Abstract
Disminución de la memoria explícita dependiente del hipocampo (memoria de hechos y acontecimientos) es uno de los primeros síntomas clínicos de la enfermedad de Alzheimer (EA). Está bien establecido que la pérdida de sinapsis y la consiguiente neurodegeneración son los mejores predictores de deterioro de la memoria en la EA. Los últimos estudios han puesto de relieve el papel neurotóxico de oligómeros de amiloide-beta solubles (Aβo) que comienzan a acumularse en el cerebro humano aproximadamente de 10 a 15 años antes de que los síntomas clínicos se hacen evidentes. Muchos informes indican que Aβo soluble se correlacionan con los déficits de memoria en los modelos de AD y los seres humanos. La neurodegeneración inducida por Aβo observado en cultivos de cortes cerebrales y neuronales ha sido más difícil de reproducir en muchos modelos animales. El modelo de infusiones repetidas Aβo muestran superar este problema y permitir abordar dos ámbitos clave para el desarrollo de nuevas terapias modificadores de la enfermedad: identificar marcadores biológicos para el diagnóstico de Alzheimer precoz, y determinar el mecha molecularmeca- que sustenta los déficits de memoria inducidos por Aβo en el comienzo de la AD. Desde solubles agregada Aβo relativamente rápido en fibrillas insolubles Aß que se correlacionan pobremente con el estado clínico de los pacientes, Aβo solubles se preparan recién y se inyecta una vez al día durante seis días para producir la muerte celular marcada en el hipocampo. Utilizamos cánula especialmente diseño para infusiones simultáneas de Aβo y la infusión continua de anticuerpo Aβo (6E10) en el hipocampo usando bombas osmóticas. Este innovador método in vivo ahora se puede utilizar en estudios preclínicos para validar la eficacia de las nuevas terapias de anuncios que podrían impedir la deposición y neurotoxicidad de Aβo en pacientes pre-demencia.
Introduction
Inicialmente se propuso que la acumulación de especies de Aß insolubles en el cerebro fue central en la patogénesis de la EA. 1,2 Sin embargo, las placas amiloides también se detectan en algunos ancianos cognitivamente normales. 3-7 Para superar la pobre correlación existente entre los depósitos de placa y déficits cognitivos en el año, los últimos informes han demostrado la presencia de Aβo solubles tóxicos en el inicio de la enfermedad, lo que se correlaciona mejor con el estado clínico de los pacientes. 8-14 Dado que el proceso de Aß oligomerización es muy dinámico, se sugirió que la neurotoxicidad es inducida por diversas Aβo en lugar de sólo un tipo específico de oligómero. 14-16 Dado que muchos estudios han demostrado que Aβo puede iniciar disfunciones sinapsis antes de sinapsis y la pérdida neuronal, 17-24 teorías actuales indican que el tratamiento relacionadas con el Aß podría ser eficaz en AD temprana en lugar de en las etapas posteriores, según pruebas realizadas hasta el momento en los ensayos clínicos.
Una característica distintiva de la patogénesis de la EA es la muerte celular masiva y generalizada observada en las últimas etapas de la enfermedad, y la sinapsis significativa y pérdida neuronal observada en regiones localizadas del cerebro cuando los déficits de memoria se hacen detectables a nivel clínico. La vía perforante que se proyecta desde la corteza entorrinal (CE) para el giro dentado (DG) es perturbado notablemente en el inicio temprano de la EA. 25,26 Durante el estado prodrómico de AD cuando el deterioro cognitivo leve (MCI) se convierte en una muerte celular significativa aparente se detecta en la CE, así como la pérdida sináptica en la Dirección General de 25,26.
Aunque un gran número de evidencias ha establecido claramente la acción tóxica de Aβo soluble en principios de AD, 8-14 neurodegeneración inducida por Aβo observó en el cultivo neuronal o cultivo de cortes de cerebro organotípicos ha sido más difícil de reproducir en modelos animales. 27 La mayor parte de la AD transgénico modelos que sobreexpresan Aβ tienen placas amiloides, la hiperfosforilación de tau, la deficiencia de sináptica y déficits de memoria. 27 Sin embargo, estos modelos han sido mucho menos exitosos en la muerte celular de modelado observado en el hipocampo de pacientes con AD. Para superar estos problemas técnicos hemos desarrollado un modelo basado en infusiones intracerebrales de Aβo soluble. Hemos informado anteriormente de que las infusiones repetidas de hipocampo de Aβo solubles inducen la pérdida neuronal progresiva y la hiperfosforilación de tau, dos características patológicas asociadas con la pérdida de memoria en la EA. 28 A continuación, le mostramos un nuevo método para probar terapias AD usando una cánula especialmente diseño para infusiones simultáneas de Aβo y la infusión continua de anticuerpo Aβo (6E10) con bombas osmóticas.
Las bombas osmóticas proporcionan una forma única de probar in vivo la eficacia de cualquier anticuerpo (u otros compuestos) frente a la neurodegeneración inducida por Aβo directamente en el sitio de infusión de Aβo. Por lo tanto, estas bombas represent una herramienta conveniente para establecer una prueba de concepto sólido con respecto a los mecanismos de acción de los agentes terapéuticos potenciales en la EA. Dado que los informes recientes señalan el impacto crítico de Aβo soluble en las primeras etapas de la EA, muchos tratamientos dirigidos hacia Aβo en realidad están siendo probados por laboratorios académicos y farmacéuticas. Este nuevo modelo animal permite imitar la pérdida sináptica y neuronal observada en la enfermedad de Alzheimer precoz, y bombas osmóticas se utilizan en infusión continua agentes de tratamiento específicamente a la zona de infusión Aβo. Los fracasos repetidos de terapias AD ensayadas en los últimos años en los pacientes leves a moderados como llevado a los investigadores a iniciar los ensayos en pacientes pre-demencia antes Aβo comienzan a acumularse en abundancia y generar daños irreversibles en el cerebro. En este contexto, el ensayo de nuevos compuestos que impiden la deposición y en consecuencia, la neurotoxicidad de Aβo podría ser de interés en los pacientes pre-clínicos.
Protocol
Ética declaración: El animal protocolo para este proyecto obtuvo la aprobación del Comité de Cuidado de Animales del Hôpital du Sacré-Coeur de Montreal de conformidad con las directrices del Consejo Canadiense de Protección de los Animales.
1. Catéter Preparación antes de la cirugía estereotáxica
- Cortar catéteres PE50 (6 cm de longitud) que se utilizan para conectar la cánula con bombas osmóticas (véase la Figura 1A). Llenar catéteres PE50 con líquido cefalorraquídeo artificial (ACSF) y sellar ambos extremos de los catéteres. Mantenga el catéter a 4 ° C hasta su uso.
2. La cánula de implantación por estereotaxia
- Realizar la cirugía en condiciones estériles. Esterilizar todos los instrumentos y materiales quirúrgicos en autoclave. Limpiar el aparato estereotáxico y la zona de trabajo a fondo, y desinfectado con una solución de etanol al 70%. Use una máscara quirúrgica, el capó del cabello y guantes estériles.
- Anestesiar ratas mediante la inyección por vía intraperitoneal (ip) una solución de ketamina y xilazina (100 mg / kg y 10 mg / kg, respectivamente). Confirmar la anestesia por el control de movimiento tras una pizca dedo del pie suave.
- Inyectar un no esteroide anti-inflamatorio (Meloxicam; 1 mg / kg) por vía subcutánea (sc) al animal anestesiado al menos 30 min antes de la cirugía.
- Afeitar la cabeza del animal usando las podadoras y desinfectar la piel con una solución de gluconato de clorhexidina al 2% y alcohol isopropílico al 2% tres veces. Aplique un ungüento oftálmico veterinario en los ojos para evitar la sequedad, mientras que bajo anestesia.
- Colocar el animal en un marco estereotáxico con las barras de oído. Fijar una cánula en el brazo de soporte de la estructura estereotáxica. Inyectar (sc) un agente anestésico local (bupivacaína (1,5 mg / kg) y lidocaína (1,5 mg / kg) en la parte superior de la cabeza. La anestesia es mantiene durante todo el procedimiento mediante la colocación de un cono de nariz entrega de 3% de isoflurano. La totalidad campo quirúrgico debe estarcubrió apagado, pero no se llevó a cabo aquí para demostrar mejor la técnica.
- Hacer una incisión de 3 cm en la parte superior de la cabeza con un bisturí. Instalar 4 pinzas alrededor de la incisión para dejar claro el cráneo. Usando una tijera de punta redonda, hacer un bolsillo (2 x 2 cm 2) debajo de la piel entre los omóplatos del animal.
- Raspe el periostio del cráneo con una cuchilla. Aplique una compresa de gasa en el cráneo si el sangrado.
- Compruebe que el cráneo es plana y bien alineada en el marco estereotáxico. Para asegurarse de que el cráneo es plana, comprobar la altura de las coordenadas en el bregma y al lambda. Tomar las coordenadas de la bregma que será utilizada como punto de referencia.
- A partir de la bregma, calcular las coordenadas de los dos cánula guía que se implantan de forma bilateral en el hipocampo (anteroposterior: - 0,42 cm; mediolateral: ± 0,30 cm; dorsoventral: - 0,28 cm de acuerdo con el atlas de cerebro de rata de Paxinos y Watson) 29 . indicar elposición de la cánula con un marcador.
- Perforar un agujero (0,5 mm) en el cráneo en el momento de la implantación, tanto cánula. Taladro otros dos agujeros de aproximadamente 5 mm por encima y por debajo de los puntos para insertar tornillos que fortalecerán la cánula cuando se aplica el cemento dental.
- Corte un extremo del catéter previamente lleno de ACSF con un bisturí, y la inserta en el brazo angular de la cánula. Fijar la primera cánula con cemento dental. Evitar poner cemento dental alrededor de la posición en la segunda cánula.
- Dejar que el cemento dental seca durante 2 - 3 minutos, luego retire el brazo de soporte de la primera cánula, y fijar la segunda cánula en el mismo. Repita los pasos 2.11 y 2.12. Ponga cánula maniquí en tanto guía cánula. Asegúrese de que el maniquí y la guía de cánula son de la misma longitud para evitar la infiltración de tejido y el bloqueo de la cánula.
- Insertar el extremo libre de los dos catéteres en el bolsillo hecha previamente entre los omóplatos del animal. Retire las abrazaderas y coser la piel con unahilo de sutura 4-0.
NOTA: La guía de cánula superior debe ser accesible para las próximas infusiones Aβo. - Retire el animal del marco estereotáxico y poner de nuevo en su jaula. Durante la recuperación post-quirúrgica, colocar la jaula en una manta de calentamiento de agua hasta que el animal se despierta. La jaula debe ser parcialmente sobre la base de modo que la rata puede alejarse del calor si es necesario. Monitorear constantemente el animal hasta que recupere la conciencia suficiente para mantener decúbito esternal.
- Volver ratas a las instalaciones de animales para recuperarse de la cirugía durante 10 días bajo estrecha vigilancia.
NOTA: No devuelva un animal que ha sido sometido a una cirugía para la compañía de otros animales hasta que esté completamente recuperado. Meloxicam (1 mg / kg) se administra una vez al día durante dos días después de la cirugía para tratar el dolor.
3. Instalación de la bomba osmótica
- Un día antes de la instalación, llenar bombas osmóticas con anticuerpo 6E10 (1 mg / ml; 100 l) y IgG1 de controlanticuerpo (1 mg / ml; 100 l) de acuerdo con las instrucciones del fabricante en condiciones estériles. Mantener las bombas en agua destilada estéril a 37 ° C durante la noche para activar las bombas.
- Anestesiar las ratas con isoflurano al 3% para instalar bombas osmóticas (0,5 l / h durante 7 días). Afeitado entre los omóplatos y desinfectar la piel con una solución de gluconato de clorhexidina al 2% y alcohol isopropílico al 2%. Hacer una incisión de 2 cm con un escalpelo entre los omóplatos para localizar los catéteres PE50 conectado a la cánula guía.
- Corte el extremo de los catéteres PE50 que contienen cemento dental con un bisturí. Conectar las bombas osmóticas para los catéteres PE50, y añadir un poco de cemento dental en la unión de la bomba y el catéter para asegurar la conexión.
- Coser la piel firmemente con un hilo de sutura 4-0. Ponga la parte posterior animal en su jaula en una almohadilla de calentamiento de agua. Observar la estela de los animales rápidamente a partir de una anestesia con isoflurano (unos 5 minutos).
NOTA: La cirugía dura aproximadamente 5 a 10 min.
4. Aβo Infusiones en despierto y ratas con libertad de movimientos
- Preparar la solución Aβo (0,2 g / l) como se informó anteriormente. 28,30 Permitir Aβo a agregarse dinámicamente y de forma espontánea durante 1 hora a temperatura ambiente antes de la infusión.
- Instalar dos jeringas de 10 l en una bomba de infusión. Llenar las jeringas con 5 l de agua destilada estéril. Cortar dos catéteres PE50 a aproximadamente 60 cm de longitud con un bisturí. Llene los dos catéteres con agua destilada estéril utilizando 1 ml jeringas y agujas 21G.
- Mantener las jeringuillas de 1 ml en un extremo del catéter y conectar el otro extremo a las jeringas Hamilton. Retire las jeringas de 1 ml y comprobar que no hay burbujas de aire dentro de los catéteres.
- Insertar la cánula interna en el extremo de los catéteres PE50. El uso de agua destilada estéril, llenar la cánula interna conectada a catéteres PE50 hasta a 1 l de jeringas Hamilton. Hacer una burbuja de aire por pulling los pistones de hasta 2 l.
- Mezclar la solución Aβo la pipeta hacia arriba y hacia abajo utilizando una punta del mínimo de la adhesión. Evitar la formación de burbujas durante el mezclado. Llenar tanto cánula interna con 1,5 l de solución Aβo tirando hacia atrás los pistones hasta 3,5 l.
- Hacer líneas con un marcador antes y después de la burbuja de aire hecho en los dos catéteres. Esto sirve como un punto de infusión en curso de verificación. Para la infusión, poner la jaula cerca de la bomba de infusión y quitar la cubierta.
- Coloque la rata en recibir mimos y herméticamente raspar el brazo del Snuggle alrededor de su cuello para inmovilizar la cabeza de la rata. Retire la cánula ficticio de la cánula guía de dos. Insertar la cánula interna previamente preparado en la cánula guía. Compruebe que estén insertados completamente y bien fijados a la base de la cánula guía.
- Liberar la rata del Snuggle y poner de nuevo en su jaula para limitar el estrés contención. Vigilar de cerca para asegurarse de que los catéteres no se tuercen para ti conseguirella y la infusión se realiza correctamente.
- Encienda la bomba de infusión. Se inyecta 1 l de solución de Aβo a una velocidad de 0,1 l / min (10 min). Durante la infusión, compruebe que el pistón de la jeringa se mueve de 3,5 a 2,5 l l, y que la burbuja de aire en ambos catéteres PE50 se mueve continuamente.
- Deje la cánula interna en su lugar por otros 5 min después de la infusión para permitir la difusión eficiente de solución Aβo. Llevar la rata de vuelta en el snuggle para quitar la cánula interna y capsulado cánula guía para prevenir el reflujo de la solución inyectada. Utilice cánula ficticia que se detiene justo antes el brazo de ángulo de la cánula. Devolver el animal en su jaula.
- Repetir la perfusión Aβo una vez al día durante 6 días consecutivos. La eutanasia a los animales por decapitación.
Representative Results
El efecto neurotóxico de Aβo se investigó en ratas Long-Evans mediante la implantación de la cánula en la DG del hipocampo. Soluble Aβo se inyectaron cada día durante seis días consecutivos. Se utilizó cánula especialmente diseño para infusiones simultáneas de Aβo y la infusión continua de 6E10 o control anticuerpo IgG1 en el hipocampo usando bombas osmóticas (Figura 1A). Para las ratas se anestesiaron de inmunohistoquímica, perfundido transcardialmente con 0,9% de NaCl, y el cerebro se sumergieron en solución de paraformaldehído al 4% durante 48 horas y 15% de solución de sacarosa durante 24 h. Secciones coronales de libre flotación (40 m) se trataron con 0,3% de H 2 O 2 durante 30 minutos, se bloquearon en suero de cabra al 1% durante 1 hora, y se incubaron durante la noche a 4 ° C con un anticuerpo anti-pan-Aß. Las secciones se trataron con ácido fórmico al 70% durante 3 min antes de la aplicación del anticuerpo. La detección se realizó usando el complejo ABC y un 0.05% de solución de 3,3-diaminobencidina. Las secciones fueron montadas en portaobjetos de vidrio recubiertos de gelatina, se seca al aire de 2 horas, deshidratados (30, 70, 95 y 100% de alcohol), incubados en tolueno 5 minutos, y se cubrieron. Para cresilo tinción violeta, las secciones se incubaron 10 min en una solución de violeta de cresilo 0,5%, se incubaron 1 min en una solución de ácido acético 0,5%, se decoloró (70, 95, y el% de alcohol 100), inmersa en tolueno 5 min, y se cubren con cubreobjetos de vidrio.
Los resultados presentados aquí muestran la deposición de Aβo en la DG en las proximidades de la zona de infusión, y la muerte celular asociada a esta acumulación. Se encontró que el nivel Aβo se redujo sustancialmente por 6E10 tratamiento con anticuerpos (Figura 1B). Se observó la neurodegeneración Marcado cerca del sitio de inyección de Aβo, y fue atenuada por 6E10 tratamiento con anticuerpos (Figura 1B). Estos resultados son consistentes con Aβo acumulación que hemos observado en la DGdespués de infusiones Aβo repetidas en ratones. 28 Liquidación de la deposición de amiloide mediante la inmunoterapia con anticuerpos 6E10 se muestra aquí está en línea con otro informe realizado en un modelo de ratón transgénico AD. 31
Figura 1. Fotografía del animal con la cánula de infusión bilateral Durante Aβo Una solución de Aβo. (0,2 mg / l; 1 l) se inyectó en ratas despiertas y se mueven libremente (una vez al día durante 6 días) utilizando catéteres PE50 conectados a la cánula interna insertado en la guía de la cánula. El tratamiento con control de IgG1 (CTL) o anticuerpo 6E10 se infunde directamente en el sitio de la infusión Aβo usando bombas osmóticas subcutáneamente situados entre los omóplatos del animal. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de THes figura.
Figura 2. La pérdida neuronal inducida por Aβo deposición es atenuada por anticuerpo 6E10 Tratamiento A, Aβo (0,2 g / l; 1 l). Se inyectó una vez al día durante 6 días consecutivos, y se trató con Ctl (IgG1) o anticuerpo 6E10 en el el sitio de la infusión mediante bombas osmóticas. B, la acumulación representante de Aβo en la Dirección General en una sección inmediatamente siguiente a la inserción de la cánula, y la tinción con violeta de cresilo representativa que muestra la pérdida de células. Las barras de escala: 50 micras (n = 4) Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Discussion
Hay pasos críticos dentro de este protocolo que requieren una atención especial. Para la implantación de la cánula, evitar poner cemento dental cuando es demasiado líquido para evitar el bloqueo del orificio de la segunda cánula. Es importante colocar el cemento dental en el extremo libre del catéter P50 unida a la bomba para evitar la irritación y una posible respuesta inflamatoria. El día de la cirugía estereotáxica, el uso de la cánula ficticia que son la misma longitud que la cánula guía para evitar el bloqueo de la cánula. Sin embargo, después de la instalación de bombas utilizan más corto cánula ficticia que detenga antes el brazo de ángulo de la cánula para permitir la infusión adecuada de la solución desde la bomba hasta el hipocampo. Seguir de cerca las infusiones Aβo y compruebe que la burbuja de aire hecho en catéteres se mueve de forma continua durante las infusiones. Asegúrese siempre de que la cánula de inyección está completamente insertada en la cánula guía durante las infusiones.
Si el problema es el encuentro durante la infusión de Aß, Compruebe que la cánula interna no está bloqueado. Si es el caso, eliminar agua destilada estéril a través de la cánula interna. Si se obstruye la cánula guía, gire la cánula interna en la cánula guía. De lo contrario mover la cánula interna hacia arriba y abajo. Contención en el Snuggle puede ser estresante para las ratas, especialmente en el primer día. Para disminuir el estrés del animal, se recomienda manipular y habituarse a las ratas del Snuggle antes de la cirugía estereotáxica.
Muchas ventajas pueden atribuirse a este novedoso y flexible enfoque in vivo. De hecho, la naturaleza de Aβo inyecta se puede controlar con precisión antes de la infusión, y diferentes tipos de preparaciones de Aß (por ejemplo sintético vs soluciones Aß derivados del cerebro) se puede inyectar para evaluar su neurotoxicidad in vivo. Este modelo también se puede utilizar para investigar los mecanismos por los cuales las diversas especies de Aß (por ejemplo, monómeros, de bajo y alto peso molecular oligomers, protofibrillas) pueden inducir efectos neurotóxicos in vivo, y cómo los tratamientos como la inmunoterapia podrían contrarrestar su impacto negativo en el cerebro. Dado que las infusiones se realizan en animales despiertos, con libertad de movimiento, no hay efectos de confusión entre los agentes anestésicos y la solución Aβo en las vías de señalización, como se muestra en los estudios anteriores. Infusiones 32,33 moverse libremente en animales también son compatibles con las pruebas de comportamiento de cualquier tiempo antes y después de las infusiones.
Las infusiones de Aβo y la instalación de la bomba se pueden hacer en animales de diferentes edades para determinar los efectos de Aβo y tratamientos durante el envejecimiento. Desde la neurodegeneración se produce en las proximidades de la zona de infusión, sinapsis y la pérdida neuronal se pueden inducir en diferentes y localizados regiones del cerebro. La infusión colateral de Aβo y control (vehículo o scramble Aß) permite controlar por cualquier cambio en el mismo animal. A la inversa, Aβo o control solluciones se pueden inyectar de forma bilateral en el derecho y el hipocampo izquierdo, por ejemplo al probar los animales en las tareas de comportamiento. La infusión de Aβo y el tratamiento se puede realizar de forma simultánea o alternativamente bombas pueden ser instalados después de la infusión Aβo para evaluar si el tratamiento es eficaz después de la deposición de Aß. El mismo protocolo descrito aquí también se puede usar al hacer infusiones intracerebroventricular de Aβo. El efecto de Aβo sobre las vías de señalización intracelular puede ser evaluada antes y después de la pérdida neuronal dentro de un plazo razonablemente breve. La dosis y el número de infusiones de Aß también se pueden ajustar para obtener una más o menos grave patogenicidad Aß.
Aunque es muy versátil, esta técnica tiene algunas limitaciones. Cánula implantación produce una rotura mecánica del tejido y la neuroinflamación en los primeros días después de la cirugía. Por lo tanto, es esencial que esperar al menos una semana después de la cirugía antes de comenzar Aβo INFUsión, y añadir controles adecuados (inyección de vehículo o scramble inactiva Aß) a tener en cuenta estos hechos. Además, sólo un pequeño volumen de Aβo puede ser infundido para limitar la difusión de la solución.
Las bombas osmóticas representan un método de entrega conveniente y único para la validación preclínica de agentes diseñados para prevenir la neurodegeneración inducida por Aß. Desde la inmunoterapia con el anticuerpo 6E10 se ha demostrado previamente para disminuir la acumulación de Aß en el cerebro, 31 se utilizó el anticuerpo 6E10 como un concepto de prueba de validar nuestro nuevo enfoque in vivo. El utilizada de bombas osmóticas en este modelo ahora podría utilizarse para desarrollar nuevos tratamientos modificadores de la enfermedad que podrían impedir la deposición y neurotoxicidad de Aβo en pacientes con EA pre-clínicos.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Artificial Cerebrospinal Fluid (aCSF) | Harvard Apparatus | 59-7316 | |
| PE 50 Catheter thin wall | Plastics one | C232CT | |
| Ketamine Hydrochloride (100 mg/ml) | Bioniche | 1989529 | |
| Xylazine Hydrochloride (100 mg/ml) | Bimeda | 8XYL004C | |
| Meloxicam (5 mg/ml) | Norbrook | 215670I01 | |
| Solution of chlorhexidine gluconate 2% and isopropyl alcohol 2% | Carefusion | 260100C | |
| Lidocaine Hydrochloride | Alveda Pharma | 0122AG01 | |
| Bupivacaine Hydrochloride | Hospira | 1559 | |
| ophthalmic ointment | Baussh and Lomb inc. | 2125706 | |
| stereotaxic frame | Stoelting | 51600 | |
| stereotaxic cannula holder arm | Harvard Apparatus | 72-4837 | |
| Drill | Dremel | 8050-N/18 | |
| Guide Cannula | Plastics one | 326OPG/spc | |
| Injection Cannula | Plastics one | C315I/spc | |
| Dummy Cannula | Plastics one | C315DC/spc | |
| Suture thread coated vicryl rapide 4-0 | Ethicon | VR2297 | |
| Dental Acrylic Cement | Harvard Apparatus | 72-6906 | |
| Screws | JI Morris Company | P0090CE125 | |
| 6E10 antibody (mouse IgG1 isotype) | BioLegend | 803003 | |
| Mouse IgG1 isotype control antibody | Abcam | AB18447 | |
| Alzet osmotic pumps model 1007D | Durect corporation | 290 | |
| Isoflurane | Baxter | CA2L9100 | |
| Amyloid-beta 1-42 | rPeptide | A-1163-1 | |
| Hamilton syringe (10 µl) | Fisher Scientique | 14815279 | |
| Infusion Syringe Pump CMA 402 | Harvard Apparatus | CMA8003110 | |
| Syringe 1 ml | BD | 309659 | |
| Needle 21 G | Terumo | NN-2125R | |
| Snuggle | Lomir Biomedical | RTS04 |
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