22 de junho de 2013
Para desvendar são desesperadamente necessários os primeiros mecanismos moleculares subjacentes câncer de próstata iniciação, romance e sistemas de modelos humanos e abordagens inovadoras. O potencial de pré-prostática seio urogenital mesênquima (UGSM) para induzir as populações de células estaminais pluripotentes para formar o epitélio da próstata humana é uma ferramenta poderosa na investigação experimental próstata.
O objetivo geral deste procedimento é isolar o mesênquima do seio urogenital, ou UGSM, de embriões de roedores e implantar misturas de tecido na cápsula renal que possam formar epitélio prostático humano. Isso é realizado primeiramente isolando o seio urogenital de embriões de camundongo ou rato. Em seguida, o mesênquima do seio urogenital é separado do epitélio.
Em seguida, suspensões de células isoladas do mesênquima do seio urogenital são combinadas com células-tronco pluripotentes. Por fim, a mistura celular é implantada sob a cápsula renal de um camundongo hospedeiro. Em última análise, podem ser obtidos resultados que demonstram a formação de epitélio prostático humano no rim do camundongo mediante a validação da expressão específica de PSA humano.
Embora este método possa fornecer informações sobre a função prostática e o início de doenças, ele também pode ser aplicado a outros sistemas, como xenotransplantes de tumores prostáticos humanos e indução de linhagens celulares tumorogênicas semanais para formação de tumores. Após eutanasiar um camundongo ou rato prenhe com tempo controlado e isolar os embriões, separe-os da bolsa amniótica, corte o cordão umbilical e transfira-os para um tubo de 50 mililitros contendo solução salina equilibrada de Hanks gelada, mantendo-o sob gelo.
Coloque um embrião em uma placa de Petri de 100 milímetros e use uma tesoura para dividi-lo ao meio ao nível do bolo. Remova o estômago e o intestino delgado e, em seguida, localize os ovários no embrião feminino, que são encontrados nos polos caudais dos rins, ou os testículos no embrião masculino, localizados ao nível da bexiga. Sob um microscópio de dissecação.
Use tesoura de Veneza para cortar a parede abdominal e expor a bexiga e a parede posterior do abdômen. Solte o trato genital superior dos pontos de fixação e libere o cordão umbilical. Corte o osso púbico com pinça fina de ponta Dumont.
De forma romba, separe-a da parede anterior do seio urogenital. Separe a parede posterior do seio urogenital do reto e corte o seio urogenital com a bexiga na extremidade inferior. Em seguida, separe a bexiga do seio urogenital.
Armazene o seio urogenital e o fragmento em HBSS gelado. Transfira o seio urogenital para um tubo de 50 mililitros contendo 1% de tripsina em HBSS sem cálcio e magnésio e incube a quatro graus Celsius por 30 minutos. Após a incubação, remova a tripsina e adicione meio DMEM/F12 com 10% de FBS para neutralizar a digestão.
Em seguida, utilize uma agulha ou pinças de ponta fina para cuidadosamente separar a bainha mesenquimal aderente do tubo epitelial. Manter o tubo epitelial intacto reduz as chances de contaminação das células epiteliais no mesênquima. Isso pode resultar na formação de glândulas de roedores juntamente com o epélio glandular humano derivado de células-tronco.
Transfira o UGSM para um novo tubo de 50 mililitros contendo meio DMM F12 com 10% de FBS, 1% de penicilina-estreptomicina, 1% de aminoácidos não essenciais e um nanomolar de R 1 8 81. Incube o tubo a 37 graus Celsius com 5% de CO2 durante a noite. No dia seguinte, centrifugue o tecido a 200 ×g. Descarte o sobrenadante e use PBS para lavar o pellet.
Após remover o PBS, re-suspenda o tecido em 0,2% de colagenase em D-M-A-M-F 12 e incube a 37 graus Celsius com agitação suave por uma hora. Vortexe vigorosamente o tecido digerido três vezes até que se torne uma mistura homogênea de células isoladas e neutralize a colagenase adicionando meio D-M-A-M-F 12 com 10% de FBS, 1% de penicilina-estreptomicina, 1% de aminoácidos não essenciais e um nanomolar de R 1 8 81. Lave as células três vezes centrifugando-as a 200 G e re-suspendendo-as em HBSS. Por fim, re-suspenda as células mesenquimais em DMM F 12 e utilize um hemocitômetro para contá-las antes de realizar o transplante.
Após preparar uma área cirúrgica estéril e anestesiar um camundongo nu atímico macho com uma injeção intraperitoneal de cetamina e xilazina, de acordo com o protocolo descrito, realize uma compressão no dedo do pé para confirmar o nível de sedação; prepare cirurgicamente o camundongo, depilando o local cirúrgico se necessário e limpando-o com três passadas alternadas de álcool a 70%, seguidas por solução de Betadine. Após aplicar pomada oftálmica, faça uma incisão longitudinal de um centímetro nas costas e continue cortando a parede abdominal com uma incisão longitudinal de 0,5 centímetro. Com cuidado, pressione o rim para fora do abdômen e utilize gotas de solução salina estéril para mantê-lo úmido.
Em seguida, utilizando uma agulha de seringa de 27 graus, perfure suavemente a cápsula renal para criar um local de injeção para a mistura celular. Depois, preencha uma agulha de seringa de 28 graus com 10 microlitros da mistura celular e insira-a lentamente no local da punção, penetrando o parênquima renal, a fim de atingir uma área sob a cápsula renal.
Injete 10 microlitros da mistura celular para formar um bolo sobre o rim abaixo da cápsula renal e retire a agulha. Retorne o rim à cavidade abdominal e fixe a camada muscular do peritônio com pontos de náilon 4-0. Feche a pele com pontos ou grampos e use solução salina estéril para limpar qualquer sangue da pele.
É mostrada aqui uma imagem de ultrassom de um xenoenxerto em crescimento oito semanas após a implantação. A área circulada representa o xenoenxerto na superfície do rim. Essas imagens demonstram o crescimento do xenoenxerto na superfície do rim.
Após 12 semanas, células-tronco embrionárias humanas implantadas na ausência de mesênquima do seio urogenital formarão grandes teratomas, enquanto o mesênquima do seio urogenital implantado isoladamente não formará nenhuma estrutura discernível. Mostrado no centro. Os painéis desta figura são colorações imuno-histoquímicas representativas de epitélio prostático humano derivado de células-tronco em comparação com tecido prostático humano adulto.
Como mostrado aqui à esquerda, as glândulas contêm uma camada epitelial luminal positiva para AR. Essa camada também é positiva para PSA, uma camada de células epiteliais basais positivas para P 63 e cromogranina rara. Células neuroendócrinas, as glândulas não são cancerígenas, conforme demonstrado pela coloração negativa para A-M-A-C-R após a castração do hospedeiro.
As células luminas positivas para PSA e AR não estão mais presentes, demonstrando a característica dependência androgênica. Ao tentar realizar este procedimento, é importante lembrar-se de ter muito cuidado ao separar o mesênquima do seio urogenital do epitélio. Uma vez que o epitélio do seio urogenital contaminante formará glândulas e potencialmente poderá confundir seus resultados.
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Este estudo tem como foco o isolamento do mesênquima do seio urogenital de roedores (UGSM) para investigar seu potencial na formação do epitélio prostático humano. Ao combinar o UGSM com células-tronco pluripotentes e implantar a mistura na cápsula renal de um camundongo hospedeiro, os pesquisadores pretendem compreender os mecanismos de iniciação do câncer de próstata.
Este método atende à necessidade crítica de sistemas modelo derivados de humanos e livres de hormônios na pesquisa do câncer de próstata, permitindo a desmistificação mecanicista de fatores de suscetibilidade genética. Ao utilizar o mesênquima do seio urogenital de roedores para induzir epitélio prostático humano a partir de células-tronco, ele fornece uma plataforma preditiva para validação de alvos e investigação de vias. A abordagem apoia fluxos de trabalho de descoberta precoce ao acelerar testes funcionais de genes candidatos à carcinogênese antes da identificação de compostos líderes.
O método se integra à descoberta inicial ao permitir testes de hipóteses sobre fatores genéticos em um sistema epitelial relevante para humanos, apoiando decisões de prosseguir ou não antes do desenvolvimento de ensaios e dos esforços de identificação de compostos líderes.