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Medicine

腹腔镜技术在猕猴肝和肠系膜淋巴结的串行采集

Published: May 2, 2017 doi: 10.3791/55617

Summary

在这里,我们描述了用于在猕猴肝脏和肠系膜淋巴结(MLN)的连续取样,可以增加采样频率,并与执行剖腹时减少了手术并发症的潜力微创腹腔镜技术。

Abstract

的肠系膜淋巴结(MLN)和肝脏暴露于从胃肠(GI)道的微生物和微生物产物,使它们免疫唯一的。胃肠道和相关MLN是人类免疫缺陷病毒(HIV)感染早期病毒复制的站点和MLN是怀有即使经过长时间的抗逆转录病毒疗法(ART)潜伏感染的细胞可能重要的水库遗址。肝脏已经显示出在免疫反应中显著作用,慢病毒,并出现在流通病毒的清除发挥显著作用。非人灵长类动物(NHP)模型,艾滋病毒和获得性免疫缺陷综合征(AIDS)紧密地模仿HIV感染和病毒的复制,并在这个模型中与之相关的免疫应答的原发部位的序列纵向抽样的这些方面将有助于阐明感染的关键事件,发病机制,以及对这些事件的各种干预策略的影响。 CURR耳鼻喉科已公开的技术来样肝和MLN一起涉及重大手术和/或剖检,这限制了调查以串行方式这些重要站点在同一动物的能力。之前我们已经描述的腹腔镜技术用于MLN的集合。在这里,我们描述了通过用于MLN的收集所需的相同的两个端口位置为肝脏和MLN的串行纵向采样微创腹腔镜技术。使用相同的两个端口作为不需要额外切口影响最小的动物。这种技术可以增加采样频率可用于比较大的腹部手术,减少了手术并发症的可能性和相关的可能复杂化结果的解释局部和全身炎症反应。这个过程有潜力促进涉及NHP模型,同时提高动物福利的研究。

Introduction

胃肠(GI)道是人体最大的粘膜表面和暴露于从食品,病原体和内共生细菌群落衍生抗原的无数通常被称为微生物组1,2。肠系膜淋巴结(MLN)排列在胃肠道和是免疫功能的用于促进对这些不同的抗原炎性或致耐受性反应的主要位点。在MLN的物理组织创建了一个隔间系统,可以在本地而不会引起全身反应3抗原反应。同样,血液从胃肠道排至通过门静脉的方式肝脏返回到循环,并因此暴露于从胃肠道易位到固有层和进入血流4的微生物和微生物产品之前。肝还用作二级淋巴器官中一第二有大量免疫细胞,包括专门巨噬细胞,以去除易位微生物5,6。因此,MLN和肝脏是从胃肠道暴露于共生和病原性细菌的主要免疫器官,以及来自其它来源的抗原的环境,使得它们独特和重要的从免疫学的观点。

该MLN是人类免疫缺陷病毒(HIV)或致病性的猴免疫缺陷病毒(SIV)感染的病毒学和免疫效果评价的关键点,并有可能涉及以下直肠挑战SIV的早期传播。肠道淋巴组织被称为是持久的HIV复制的主要场所,尽管现代的抗逆转录病毒治疗(ART)7有效控制病毒血症。在SIV感染模型,MLN已被证明是潜在的病毒的重要水库和可能是主要的贮存器8,9。肝脏也是慢病毒感染重要由SIV特异性CD8 + T细胞在猕猴肝脏的急性SIV感染10在累积所证实。此外,负责从循环11清除病毒的主要器官。

HIV和SIV感染与改变的GI微生物群相关联,打乱GI上皮完整性和增加的微生物和微生物产物的易位从结肠到周边和循环12,13。这些过程与局部和全身免疫激活有关,在HIV感染的个体14增加发病率和死亡率。在SIV感染,易位细菌已经在MLN 15观察到的,而麦克风的积累robial产品在肝脏已显示导致炎症和损害器官16。因此,在HIV和SIV感染的上下文中,MLN和肝可以是用于理解通过GI-常住菌驱动的炎性过程高度信息。

这里,我们提出了用于在非人类灵长类动物(NHP中)的MLN的连续取样和肝脏微创腹腔镜技术。我们证明两个健康雌性恒河猴(RMS)这一技术的成功表现,采样每个动物的两倍,为160天,每个手术间。我们继续使用这些样本来评估并用流式细胞仪检测各器官中比较关键的白细胞和淋巴细胞群体,并展示了两个时间点之间的高度一致的数据。

Protocol

动物饲养和协会照顾实验动物护理的评估和认证国际(AAALACi)认可的设施,并根据华盛顿大学的机构动物护理和使用委员会(IACUC)批准方案进行所有动物程序华盛顿国家灵长类动物研究中心。

1.手术准备,麻醉,和镇痛

  1. 镇静和感应
    1. 稳重猕猴为10mg / kg氯胺酮和0.015毫克/千克美托咪定(组合在一个注射器)肌肉内注射。之前从笼子去除确保无撤退反射的。
    2. 插管的动物,并使用异氟烷维持动物在全身麻醉的平面(1.0 - 2.5%)和100%的氧气。参见关于猕猴17插管全身麻醉进一步的参考信息REF“> 18,19。
  2. 麻醉支持和监控
    1. 插入外周静脉导管和整个麻醉和手术提供以5毫升/公斤/小时的速率静脉内等渗流体(如乳酸林格溶液)。应用无菌眼科润滑剂,以防止角膜干燥。
    2. 提供痛觉缺失,如丁丙诺啡的缓释制剂(0.2毫克/千克,皮下)。
      注意:一个NSAID(如美洛昔康或酮洛芬)也可以恢复麻醉期间提供,条件是该实验的协议允许NSAID给药和该动物是血压正常和麻醉期间充分水合。
    3. 监测麻醉深度( 例如颚音),心脏,呼吸率,EKG,血压,脉搏血氧,呼气末CO 2,和体温整个麻醉和手术。
      注意:当腹部被吹气,动物可能减少通气。提供机械通气如果呼吸率降低,或呼气末二氧化碳水平是高于45个毫米汞柱。
    4. 手术后,管理用于右美托咪逆转阿替美唑(0.15毫克/千克,肌肉注射)。
  3. 手术准备
    1. 执行多个温水灌肠剂,以减少粪便的容积在结肠中过程20期间,以帮助可视化和肠操作。
    2. 拥有一批40片用指甲刀从手术野清除头发。从沿海脊耻骨和从左侧到右侧腹刮胡子。
    3. 在无菌条件下使用合适的防腐剂,例如氯己定交替 - 醇或聚维酮碘的醇制备磨砂手术野。
    4. 在背侧和右侧卧之间的角度中途在其背部上手术台的动物的位置,。用绳子绑在胳膊和腿伸展位置。提供最终chlorhexi用餐和醇制备一旦动物移动到手术室和定位进行手术。

2.手术

注:对于小动物腹腔镜进一步信息,请参见参考文献21。

  1. 腹腔镜仪器准备
    1. 悬垂性用无菌开窗悬垂性动物。
    2. 随着非无菌助手的帮助下,包裹的数码相机与摄像机无菌悬垂性和电缆连接到塔。附加硬性镜的摄像头。
    3. 无菌光电缆连接到所述刚性范围和电缆连接到光源。怀特根据制造商的说明平衡相机。
    4. 装上无菌吹入管的吹入。
  2. 腹腔镜进入
    1. 使用#15手术刀,做一个〜5毫米穿刺切口,通过皮肤的腹部肌肉,应用的深度roximately 1 - 2厘米至肚脐的左侧。
    2. 使用非惯用手,抬起腹壁颅刺切口部位。用优势手,将气腹针的尖端通过切口和角度尖端颅侧。
      注:气腹针的穿透角度会根据动物的身体状况。例如,在一个动物脂肪,气腹针就需要几乎垂直于腹壁插入。在薄的动物,气腹针应当颅成角度,以减少内脏接触的风险。
      1. 保持气腹针的轴(未在轮毂),牢固地将针穿透腹壁进入腹腔。一个明显的“点击”,并作为尖锐尖端穿透腹膜和钝头气腹针弹簧向前进入腹腔降低电阻将被感觉到。
        注意:如果针头适当地传递到日ë腹腔,会有小的阻力,当它是先进的,抽出1 - 2厘米。
    3. 所述CO 2吹入管连接到针和打开活塞。加压腹部不超过10-12毫米汞柱创建气腹。
      注意:腹部已取得理想吹气时,它具有对称扩大,有沿海利润率的正常尖锐轮廓的损失。压力应为插管/套管针的插入足够的空间,而不接触内脏的风险。
  3. 套管定位
    1. 一旦腹部被完全吹入,使〜5 - 用#15解剖刀刀片7毫米的切口通过左侧颅腹部的皮肤的腹部肌肉〜2 - 4厘米尾到最后肋。
    2. 放置一个5毫米的套管针套管组件通过皮肤切口和角它〜45 - 60度caudomedially。穿透腹腔至1-2厘米的深度。 SCRE瓦特螺纹套管到腹部通过转动套管(〜0.5 - 再进行1厘米)到1.5的深度 - 3厘米,并取出套管针。
    3. 拆下气腹针吹入管,关紧旋塞,并取出针。吹入器管路连接到所述套管并且在不超过10打开活塞保持气腹 - 12毫米汞柱。
    4. 通过套管和进入腹腔插入硬性镜。
    5. 在摄像头的可视化,继续做一个小切口,通过在用气腹针插入前面的皮肤切口的腹部肌肉和腹膜#15手术刀刀片。相机用于观察切口的腹部侧,以避免容器和最小化出血。
      注:确保穿过肌肉切口和腹膜足够大,以促进所述探针的进入和外化肠系膜(约0.5厘米)的。较大的切口可被要求exteriorize mesentERY动物过度肠系膜脂肪。
    6. 放置动物在头低脚高位置21与约15升高脚-头30度以上。这是可选的,但允许对结肠的肠系膜淋巴结更容易获得,因为小肠道会移动到一个更颅位置。
  4. 肠系膜淋巴结活检
    1. 下摄像机可视化,通过在步骤2.3.5所作的腹部切口插入固体探针。
    2. 放置网膜和肠之间的探针,并使用一个扫描运动轻轻扫网膜脱肠,以允许下面的肠系膜的可视化。继续使用的清扫运动,从尾至颅腹部。网膜可放置在右颅腹所以它是从术野。
    3. 使用探头向左侧或右侧腹壁移动降结肠。这将支持T的更好的可视化他肠系膜在寻找肠系膜淋巴结,以帮助。
    4. 使用探头通过肠系膜扫来定位沿着结肠和肠系膜血管肠系膜淋巴结。
      注:沿结肠的肠系膜边界运行结肠节点,左结肠节点可以在血管分支点附近发现,和下肠系膜淋巴结可沿肠系膜血管被发现。肠系膜淋巴结是瘦动物容易看到。当埋在肠系膜脂肪他们往往会借给一个略有提高,晶莹的外观上覆肠系膜和可能更多的是更灰棕褐色,然后周围的肠系膜脂肪。此外,肠系膜淋巴结趋向于沿着淋巴管和肠系膜血管所在。
    5. 一旦一个淋巴结被识别,除去探针,并插入马里兰棘轮镊子进入腹腔。使用镊子把握肠系膜相邻目标节点。朝INCI拉肠系膜锡永,并从套管的范围。
    6. 关闭吹入,离开套管旋塞阀开来减压腹部,以促进肠系膜的外化。通过切口拉出体外的肠系膜。一旦外置,掌握具有弯曲蚊止血剂或拇指钳子肠系膜,以确保通过切口访问。
    7. 通过触诊用于更牢固淋巴结和/或灰暗颜色或淋巴结的结节状外观的直接可视化识别形象化肠系膜内的淋巴结(多个)。
      1. 一旦被识别,使一个小开口 - 在使用弯曲止血的节点附近的肠系膜(〜3.5毫米)。免费附件使用钝性分离与弯曲止血肠系膜。结扎用4-0必要非吸收性缝合丝血管。用锋利的解剖用手术刀以除去淋巴结。在广场的Roswell Park纪念研究所(RPMI)1640培养基上的节点冰。
    8. 检查出血的形象化肠系膜。如果出血注意,通过,或通过使用烧灼的闭塞与止血剂或结扎线(4-0不可吸收的单纤维缝合线)的船只提供适当的止血。松开肠系膜和吹气腹部回到10 - 12毫米汞柱,使肠系膜返回到腹腔。
    9. 重复步骤2.4.1至2.4.8以获得附加的淋巴结活检。
  5. 肝活检
    1. 返回表到水平位置。
    2. 将一个带螺纹的套管到腹部通过先前用于淋巴结活检集合(切口在步骤2.3.5。制造)的切口。确保切口足够大(约5 - 7毫米),以允许套管放置而不套管针插入。通过这个插管朝向颅腹腔插入刚性范围和可视化的颅腹部和肝脏。
    3. 下摄像机可视化,插入活检˚F通过套管orceps先前放置在左侧颅腹(切口在步骤2.3.1。制造)。
    4. 为了获得肝活检,放置朝向肝颚的可动部所选择的肝叶余量下方的活检钳,打开钳子,并允许余量落入打开钳口。确保没有大网膜是肝脏和活检钳之间。调节钳子的位置,并关闭仪器在期望的样品区域。
      1. 保持压力为约20 - 30秒,以确保止血。与镊子关闭时,由通过插管轻轻拉动镊子向上取出样品。这会轻轻撕离肝活检。放入RPMI 1640培养基肝活检冰上。
        注:肝活检尺寸为约5毫米×2毫米×2用5毫米活检钳毫米。
    5. 检查活检部位使用相机的可视化出血。如果发现出血,放置盐水moisteneð消毒棉签通过插管和施加压力活检部位。另外,包装用无菌凝胶泡沫的活检部位,以帮助止血。
    6. 重复步骤2.5.3至2.5.5,以获得额外的肝活检。
      注意:在此,收集每过程动物3个活组织检查,这足以对所有下游分析。
  6. 手术闭合
    1. 检查出血的腹腔。
      注意:这还没有发生的日期。然而,如果过度出血注意,确定出血的部位,并通过用无菌棉签或使用凝胶泡沫的压力提供适当的止血。
    2. 关闭注入器并打开插管旋塞。适用于温和的手动压腹部,充分减压腹腔。取出套管。
    3. 与每个站点1至2简单间断缝合关闭每个腹壁切口。建议4-0可吸收线缝合。
    4. 通过局部镇痛皮肤闭合之前放置0.1〜0.3立方厘米布比卡因在每个切口进行溅块。
    5. 关闭皮肤与1 - 每个站点2埋间断缝合(推荐4-0可吸收缝线)。组织胶可以被应用。

3.肝活检处理和淋巴细胞分析

  1. 存储若干片肝组织(大约0.5mm×0.5毫米×0.5mm的尺寸)在冷冻保存管,在优选的RNA存储溶液,和10%福尔马林未来分子和组织学分析。
    1. 放置剩余的肝脏活组织检查中在无菌的250mL塑料杯中用盖子补充有1X青霉素/链霉素,40μg/ mL的可商购的胶原酶溶液中,4微克/毫升DNA酶50毫升的RPMI 1640培养基。剧烈搅拌,使用磁力搅拌棒,在37℃下搅拌板上1个小时。
  2. 均匀地通过倾倒消化的组织分布。 GRIND消化的组织(来自步骤3.1.1)在两个70微米的过滤器装配到2个50毫升锥形管中成使用无菌5毫升的注射器的端部的单细胞悬液。带来两个管的至50mL的体积在补充有10%胎牛血清和1X青霉素/链霉素(R10)1640培养基。
  3. 离心将细胞在840×g下在4℃下6分钟。倒出上清液。通过从在5mL R10两个管悬浮细胞和组合到一个50毫升锥形管中浓缩细胞成一个单一的50mL锥形管中。带来体积使用R10 50毫升。计数使用血球以确定蜂窝产量细胞。
    1. 离心将细胞在840×g下在4℃下6分钟。重悬细胞在1mL R10,均匀地分配到两个5毫升圆底聚苯乙烯试管并且使每个管的体积,以4毫升R10,为> 500,000个细胞每管定位。
  4. 离心将细胞在840×g下在4℃下6分钟。倒出的Supernatant和重悬细胞沉淀于4mL磷酸盐缓冲盐水(PBS)。离心机在840×g下在4℃下6分钟。
  5. 倒出上清液,并通过温和涡旋重悬在100μLPBS中的细胞。添加一个可以解决的死细胞染色的1.5微升。在室温下孵育5分钟。
  6. 添加以下未稀释的表面染色的抗体,由生产商推荐的滴度:CD45-PerCP(克隆D058-1283),CD3-PE-CF594(克隆SP34-2),CD20-PE-Cyanin5(克隆2H7),CD4-BV605(克隆OKT4),CD8-BV570(克隆RPA-T8),以及CD14-BV785(克隆M5E2)。孵育在4℃下20分钟。
  7. 在840×g下添加4毫升PBS中,并离心6分钟,4℃。倒出上清液和重悬细胞于PBS中的1%多聚甲醛的250μL。
    注意:多聚甲醛是有毒的。穿戴合适的个人防护装备。
  8. 在流式细胞仪22参考所描述的分析使用流动细胞群体。

Representative Results

在这些器官中用于腹腔镜收集MLN的处理的详细方法,以及细胞的产率,和白细胞频率之前已经报道13。 图1示出比较MLN细胞产量和活力数据和肝脏活组织检查在两个时间点,从使用这种腹腔镜技术两个健康女性的RM收集隔开160天。我们发现,从所述蜂窝MLN产量比来自肝脏(P = 0.0021)显著更高,分别获得33.5×10 6和6.74×10 6细胞的平均值。通过流式细胞术死细胞染色和分析表明> 90%的来自两个器官中分离的细胞是存活的。

利用流式细胞仪,我们评价和比较在MLN和肝脏中的白细胞和淋巴细胞的丰度。对肝脏的代表性选通方案中被示出+细胞,最后CD3 +细胞的选择。从CD3 +人口,我们评估CD4 +和CD8 + T细胞的丰度,而我们评估从CD3-人群CD14 +和CD20 +细胞的丰度。代表性流式细胞术图,显示在第0天及160天CD45 +和从MLN CD3 +人群和这两种动物的肝脏显示于图3,图4示出了用于两种动物的两个采样白细胞和淋巴细胞的丰度。的MLN显示CD45 +细胞的显著更高的丰度比没有肝(平均76.9%和活细胞,分别7.66%,P = 0.0002)。毫不奇怪,MLN显示CD3 + T细胞的显著较高比例(P0; 0.0001)和CD4 + T细胞(P = 0.0004)。相反地,将肝脏显著富集了CD14 +白细胞相比,MLN(P = 0.0036)。该MLN表现出较高的平均CD8 + T细胞,但这并不显著。出人意料的是,对于这两种动物都表现出器官CD20 + B细胞的类似丰度。蜂窝产量和从MLN不同的白细胞和淋巴细胞亚群的丰度在这项研究证实了先前的报告值23。

图1
图1.总细胞产率(顶部)和细胞活力(底部)从串行收集MLN和肝活检组织。该MLN表现出显著高于细胞产量比没有肝脏。然而,这两种类型的样品提供了充足的细胞下游分析。细胞活力,通过流式细胞测量cytometrically使用可固定死细胞染色胺,表明,两种类型的样品典型地产生了组织离解后> 90%的细胞生存力。误差棒代表样本之间的标准偏差。 请点击此处查看该图的放大版本。

图2
图2.代表性的流式细胞仪门控策略。首先,聚集的细胞用可固定死细胞染色胺染色后排除,随后唯一可行的细胞的选择。接着,选择的CD45 +白细胞,随后CD3 + T细胞的选择。从CD3 +人口,CD4 +和CD8 + T细胞进行了分析。从CD3 -人口,CD14 +和CD20 +细胞进行分析。氏小号门控策略也用于万。 请点击此处查看该图的放大版本。

图3
图3.从MLN和两只动物肝纵向流式细胞仪情节。 MLN和肝脏标本采集间隔160天两种动物。 (A)。 MLN CD45 +细胞(白细胞); (B)肝CD45 +细胞(白细胞); (C)MLN + CD3 +细胞(T细胞); (D)肝的CD3 +细胞(T细胞)。对于这两种动物的MLN表明CD45 +和CD3 +细胞的比例较高相比肝脏。星移斗转,这些人群的频率分别为这两种动物类似。S / ftp_upload / 55617 / 55617fig3large.jpg”目标=‘_空白’>点击此处查看该图的放大版本。

图4
图4. CD45 +细胞(左)的频率和不同的白细胞和淋巴细胞亚群(右)23个对面单独的取样。所述MLNS显示CD45 +,CD3 +,和CD4 +细胞的显著更大的频率,而肝显示CD14 +白细胞显著更大的频率,这表明每个器官的独特功能。误差棒代表样本之间的标准偏差。 请点击此处查看该图的放大版本。

Discussion

这里,我们证明了MLN的串行收集和肝活检微创技术,曾在本研究中没有描述这些和其他动物100%的成功率。此外,跨时间对同一动物使用这种技术还没有与任何不良事件。事实上,已经有因使用这一技术在动物体内的其他同伙感染了SIV,猿/人类免疫缺陷病毒(SHIV),或兹卡病毒(未公布数据)而导致的任何并发症。同样,这种手术甚至在曾接受腹部大手术,动物和动物的血小板(未公布数据)证明是成功的。我们证明,这些样品可以通过相同的两个端口通过倒车摄像头的位置,距离MLN切换到肝脏,避免额外的切口需要时收集。影响MLN收集因素已有报道13。

整个过程通常需要30 - 45分钟来完成,并通过2〜0.5厘米切口来完成的。在肥胖动物,可能有必要使一个较大的切口(〜1 - 1.5厘米),以检索MLN通过,并且可能需要额外的时间来完成。具有丰富的肠系膜脂肪的动物常常需要到D显著经验从周围的脂肪ifferentiate万。 MLN往往沿肠系膜血管中发现,似乎是在附近的血管分支点更为普遍。这种技术的一个重要方面是,它要求所选择的MLN具有足够的流动性在肠系膜通过腹部切口被外置。其结果是,该技术不能被用来收集MLN靠近肠系膜根部。由于放大,它是有时容易与摄像头,以确定MLN,并在靠近抓的MLN可以定位和识别节点一旦外置帮助。

在头低脚高位的使用可能并不总是需要MLN集合,如果MLN可在不使用的头低脚高位轻松地检索它能使肝活检更容易,因为它会阻止器官从头侧转移。有时,在头低脚高位放置后,肝脏上移向膜和绝轻轻地操纵回活检前收集位置。作为MLN采集端口的位置是在左边,肝脏活组织检查典型地从左侧横向和左内侧肝叶作为它们更接近插管。

收集MLN和肝脏活组织检查提供充足的细胞产量为各种下游分析的,并显示所收集的细胞的高生存力。在这里,细胞进行染色白细胞和淋巴细胞群的流式细胞仪分析,这两个重要的免疫器官之间的主要差异,阐明。例如,MLN高度富集为相比于肝CD4 + T细胞,由于MLN作为用于收集和传播适应性免疫应答,以及对CD4 + T的重要性中心点的重要性用于管理炎性和到环境致耐受性抗原的响应从饮食中摄取和GI-驻留微生物的S = “外部参照”> 24。然而,肝显著富集CD14 +白细胞相比万。 CD14主要表达在单核细胞和巨噬细胞,并且是受体复合物对细菌脂多糖(LPS)25的一个关键组成部分。实际上,增加了可溶性CD14的血浆浓度与微生物移位和在HIV免疫激活和病原感染SIV 26相关联。因此,相比于当MLN在肝脏中CD14 +白细胞较高频率可能在从该器官更大的细菌负荷的结果。

这里,我们证明了MLN的串行收集和使用只有两种腹腔镜条目并没有导致任何不良后果的小切口肝活检快速,微创手术技术。这些样品提供了一个有用的途径,以评估采取解放军关键免疫,病毒学,和微生物方法CE在MLN和肝脏,这是从系统免疫单独且唯一的。类似地,肝脏活组织检查是用于HIV / SIV,药物疗法,和易位微生物的作用,这常常结合诱导显著肝损伤16长期评价是至关重要的。此外,由于MLN和肝脏暴露于GI微生物免疫器官的能力,以评估跨越时间在这些器官的免疫提供了理解的是,微生物在维持机体免疫稳态中扮演的角色一个很好的平台。总之,肝脏的评价和MLN是非常重要的疫苗和治疗疗效,SIV病毒清除水库,和一般的粘膜免疫的情况下。通过微创方法来收集这些样品的能力意味着存在与比目前公布的技术和对动物的生理影响较小存在的程序炎症的风险。在福TURE,我们将评估潜在的通过相同的两个端口位置,以MLN的收集和肝与脾的收集相结合,以便对已被证明在发挥显著作用,对免疫系统的另一个重要的不同部分的采样许多疾病模型。

Disclosures

作者宣称没有竞争的经济利益。

Acknowledgments

这项工作是由美国国立卫生研究院授权号P51OD010425支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Artficial Tears Lubricant Ophthalmic Ointment Patterson Veterinary 97-890-8152
Priority Care Chlorhexidine 2% Scrub Patterson Veterinary 07-842-6153
Vedco Alcohol, Isopropyl 70% Patterson Veterinary 07-869-6434
Vedco Vetadine Scrub Patterson Veterinary 07-869-6772
Hospira Lactated Ringer's 250 mL Patterson Veterinary 07-800-9325
Adolescent Laparotomy Surgical Drape Medline DYNJP3004
Access 40 L Insufflator Dyonics 7205832
300XL Xenon Light Source Dyonics 7206084
460P 3 – CCD Digital Camera with Head Dyonics 72200086
Universal Camera Drape, 7” x 96” Endoscopy Support Services ESS-6920
Universal Light Guide, 7.5 Ft Endoscopy Support Services US.OU225
Insufflator Tubing Endoscopy Support Services TM-102
Multipurpose Rigid Scope, 2.7 mm x 187.5 mm, 0 degree Endoscopy Support Services B30-0007-00
Exam and Protective Sheath for 2.7 mm x 187.5 mm scope with one fixed stopcock Endoscopy Support Services B10-0025-00
Rigid scope, 5 mm x 300 mm Endoscopy Support Services B30-0071-00
Veress Needle, 2 mm x 80 mm  Endoscopy Support Services 8302.08
Solid Probe with Markings, 5 mm x 320 mm Endoscopy Support Services 8383.661
Maryland Grasping and Dissecting Forceps with Double Action Ratchet Handle, 3.5 mm x 240 mm   Endoscopy Support Services 8390.2054
Biopsy Forceps, 3.5 mm x 310 mm R. Wolf 8391.4063
Plastic Threaded Cannula with Insufflator Port, 3.5 mm x 60 mm Endoscopy Support Services 8903.072
Plastic Threaded Cannula with Insufflator Port, 5.5 mm x 60 mm Endoscopy Support Services 8919.333
Blunt Tip Trocar Endoscopy Support Services 8903.101
Pyramidal Tip Trocar Endoscopy Support Services 8903.121
CO2 Airgas CD USPE
RPMI 1640 Fisher Scientific SH30027FS with L-Glutamine
RNAlater Stabilization Solution ThermoFisher Scientific AM7021
Penicillin-Streptomycin Sigma Aldrich P4333
Liberase TM Research Grade Sigma Aldrich 5401119001 Commercially available colleganse solution
Dnase I from bovine pancrease Sigma Aldrich D5025
70 µm cell strainers Morganville Scientific CSS0200
5 mL Syringe BD 309646
50 mL Conical Centrifuge Tubes ThermoFisher Scientific 339652
Fetal Bovine Serum Fisher Scientific SH3007003
5 mL Round-Bottom polystyrene tubes Fisher Scientific 14-959A
PBS Fisher Scientific SH3025601
LIVE/DEAD Aqua Fixable Dead Cell Stain Kit ThermoFisher Scientific L34957 Amine dead cell stain
CD45-PerCP (clone D058-1283) BD Biosciences 558411
PE-CF594 Mouse anti-Hu CD3 (clone SP34-2) BD Biosciences 562406
BV605 Mouse Anti-Hu CD4 (clone OKT4) Biolegend 317438
APC-H7 Mouse anti-Hu CD8 (clone SK1) BD Biosciences 560179
PE-Cy5 Mouse Anti-Hu CD20 (clone 2H7) BD Biosciences 555624
BV786 Mouse Anti-Hu CD14 (clone M5E2) BD Biosciences 563698
16% PARAFORMALDEHYDE AQ SOLUTN Fisher Scientific 50-980-487
LSR II Flow Cytometer BD NA

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医学,第123,肠系膜,淋巴结,肝,肝脏,猕猴,腹腔镜,腹腔镜检查,细化,微创,SIV,HIV
腹腔镜技术在猕猴肝和肠系膜淋巴结的串行采集
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Zevin, A. S., Moats, C., May, D.,More

Zevin, A. S., Moats, C., May, D., Wangari, S., Miller, C., Ahrens, J., Iwayama, N., Brown, M., Bratt, D., Klatt, N. R., Smedley, J. Laparoscopic Technique for Serial Collection of Liver and Mesenteric Lymph Nodes in Macaques. J. Vis. Exp. (123), e55617, doi:10.3791/55617 (2017).

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