元素を水溶性塩に変換し、したがってそれらを溶液18に溶解する。

酸分解には大きく分けて、開放型消化と閉鎖型消化の2種類があります。開放型容器分解は費用対効果が高い14 が、最高分解温度が大気圧での酸の沸騰温度と一致するなどの制限がある。試料は、ホットプレート、加熱ブロック、水浴、砂浴2、およびマイクロ波19で加熱することができる。このように試料を加熱することにより、発生した熱の多くが周囲20に失われ、消化時間14が延びる。開放容器消化の他の欠点には、化学薬品の消費量が多いこと、周囲の環境からの汚染の可能性が高くなること、および揮発性成分の形成および反応混合物からのそれらの蒸発による分析物の損失の可能性が含まれる21。

密閉容器システムは、開放容器システムと比較して、有機および無機サンプルの分解に便利です。密閉容器システムは、伝導加熱やマイクロ波22など、サンプルを加熱するために様々なエネルギー源を利用する。マイクロ波を使用する分解方法には、マイクロ波誘起燃焼23、単反応チャンバーシステム24、および一般的に使用されるマイクロ波アシスト湿式酸分解(MAWD)25,26が含まれます。MAWDは、機器の作業条件に応じて、220°C〜260°Cの範囲のより高い動作温度と最大200barの最大圧力での分解を可能にします27。

MAWDの効率と速度は、サンプルの化学組成、最高温度、温度勾配、反応容器内の圧力、添加される酸の量、使用される酸の濃度など、いくつかの要因に依存します28。MAWDでは、開放容器系での長時間の消化と比較して反応条件が高いため、数分で完全な酸分解を達成できます。MAWDでは、より低い量と濃度の酸が必要であり、これは現在のグリーンケミストリーガイドライン29に沿っています。MAWDでは、酸分解を行うために必要なサンプル量は、通常500mgまでのサンプルで十分です30,31,32。大量のサンプルを消化できますが、より多くの化学物質が必要になります。

MAWD用装置は反応条件を自動的に制御し、加熱中に人が化学物質に直接接触しないため、MAWDはオープンベッセル消化よりも安全に操作できます。ただし、反応容器に化学物質を添加するときは、反応容器が体に接触して害を及ぼすのを防ぐために、常に注意して進める必要があります。また、反応容器は、酸分解中に内部に圧力がかかるため、ゆっくりと開く必要があります。

酸分解は元素測定用のサンプルを調製するための有用な技術ですが、それを実行する人は、その可能な限界に注意する必要があります。酸分解は、すべてのサンプル、特に複雑なマトリックスを含むサンプルや、反応性の高いサンプルや爆発的に反応する可能性のあるサンプルに適しているとは限りません。したがって、サンプル組成を常に評価して、溶液中のすべての必要な元素を溶解する完全分解のための適切な化学物質と反応条件を選択する必要があります。ユーザーが考慮し、対処しなければならないその他の懸念事項は、サンプル調製のすべてのステップでの不純物と分析種の損失です。酸消化は、常に特定の規則に従って、またはプロトコルを使用して実行する必要があります。

以下に説明するプロトコルは、ラボサイズのミキサーでの食品サンプルの均質化、ミキサーのコンポーネントの洗浄、サンプルの適切な計量、化学物質の添加、MAWDによる酸分解の実行、分解完了後の反応容器の洗浄、元素測定のためのサンプルの調製、およびICP-MSによる定量的多元素測定の実行の手順を提供します。以下の指示に従うことで、元素測定に適したサンプルを調製し、消化されたサンプルの測定を実行できるはずです。

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Protocol

1. サンプルの均質化

  1. 清潔なセラミックナイフを使用して、食品サンプル(ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺)を手作業で細かく切り、乾燥プロセスをスピードアップします。酸分解を最低 6 回繰り返すのに十分なサンプルを調製します(乾燥サンプルの最小質量が 1500 mg であることを確認してください)。
    注意: サンプルの表面積を増やすと、サンプルの大部分が加熱された周囲の空気にさらされ、水の蒸発速度が増加します。
  2. サンプルを250 mLのガラスビーカーに入れ、乾燥機を使用して105°Cで一定の重量になるまで乾燥させます。
  3. サンプルの入ったガラスビーカーを乾燥機から取り出し、デシケーターに挿入します。
  4. サンプルを室温まで冷まします。
    注:重量が質量を正確に反映するように、サンプルは一定の温度で計量する必要があります。温度変化は、測定するサンプルの体積と密度に影響を与える可能性があります。
  5. デシケーターを開き、ガラスビーカーをサンプルと一緒に分析天びんに移します。サンプルでガラスビーカーの重量を測定します。
  6. 計量が完了したら、サンプルを乾燥機に戻します。
    注:乾燥中にサンプルが大幅に縮んだ場合は、プラスチック製のヘラを使用して小さなガラスビーカーに移し、より便利な計量を行うことができます。
  7. サンプルの重量が一定になるまで、ステップ1.3〜1.6で説明したプロセスを繰り返します。
  8. 乾燥した不均一サンプルをミキサービーカーに入れ( 材料表を参照)、ミキサービーカーの最大容量を超えないようにします。
  9. ミキサービーカーをミキサーに挿入し、ガードドアを閉じます(図1)。
  10. スタートボタンを押して、サンプルを粉砕および混合するためのブレードをアクティブにします。
  11. サンプルが微粉末または均質なペーストに変わるまで粉砕を行います。このような製品を実現するには、粉砕プロセスを数回繰り返します。
  12. サンプルが均質化されたら、ミキサーのスイッチを切り、ガードドアを開き、ミキサービーカーを取り外します。
  13. 均質化したサンプルをミキサービーカーから取り出し、清潔なプラスチックベラを使用して清潔な50 mLガラスビーカーに移します(図2)。
    注意: サンプルが硬すぎて、ブレードやミキサービーカーなどのミキサーのコンポーネントに損傷を与える可能性がある場合は、モルタルで粉砕するなど、他の方法で均質化できます。ミキサーは通常、硬い材料、凍結したサンプル、または可燃しやすいサンプルの均質化には適しておらず、ミキサーのコンポーネントを損傷する可能性があります。ミキサーでの有機溶剤の使用はお勧めしません。
    注意: ミキサーのブレードが高速で回転するため、安全装置を使用し、ミキサーのドアが適切に閉じていることを確認してください。

2.ミキサーの洗浄

  1. 空のミキサービーカーのマークに超純水( 材料表を参照)を追加します。
  2. ミキサービーカーをミキサーに挿入し、標準の混合手順を実行します。
  3. ミキサーからビーカーを取り出し、廃水を注ぎます。必要に応じて、超純水で数回繰り返し、混合後も水がきれいになるまで繰り返します。
  4. 汚染されたブレードとダイヤフラムシールをミキサーから取り外し、超純水で完全に洗浄します。
    注:中性洗剤を使用して、特に脂肪含有量の高いサンプルを扱う場合は、脂肪がラボの在庫の表面に付着しやすいため、洗浄効率を向上させてください。
    注意: ブレードを取り外して清掃するときは、鋭利なエッジによる怪我のリスクを減らすために、手袋などの適切な保護具を着用してください。
  5. 洗浄した成分を乾燥機で105°Cで乾燥させ、ミキサーに再挿入します。
    注意: 次のサンプルへの水のキャリーオーバーを防ぐために、ミキサーに再度取り付ける前に、ミキサーのコンポーネントが完全に乾いていることを確認してください。

3. サンプル計量

  1. 100mLのトリフルオロメトキシル-ポリテトラフルオロエチレンTFM-PTFE反応容器33から蓋蓋を取り外す。
  2. 開いた反応容器を分析天びんの上に置き、各測定の前に天びんが平らになり、ゼロになっていることを確認します(図3)。
    注意: 計量は室温で行う必要があります。激しい温度変動や空気の流れが測定重量に影響を与える可能性のある場所は避けてください。計量エリアが清潔で、汚染物質がないことを確認してください。
  3. 均質化したサンプルをプラスチックスパチュラを使用して反応容器に移し、250mgのサンプルを秤量します。分析天びんの最小重量制限を下回る重量でサンプルを計量しないでください。
  4. 計量が完了したら、サンプルを汚染から保護するために、反応容器に蓋を置きます。
    注意: 消化手順の重量制限を超えると、消化が不完全になる可能性があります。サンプルおよび反応容器は、外部からの汚染を避けるために注意して取り扱ってください。

4.酸の付加

  1. 約40.0mLの68重量%HNO3および5.0mLの30重量%H2O2を別々の50mLガラスビーカーにそれぞれ注ぐ。
    注:化学物質は、微量金属不純物が1.0 μg/L(ppb)未満、理想的にはng/L(ppt)の範囲の高純度でなければなりません。微量金属不純物は、元素測定の精度と再現性に影響を与えます。
  2. 反応容器をドラフトに入れ、蓋の蓋を開け、以下の仕様に従って、以下の容量の68 wt%HNO3 および30 wt%H2O2 を1 mLまたは5 mLの自動ピペットで加えます。
    1. ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類。250mgの試料に対して、5.0mLの68wt%HNO3および1.0mLの30wt%H2O2を添加する。各サンプルについて3回の繰り返しを調製します。
    2. 分析法の正確性(回収率、Rec)を決定するには、ステップ 4.2.1 で説明した手順に従い、200 μL の自動ピペットを使用して、37.5 μL の 100 mg/L ICP 多元素標準溶液( 材料表を参照)を反応容器に加えます。各サンプルについて、3 回の繰り返しを準備します。
      注:容量 37.5 μL は、サンプルのスパイクなし溶液中の濃度と比較して、サンプルのスパイク溶液の濃度が 15.0 μg/L 増加したことに対応するため、37.5 μL を選択しました。さらに、サンプルのスパイク溶液の濃度の増加は、測定したすべての分析種について線形濃度範囲内にある最終濃度に対応します。
    3. ステップ4.2.1で食品サンプルの分解に使用したのと同じ容量の68重量%HNO3および30重量%H2O2を使用してサンプルブランクを調製する。サンプルブランクの場合は、反応容器にサンプルを添加しないでください。
      注意:分解に使用されるHNO3 は腐食性があり、煙を発生します。このため、酸の添加はドラフト内で行う必要があります。標準的な実験室用保護具(手袋、安全ゴーグル、実験用コート)を使用する必要があります。酸との接触がある場合は、患部を直ちに冷水の流れで洗い流し、医師の診察を受ける必要があります。
  3. 蓋蓋を反応容器に置き、添加した68重量%HNO3 および30重量%H2O2 とサンプルを2〜3分間反応させる。
  4. 容器にネジカバーをねじ込み、カバーの蓋を締めます。
  5. 手を軽く動かして反応容器を振とうし、サンプルを化学物質に完全に取り込みます。
    注:試料は完全に消化されない可能性があるため、反応容器の壁や蓋に放置しないでください。

5. マイクロ波支援湿潤酸分解

  1. スタートボタンを押して、酸分解用のマイクロ波システム(材料表を参照)をオンにします(図4)。
  2. 電子レンジのドアを開き、ラックを取り外します。
  3. 密閉した反応容器をラック内に対称的に分配し、マイクロ波によるサンプルの照射を均一にします。
  4. ラックを電子レンジチャンバーに挿入し、ホルダーに取り付けます(図5)。
  5. 電子レンジのドアを閉めます。
  6. ペンの形をしたツールを使用して、電子レンジのタッチスクリーンに適切な分解プログラムを設定します。適切な温度勾配、最終温度、および分解するサンプル数を選択します。さまざまな食品サンプルに推奨される消化プログラムを以下に示します。
    1. ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類:160°Cまで10分間上昇、200°Cまで10分間上昇、200°Cで15分間、最大出力900W。
  7. 消化プログラムを開始し、画面上で反応条件の変化を監視します。所定のプログラムに従って温度が上昇しない場合は、分解プロセスを停止します。
    注意: 消化中に、電子レンジの画面に突然の温度スパイクが表示される場合があります。これらは、サンプルが化学物質と発熱的に反応するときに発生します。マイクロ波システムは、出力電力を調整することにより、温度を自動的に調整します。
  8. マイクロ波による分解が完了し、サンプルの温度が下がるまで待ちます。
  9. 電子レンジのドアを開き、ラックを電子レンジのチャンバーから取り外します。ドアを閉め、機器の電源を切ります。
  10. 反応容器をラックから取り出し、室温まで冷えるのを待ちます。
  11. 蓋カバーを手動でゆっくりと開けて、酸分解中に発生したガスを放出します。反応容器をドラフトの方向に回します(図6)。
  12. カバーを完全に取り外し、カバーと反応容器の壁を少量の超純水ですすいでください。
  13. カバーと反応容器を超純水で繰り返しすすぎ、ガラス漏斗を通して反応容器の内容物を清潔な25 mLガラスメスフラスコに定量的に移します。
  14. サンプルを超純水でメスフラスコのマークまで希釈します。メスフラスコをストッパーで閉じ、メスフラスコの内容物を混合します。
    注:分解されたサンプルは、残留酸34が5%(V / V)未満、溶解元素が2 g / L未満(総溶解固形分35とも呼ばれる)を含む必要があるため、超純水でさらに希釈する必要があります。
  15. 20 mLのプラスチックシリンジを用意し、ポリアミドシリンジフィルター(直径25 mm、孔径0.20 μm)と接続します。希釈したサンプルをプラスチックシリンジに充填し、圧力をかけてその内容物を50 mLのプラスチック遠心チューブにろ過します。クロスコンタミネーションを避けるために、すべてのサンプルに新しいプラスチックシリンジとシリンジフィルターを使用してください。
    注:MAWD後に未消化のままになる可能性のある不溶性物質または固体粒子を除去するには、サンプルをろ過する必要があります。これらの粒子は、装置のコンポーネントを詰まらせることにより、元素測定測定を妨げる可能性があります。サンプルをろ過するときは、最初の数滴を必ず廃棄してください。水溶液には親水性フィルター(ポリアミド製)をご使用ください。疎水性フィルター(PTFE)は、より高い印加圧力を必要とし、膜破裂を引き起こす可能性があるため、水溶液のろ過には適していない36。
  16. 50 mLのプラスチック製遠心チューブをスクリューキャップで閉じ、測定が終わるまでサンプルを冷蔵庫に入れます。
    注:消化されたサンプルは、保存と保存期間を延ばすために、低温で冷蔵庫に保管されます。

6. 反応容器洗浄

  1. 消化したサンプルを50 mLのメスフラスコに移した後、5.0 mLの68 wt%HNO3 と5.0 mLの超純水を5 mLの自動ピペットで反応容器に加えます。
  2. 反応容器を蓋で閉じ、ラックに挿入します。ラックを電子レンジのチャンバーに移します。
  3. 次のマイクロ波プログラムを適用します:160°Cまで15分増加、180°Cまで10分間増加、最大電力900W。
  4. 加熱中の反応条件をモニターします。加熱が終わったら、反応容器を冷まします。
  5. 電子レンジを開き、反応容器をラックから取り出し、ドラフト内でゆっくりと開きます。
  6. 反応容器の内容物はプラスチック廃棄物容器に廃棄します。
  7. 反応容器を超純水ですすぎ、余分な物質や薬品を取り除きます。
  8. 次回の使用前に、反応容器を乾燥機で105°Cで乾燥させてください。
    注:サンプルの酸分解に使用されるのと同じマイクロ波手順(時間、電力、温度勾配、および化学物質の量)を反応容器の洗浄に使用できます。あるいは、反応容器を濃縮HNO3 またはHClに数時間浸し、超純水ですすぐことにより、マイクロ波システムなしで洗浄することができます。

7. ICP-MSによる多元素測定

  1. 消化したサンプルが入った50 mLのプラスチック遠心チューブを冷蔵庫から取り出し、室温まで温めます。
  2. サンプルを 10 倍に希釈して、消化サンプル中の酸の濃度を下げ、サンプルマトリックスの成分の濃度を下げます。自動ピペットを使用して、2.50 mLのサンプルを25 mLのガラス製メスフラスコに移し、超純水でマークまで満たします。
  3. 希釈したサンプルを 15 mL のプラスチックチューブに移し、オートサンプラーの適切な位置に配置します。
  4. 測定用にICP-MS装置( 材料表を参照)を準備します。
    1. 換気装置と、ICP-MS に冷却水を供給し、そのコンポーネントを冷却するチラーのスイッチを入れます。
    2. 互換性のあるソフトウェアを使用して、リンス溶液(1 wt% HNO3)が脈動することなくオートサンプラーからICP-MSに連続的に流れるようにします。
    3. Ar(純度99.999%)とHe(純度99.999%)のガスボンベを開けて、ICP-MSに両方のガスを供給します。ソフトウェアでガス流量を確認し、必要に応じて調整します。
      注:多原子イオンの形成(例えば、 40Ar16O+ が 56Fe+に干渉する)37の形成によりスペクトル干渉が予想される場合は、Heガスとの衝突セルを使用してください。
    4. プラズマを起動し、チューニングソリューションを使用して機器を校正します( 材料表を参照)。
    5. 装置の校正(トーチ位置、ゲイン電圧、レンズ電圧、質量/分解能、パルス/アナログ(P/A)校正、データベース(DB)校正、および検証)が完了したら、目的の測定方法を選択し、測定を実行します。
  5. 未知のサンプルを扱う場合は、半定量的な測定を実行して、サンプル中に存在する元素とそのおおよその濃度に関する情報を取得します。
    注:検出器には一度に検出できる元素の濃度に制限があるため、半定量測定のためにサンプルをさらに希釈することをお勧めします。サンプル濃度を低くすると、装置コンポーネントの寿命を延ばすことができます。
  6. サンプル中の元素のおおよその濃度に関するデータを取得した後、ソフトウェアで定量元素測定法を作成します。ICP-MSの操作条件(表1)を選択し、目的の元素(この場合はCu、Fe、Mn、Zn)を選択します。検量線(分析曲線または作業曲線と呼ばれることもあります)の作成に必要な標準試料の溶液の数と濃度を決定します(表 1)。
    注:検量線の検量線の検量点として、少なくとも 6 つの異なる濃度を準備します。
  7. 検量線用の標準液を調製します。自動ピペットを使用して、必要な容量の 100 mg/L の多元素標準溶液を 25 mL のガラス製メスフラスコにピペットで移し、1.0 μg/L、2.5 μg/L、5.0 μg/L、10.0 μg/L、20.0 μg/L、30.0 μg/L、40.0 μg/L、50.0 μg/L の濃度の標準液を調製します。 フラスコに 1 wt% HNO3 をマークまで充填します。さらに、1 wt% HNO3 溶液を使用してキャリブレーションブランクを調製します。
  8. 調製した標準液とサンプル溶液を 15 mL のプラスチックチューブに移し、オートサンプラーに入れ、ステップ 7.4 で説明した手順に従って装置を始動します。
  9. 検量線法を使用して、選択した元素の定量測定を実行します。
  10. 測定が完了したら、プラズマをオフにし、ArおよびHeガスの供給を閉じ、ICP-MSチラーのスイッチを切り、換気システムをオフにします。

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Representative Results

均一化
すべてのサンプルを実験室の乾燥機で一定の質量に乾燥させ、水分を除去しました。サンプルをデシケーターに移すことで、周囲の環境からの水分を結合することなく、サンプルを室温まで冷却することができました。次に、食品サンプルをラボラトリーミキサーを使用して均質化し、微粉末を得ました。得られた均質化された粒子は、サイズが均一で均一に分布していたため、酸分解に使用されたサブサンプル(より大きなサンプルから採取されたサンプル)が代表的なものであることが保証されました。サンプルは、プラスチック製のヘラを使用してミキサービーカーから簡単に取り外すことができましたが、乾燥肉のサンプルは脂肪含有量が高いため、取り除くのがより困難でした。脂肪含有量が高いと、サンプルがミキサービーカーのガラス壁に部分的に付着しました。新鮮なサンプル、乾燥したサンプル、ホモジナイズしたサンプルの比較を 図 2 に示します。

装置の部品は、ミキサーに残った食品粒子をすべて除去するために、超純水で複数回洗浄する必要がありました。

サンプルの計量質量が反応容器で許容される最大値を超えないようにすることが不可欠です。計量は一定温度の分析天びんを使用して行い、金属ヘラから発生する可能性のある金属による汚染を避けるためにプラスチックヘラを使用しました。

酸消化
プロトコルで使用されたすべてのサンプルは、さまざまな量の炭水化物、タンパク質、および脂肪を含む食品サンプルでした。HNO3は、 H2O 2と組み合わせて、 これらの分子の消化に適しており、他の化学物質は必要ありません。化学物質は、HNO3 が煙を形成するため、ドラフトで処理しました。化学物質をTFM-PTFE反応容器に添加した後、反応容器の上部に蓋を取り付け、汚染や分析対象物の損失を防ぐためにしっかりと密閉しました。反応容器は、マイクロ波システム内で均一にマイクロ波照射が行われるように、ラック内に対称的に配置されました。

酸消化中、マイクロ波システムのドアは閉じられ、プロトコルが終了するまでドアを開けることができませんでした。酸分解の全プロセスは、デバイスの画面上で監視でき、時間の経過に伴う温度変化を示すことができます(図7)。

酸分解が完了し、消化したサンプルの溶液が室温まで冷却された後、反応容器をドラフト内で開きました。それらはできるだけゆっくりと開かれました。圧力の解放が速すぎると、反応混合物の小さな液滴でも逃げ出し、分析種が失われる可能性があります。反応容器を開けると、黄色または黄橙色のガスが放出されました(図8)。煙の着色は、高温でオレンジ色の煙を形成するNO2に起因する可能性があります。反応容器内の圧力上昇は、HNO3による食品サンプルの酸化によるものであり、その結果、CO2、H2O、NOなどのガスが形成された。反応容器を脱気した後、反応容器内には淡黄色または無色の溶液が残存しており、MAWDによる全酸消化が達成されたことが示された。このことは、溶液中に目に見える粒子が残っていないことによってさらに確認されました。

サンプル調製の最終ステップでは、分解したサンプルを超純水で希釈して、残留酸性度(RA)を下げました。RA値が高いと、バックグラウンド信号が増加し、測定が妨げられます。希釈はまた、液体試料26中の金属イオンの濃度を低下させる。消化したサンプルの溶液をメスフラスコに移すときは、反応容器の成分を超純水で十分にすすぎ、分析対象物を完全に移しました。発生する問題の1つは、目的の分析種を含む可能性のある超純水の小さな滴が反応容器の壁に付着することです。超純水で25mLまで希釈すると、すべてのサンプルが無色になりました。消化されたサンプルの最終溶液には水溶性塩が含まれており、サンプル中に存在する金属元素がHNO3 と反応して溶解性の高い硝酸塩を形成します。元素分析技術により、水溶性塩を形成する金属イオンを決定できます。希釈した溶液をろ過するときは、粒子や汚染物質を確実に除去するために、最初の数滴を廃棄することが重要です。濾過後、溶液は漏れを防ぐためにしっかりと密封され、冷蔵庫に保管されました。

酸分解手順の主な制限は、サンプルスループットです。MAWD システムは、一度に限られた数のサンプルしか分解できません。さらに、各分解とその後のサンプル前処理ステップは、完了するまでに数時間かかる場合があります。さらに、反応容器の洗浄にも時間がかかりますが、サンプル間のクロスコンタミネーションのリスクを最小限に抑えることが重要です。

ICP-MSによる多元素測定
各元素について、検量線を作成しました。これらは、分析種濃度の関数として強度をプロットすることによって得られました(図 9)。すべての測定元素の線形濃度範囲は、1.0 μg/L から 50.0 μg/L の範囲でした。

各要素のLODとLOQは、それぞれ式1と式2を使用して計算しました。どちらの式でも、sブランクはキャリブレーションブランク(10回繰り返し)38,39のいくつかの測定値の標準偏差を表し、b1は検量線の傾きを表します。

Equation 1(1)

Equation 2(2)

得られたLODは、Mn、Cu、Fe、Znでそれぞれ0.5 ng/L、2.8 ng/L、2.8 ng/L、3.2 ng/Lであった。得られたLOQは、Mn、Cu、Fe、Znでそれぞれ1.6 ng/L、9.2 ng/L、9.5 ng/L、10.8 ng/Lであった。

各サンプルの分解を 6 回繰り返し行いました。各サンプルの 3 回繰り返し消化を標準溶液でサンプルをスパイクせずに行い、既知量の分析種標準試料の溶液を添加して 3 回の繰り返し消化を行い、分析法全体の正確性(スパイク回収率試験40)および精度をテストしました。分解手順の前に精度を測定するために、37.5 μL の 100 mg/L ICP 多元素標準溶液をサンプルを含む反応容器にピペットで移したところ、10 倍に希釈したスパイクサンプルの濃度が 15.0 μg/L 増加しました。これは、測定された金属イオンごとにサンプル1グラムあたり15.0μgの増加にも相当しました。精度と精度は、それぞれRecと相対標準偏差(RSD)を使用して決定しました。

分析法の精度は、スパイク回収試験によって評価できます。この目的のために、既知の量の分析物標準の溶液を試料に添加し、次いで、スパイクされていない試料と同じ反応条件下で消化する41。Rec は式 3 を使用して計算され、γi は分解後のスパイクしたサンプルの測定濃度、 γt は分析種標準試料の添加溶液の増加を考慮して測定されたスパイクしていないサンプルの濃度を表します。γi と γt は、3 つの反復の平均です。分析方法は、Recが80.00%〜120.00%の範囲にある場合に正確であると見なされます42。

Equation 3(3)

分析法の精度は RSD で評価されます。これは、いくつかの反復測定によって得られた独立した結果間の一致の近さを表します。RSD は式 4 を使用して計算され、 sm は濃度測定の反復測定値の標準偏差を表し、 Equation 4 は測定された濃度の平均値を表します。RSD 値が 20.00%43 より低い場合、分析方法は正確であると見なされます。

Equation 5(4)

すべてのサンプルは、ICP-MS測定の前に超純水で10倍に希釈されました(最初の測定セットの場合)。希釈により、分析装置に導入されたマトリックス成分の濃度が低下しました。また、試料を希釈することにより、RAが低下します。RAが高いと、プラズマイオン化効率が低下したり、マトリックス干渉の問題が発生したりする可能性があります。最初の測定セット後の分析種の濃度が LOQ よりも低い場合、希釈係数は 10 未満にする必要があります。なお、金属イオンの定量は検量線を用いて行った。計算結果の値は、校正に使用した標準物質の解と同じ精度(有効数字の数)でなければなりません。サンプル中の金属イオンの含有量は、重量グラムあたりのμg(μg/g)で表しました。これは、分析したサンプルの測定質量濃度に希釈係数を掛けて、元の消化サンプルの濃度を取得することによって達成されました。次に、この質量濃度に消化サンプルの容量(25 mL)を掛け、次に均質化したサンプルの初期秤量質量で除算しました(初期加重質量は、MAWD の反応容器に加重されたサンプルの質量です)。すべての値は、3回の反復の平均として報告されます。

以下の元素の報告内容は、±smでEquation 4表されます。ブロッコリーサンプル中のCu、Mn、Znの含有量は、それぞれ5.9±0.5μg/g、32.5±2.7μg/g、42.8±0.2μg/gでした。ブロッコリーサンプル中の Fe の測定質量濃度は、検量線の線形濃度範囲の上限(50.0 μg/L)を超えていました。そこで、試料の溶液を超純水で2倍に希釈し、この溶液のICP-MS測定を行った。その結果、ブロッコリーには63.0±1.9μg/gのFeが含まれていることが分かりました。

キノコの含有量は、Zn、Fe、Cu、Mnの含有量は、それぞれ35.6 ± 1.4 μg/g、30.4 ± 1.3 μg/g、18.5 ± 1.0 μg/g、5.4 ± 0.3 μg/gであった。ソーセージには、42.2 ± 0.9 μg/g の Fe、25.1 ± 2.6 μg/g の Zn、1.0 ± 0.1 μg/g の Cu が含まれていました。10倍に希釈した消化液をICP-MSで多元素測定したところ、Mnの濃度が直線濃度範囲の下限(1.0μg/L)よりも低いことが分かりました。したがって、ソーセージサンプルの元の溶液を5倍に希釈し、ICP-MSによる多元素測定を繰り返しました。ソーセージサンプル中のMnの含有量は、0.9±0.3μg/gと決定されました。麺類にはZnが5.4±2.8μg/g、Feが10.3±1.2μg/g、Cuが1.6±0.3μg/g、Mnが7.5±0.2μg/gが含まれていた。

4 つのサンプルすべてで測定されたすべての分析種の Rec は 80.00% から 120.00% の範囲であり、分析法の精度を示しました。計算の結果、麺類中のZnのRSDを除けば、RSD値は20.00%以下であり、分析法は正確であることが示された。その結果を 表2に報告する。

Figure 1
図1:食品サンプルの均質化に使用されるラボラトリーミキサー。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 2
図2:生サンプル、乾燥サンプル、ホモジナイズサンプルの比較。 (A-D)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類の新鮮なサンプル。(E-H)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類の乾燥サンプル。(I-L)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、および麺の均質化サンプル。この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 3
図3:分析天びんでのサンプルの計量。 これは、上部フラップを開いて上から行います。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 4
図4:マイクロ波システム。 反応条件を選択し、酸分解のプロセスを監視するためのサイドタッチスクリーンを備えた酸分解用マイクロ波システム。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 5
図5:マイクロ波アシスト酸分解に使用される成分。 (A)電子レンジチャンバー内の酸分解用の反応容器を14個備えたラック。(B)TFM-PTFE反応容器は3つの部分で構成されています。容器を蓋で閉めると、サンプルもガスも反応容器から逃げたり入ったりすることはできません。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 6
図6:ドラフト内で開封したときの反応容器の内部。 (A)ヒュームの黄橙色は、酸分解中に生成されるNO2 によるものです。(B)ほとんどのガスが反応容器から脱出した後の消化サンプルの溶液の黄色の着色。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 7
図7:温度の経時変化 MAWDによる酸消化中の温度変化を時間の関数として示すプロット。T2は、反応容器内の反応混合物の温度を表します。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 8
図8:黄橙色のガスが放出されるドラフトの下の反応容器を開ける。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 9
図9:Mnの検量線の例。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

Figure 10
図10:多元素測定に使用したICP-MS装置。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

表1:ICP-MS装置の動作条件。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

表2:ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、ヌードルのRec値とRSD値。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

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Discussion

均一化
元素測定で再現性のある結果を得るには、サンプルの構造と組成が複雑で不均一であるため、酸分解の前にサンプルを均質化する必要があります。均質化は、構成的および分布的不均一性を排除することを目的としています。サンプルを混合すると、サンプル全体に成分が均等に再分配されるため、分布の不均一性が最小限に抑えられます。同様に、粒子径を均一な大きさに引き下げることによって、体質の不均一性が低減される44。ホモジネートから得られたサブサンプルは、代表となる元のサンプルと同じ比率の成分を含まなければならない45。

均質化は、試料をより小さな粒子46に分解する力を加えることによって達成される。サンプルは、切断、粉砕、せん断、破砕、粉砕、または混合によって均質化できます。しかしながら、適切な方法は、試料の硬度、脆性、研磨性、弾力性、形状、およびホモジナイザーの成分に接着する能力を考慮しなければならない方法47。

試料は、乳棒および乳鉢を用いて手動で粉砕するか、または種々のミル(ナイフミル、カッティングミル、ボールミル、ミキサーミルなど)、および他の形態のホモジナイザー48で粉砕することができる。セラミックまたは金属製のブレードを備えた小型のラボサイズのミキサーは、サンプルを分解して同時に混合することで粒子サイズを急速に縮小するため、均質化に一般的に使用されます。サンプルをより小さな均質な粒子に粉砕すると、比表面積が増加し、MAWDによる酸分解が促進されます。

ただし、研削時の摩耗による汚染には注意が必要です。サンプルは、酸分解後に測定する元素と同じ金属を含むブレードで均質化しないでください。そのため、金属製の刃に比べてセラミックの刃がよく使われています。均質化は、通常、不適切に洗浄された在庫や機器コンポーネントによるクロスコンタミネーションの主な要因であり、系統誤差を引き起こします。使用後は、ミキサーの各コンポーネントを完全に洗浄し、超純水で洗浄する必要があります。

極低温粉砕は、分解が困難なサンプルを均質化するときに使用されます。サンプルは液体窒素(-196°C)を使用して凍結されているため、脆く、均質化が容易になります49,50。

酸消化
酸分解手順で最も頻繁に使用される酸化性酸の1つはHNO3です。通常、少量のH2O2と組み合わせて使用され、酸の酸化力を高め、消化効率を向上させる20。これら2つの化学物質の混合物は、食品サンプル51を含む有機サンプルの消化に頻繁に使用される。MAWD中の有機サンプルの分解は、大気圧27でHNO3共沸混合物の沸点(121°C)を超える高圧および温度で行われます。MAWD では、圧力が 176 気圧27 に上昇すると、HNO3 の沸点は 176 °C に上昇します。MAWDで酸分解が行われる温度は、HNO3が蒸発し、酸分解の効率が低下するため、開放系では達成できません。

MAWDによる密閉容器での分解中、HNO3は過酷な反応条件下で有機サンプルと反応し、CO2、H2O、NOなどのガス状生成物を形成します(式5)52,53。密閉型反応容器を使用する利点は、HNO3が絶えず再生されるため、消化に必要な酸の量と濃度が低いことです。この再生プロセスは、O2が反応容器内に存在する限り起こる。O2の一次供給源はH2O2であり、これは熱的に不安定であり、H2OとO2に分解される(式6)。反応容器内では、NOがO2と反応してNO2を形成する(式7)。形成されたNO2は、H2Oに溶解し、HNO3およびHNO2の形成をもたらす(式8)。生成されたHNO2は、その後、H2O、NO2、NOに分解され(式9)、再生機構53、54が完成する。次に、新たに形成されたNOおよびNO2は、上記のプロセスによって反応する。

Equation 6(5)

ここで、nは炭素原子の数を表します。

Equation 7(6)

Equation 8(7)

Equation 9(8)

Equation 10(9)

有機試料がHNO3と反応すると、その化学構造中に存在する金属が水溶性硝酸塩55を形成する。MAWDは固体を液体に変換することを目的としているため、水溶性塩の形成が望まれています。

サンプルが異なれば、サンプル組成が複雑なため、酸のさまざまな組み合わせを使用できます。分解しにくい有機物、特に無機物試料はHNO3のみで溶解することができないため、HCl、HF、HClO4、およびH2SO4などの他の酸も使用される21,56。

高温での非酸化性HClは、炭酸塩、リン酸塩、酸化物、ホウ酸塩、硫化物、フッ化物などの塩の消化に使用されます28,55。HClをHNO3と3:1のモル比で結合させると、王水が形成され、塩化ニトロシル(NOCl)、Cl2、およびH2Oの形成により、HClおよびHNO3単独と比較して酸化能力が向上する(式10)57。王水は、Au、Pt、Pd28などの貴金属を溶解することができます。

Equation 11(10)

ケイ酸塩の分解には、SiとOの間の強い結合を切断するため、HFが頻繁に使用されます。HFがケイ酸塩サンプル(鉱物、土壌)と相互作用すると、ヘキサフルオロケイ酸(H2SiF6)が形成されます(式11)19,58。しかし、HFはケイ酸塩を消化する能力があるにもかかわらず、不溶性フッ化物塩6の形成、重金属との揮発性生成物の形成19、揮発性SiF427など、いくつかの欠点を示します。また、HFはガラス器具や石英反応容器を溶かすため、使用できない18。

Equation 12(11)

酸分解用反応容器
MAWDで使用される反応容器は、酸分解中の高温および高圧に耐えるように設計されています。また、これらの反応容器は良好なマイクロ波透過性を示すため、マイクロ波を吸収することなく通過させることができる20。反応容器を通過するマイクロ波は水分子に到達し、水分子は極性であるため効果的に吸収し、その結果、サンプル59を含む溶液を加熱します。反応容器内の液相のみがマイクロ波放射を吸収し、気相は吸収しないため、圧力がわずかに上昇して温度が大きく上昇します18。

コンタミネーションや分析物の損失を最小限に抑えるために、反応容器は密閉されており、物質が容器から漏れたり入ったりするのを防ぎます。

反応容器に最も一般的に使用される材料は、合成ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)、TFMとして知られる共重合PTFE、パーフルオロアルコキシアルカン(PFA)、および石英52,60です。これらの材料は、HFが溶解する石英容器を除いて、酸分解に使用されるほとんどの化学物質に対して化学的に不活性です。異なるタイプの容器を使用すると、マイクロ波加熱を受けたときに異なる反応条件が得られることがあるため、すべての実験で1種類の反応容器のみを使用することが重要です。低い反応温度では、PTFE、PFA、およびTFM-PTFE反応容器が使用されますが、300°Cを超える温度では、石英容器が推奨されます52。これは、ポリマーが高温で劣化して分解するためです。

酸分解効率の評価
酸分解の効率を評価する方法はいくつかあります。溶液の色は、サンプルの完全分解または部分分解が行われたかを評価するために使用できます。通常、溶液の無色またはわずかに黄色の着色は消化が成功したことを示す指標であり、溶液の濃い黄色、オレンジ色、緑色、または茶色は、消化プロセスが失敗したことを示唆し、部分的な消化が行われたことを意味する61。場合によっては、未消化の有機または無機微粒子が消化後の反応混合物中に存在することがあり、元素測定のためにサンプルを装置に導入する前にろ過が必要です。未消化の微粒子を除去することで、ICP-OESおよびICP-MS31の場合のシステムの目詰まりや血漿の不安定性を防ぐことができます。

酸分解の効率は、残留炭素含有量(RCC)とRAの測定によって実験的に評価することもできます。RCCは、消化中にCO2に変換されなかった溶液中に残存する有機炭素の量を表す62。RCCのより低い値は、元素決定における非スペクトルおよびスペクトル干渉(例えば、40Ar12C+)を低減するために好ましい63,64。RCC測定はICP-OESを用いて行います。炭素含有量は、193.091nm65,66,67の発光波長で測定されます。酸消化の効率は化学物質の消費に関連しています。酸の消費量が多いほど、RCC値は低くなります25。

酸は、サンプルと反応するため、消化中に継続的に消費されます。ほとんどの場合、少量の酸は未反応のままです。RAの量は、NaOH10またはKOH25,54による滴定によって決定できます。最終消化溶液中の酸濃度が高いほど、ICP-MS25 や ICP-OES68 などの分析手法でバックグラウンドシグナルが増加する可能性があるため、RA の値は低い方が好ましいです。RA値が高いほど、消化に使われる初期酸濃度が低いことも示しうる69。

ICP-MSによる多元素測定
ICP-MSはいくつかのコンポーネントで構成されています。蠕動ポンプは、サンプル溶液をオートサンプラーからネブライザーに送り込みます。液体サンプルは、ネブライザーによってArガスと混合することにより、エアロゾルに変換されます。続いて、スプレーチャンバーはエアロゾル液滴を濾過し、従って、プラズマ70への微細なエアロゾル液滴画分の導入を可能にする。Arプラズマは、高周波コイルによってトーチ内で生成および維持され、約10,000 K70の温度になります。エアロゾルはArプラズマ中で霧化され、イオン化されます。その後、イオンは界面を通って高真空領域へと進みます。イオン光学系はイオンを衝突セルに誘導し、そこでHeガスの流れが分析物の単原子イオンおよび多原子イオンと衝突します。多原子イオンは、同じ公称質量の分析種よりも大きいため、Heとより頻繁に衝突し、より多くの運動エネルギーを失い、したがって効率的に除去される71。次のステップでは、イオンは質量分析計(この場合は四重極)に到達します。質量分析計では、イオンは質量電荷比(m/z)に基づいて分離されます72。 m/zによる分離の後、イオンは検出器(この場合は電子増倍管)に到達します(図10)。

重要な手順と制限事項
プロトコル内には、いくつかの重要なステップといくつかの制限があります。プロセスを継続する前にサンプルが完全に乾燥していることを確認し、汚染を回避することは、均質化の重要なステップです。汚染を防ぐためには、分析の精度に影響を与える可能性があるため、プロセス全体にわたってすべてのガラス器具を清潔に保つための努力がとられなければならない73。コンタミネーションが発生した場合は、サンプルを廃棄し、調製プロセスを繰り返す必要があり、時間がかかる場合があります。このプロトコルに記載されていない他のサンプルにこのプロトコルを適用する場合、一部のサンプルでは、サンプルに存在するすべての金属を完全に溶解するためにより高い温度と異なる化学物質が必要になる可能性があるため、完全な消化が達成されない可能性があります。酸分解には高純度の化学薬品が必要ですが、これは高価になる可能性があります。高純度の化学薬品を使用することで、干渉を最小限に抑え、ICP-MSによる測定の信頼性、精度、精度を向上させることができます。サンプル調製プロセスは時間がかかり、調製が数日続くため(乾燥、均質化、酸分解)、1日で調製できるサンプルの数が制限されるため、サンプルスループットが低くなります。

ICP-MSで多元素測定を行うと、スペクトル干渉(多原子および同重体)に遭遇する可能性があります。通常プラズマ中で発生する多原子干渉は、少なくとも2つの同位体を結合するが、同重体干渉は、測定された分析物と同じ m/z を持つ他の元素の同位体を表す74。これらの干渉を排除する(例えば、衝突セルで)ことが重要です。スペクトル干渉に加えて、結果は、ICP-MS装置へのサンプル導入、エアロゾル液滴のサイズ分布、プラズマの安定性、界面を介したイオン輸送などからなる非分光干渉によっても影響を受けます75。

本明細書に記載のプロトコルは、食品サンプルの用途とは別に、他の用途にも応用できる可能性がある。均質化および酸分解ステップをわずかに変更するだけで、無機サンプル、土壌76、電子廃棄物28などの調製に適合させることができる。調整には、さまざまな化学物質を使用したり、その量を変えたり、さまざまなサンプルタイプに合わせて分解温度を変更したりすることが含まれます。さらに、技術や方法論が進化するにつれて、さらなる改善と自動化をプロトコルに組み込むことで、効率を高め、全体的なサンプル調製時間を短縮することができます。

要約すると、このプロトコルは、実験室ミキサーでの食品サンプルの均質化、高温高圧での68 wt% HNO3と30 wt% H2O 2の混合物を使用したマイクロ波支援湿式酸消化、およびICP-MSによる元素測定を実証します。このプロトコルは、ステップバイステップの指示を提供し、均質化、酸消化、および元素測定の背後にある理論を説明するため、元素測定用のサンプル調製において担当者をトレーニングするために使用できます。

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Disclosures

著者は何も開示していません。

Acknowledgments

著者らは、スロベニア研究機関の財政的支援(助成金番号P2-0414、P2-0118、J1-2470、NK-0001、およびJ1-4416)に感謝の意を表します。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ar gas Messer 7440-37-1 Ar 5.0 gas (purity 99.999%).
AS-10 Autosampler system Shimadzu Autosampler connected to the ICP-MS, containing 68 ports for samples.
Automatic pipettes Sartorius 200 µL, 1 mL, and 5 mL automatic pipettes.
Balance XSE104 Mettler Toledo, Columbus, Ohio, USA Analytical balance scale with a maximum weighing mass of 120 g.
Ceramic knife Ceramic knife used for cutting fresh food samples.
Dessicator Glass desiccator with lumps of silica gel.
ETHOS LEAN Milestone, Sorisole, Italy Microwave system for wet acid digestion in closed 100 mL vessels made of TFM-PTFE.
Fume hood Laboratory fume hood with adjustable air flow.
Glass beakers RASOTHERM CarlRoth GmbH + Co.KG 50 mL, 250 mL glass beakers
Glass funnels Small glass funnels fitting into the neck of volumetric flasks.
He gas Messer 7440-59-7 He 5.0 gas (purity 99.999%).
Hydrogen peroxide ThermoFisher Scientific 7722-84-1 Hxdrogen peroxide 100 volumes 30 wt.% solution. Laboratory reagent grade.
ICP multi-element standard solution VIII Supelco 109492 100 mg/L ICP multi-element standard solution containing 24 elements (Al, B, Ba, Be, Bi, Ca, Cd, Co, Cr, Cu, Fe, Ga, K, Li, Mg, Mn, Na, Ni, Pb, Se, Sr, Te, Tl, Zn) in 2 % dilute nitric acid.
ICPMS 2030 Shimadzu Inductively coupled plasma mass spectrometry system for multi-element analysis of digested samples.
ICP-MS Tuning Solution A CarlRoth GmbH + Co.KG 250 mL tuning solution containing 6 elements (Be, Bi, Ce, Co, In, Mn) in 1 % nitric acid.
KIMTECH Purple Nitrile gloves Kimberly-Clark GmbH Disposable Purple Nitrile gloves (S, M or L).
Laboratory coat Any available supplier /
Mixer B-400 BÜCHI Labortechnik AG, Flawil, Switzerland Laboratory mixer with ceramic blades.
Nitric acid ThermoFisher Scientific 7697-37-2 Nitric acid, trace analysis grade, 68 wt%, density 1.42, Primar Plus, For Trace Metal Analysis.
Plastic centrifuge tubes Isolab 50 mL plastic centrifuge tubes with screw caps, single use.
Plastic syringes Injekt B. Braun 2 pice, single use 20 mL syringes.
Plastic tubes for autosampler Shimadzu 046-00147-04 Plastic tubes for autosampler, 15 mL capacity, 16 mm diameter, 100 mm length.
Plastic waste containers Plastic containers for the removal of chemicals after the cleaning procedure of reaction vessels.
Protective googles /
Samples (broccoli, sausage, noodles, zucchini, mushrooms) Fresh samples, which were dried to a constant weight and homogenized during the procedure. The samples were purchased from a local shop.
Spatula Plastic spatula.
Sterilizator Instrumentaria ST 01/02 Instrumentaria Dryer with adjustable temperature.
Syringe filters CHROMAFIL Xtra 729212 Syringe filters with polypropylene housing and polyamide hydrophilic membrane. Membrane diameter 25 mm, membrane pore size 0.2 µm.
Ultrapure water ELGA Labwater, Veolia Water Technologies. Ultrapure water with a resistivity of 18.2 MΩcm, obtained with laboratory water purification system.
Volumetric flasks 25 mL glass volumetric flasks.

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化学、第202号、均質化、マイクロ波支援湿酸分解、サンプル調製、食品サンプル、元素測定
ICP-MSによる多元素測定のための均質化およびマイクロ波支援湿式酸分解を用いた食品サンプルの調製(英語)
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Rantaša, M., Majer, D.,… More

Rantaša, M., Majer, D., Finšgar, M. Preparation of Food Samples Using Homogenization and Microwave-Assisted Wet Acid Digestion for Multi-Element Determination with ICP-MS. J. Vis. Exp. (202), e65624, doi:10.3791/65624 (2023).

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