Summary
세부 사항에 microglial 함수를 이해 하는 노력 microglia 성숙한 vivo에서 속성 정리 microglial 문화 모델의 부족에 의해 방해 되어 있다. 이 프로토콜 정의 매체 조건 하에서 높은 없는 성숙한 쥐 microglia의 강력한 생존을 유지 하기 위해 설계 된 절연과 문화 접근을 설명 합니다.
Abstract
Microglia 모든 중앙 신경 시스템 (CNS) 세포의 5-10%를 대표 하 고는 점점 더 주목 그들의 공헌으로 인해 개발, 항상성, 및 질병. 세포 연구 세부에 십 년간, microglia의 특수 기능, CNS의 주민 조직 대 식 세포, 비록 성숙 microglial를 정리 하는 능력에서 제한 때문에 부분에서 크게 신비 남아 있다 문화에서 속성입니다. 여기, 우리는 성숙한 쥐 두뇌에서 순수한 microglia의 신속한 격리에 대 한 간단한 절차를 보여 줍니다. 우리는 또한 시간이 지남에 microglial 생존 능력의 높은 수준을 지 원하는 혈 청 무료 문화 조건을 설명 합니다. 이 정의 매체 조건 하에서 경작 Microglia 전시 정교한 없는 프로세스와 동적 감시 동작. 우리는 교양된 microglia에 혈 청 노출의 일부 효과 설명 하 고 이러한 혈 청 무료 문화 microglia 시내 vivo으로 혈 청 노출 문화 모두를 비교 하는 방법에 대해.
Introduction
CNS 실질의 대 식 세포로 microglia 신경 회로 폐해 신호 네트워크의 광대 한 배열을 상호 작용 합니다. 그들은 개발 및 시 냅 스의 가지 치기, apoptotic 세포 클리어런스 및 신경 프로세스1,2과도 상호 작용을 통해 뇌의 항상 성에 중요 한 역할. Microglia는 선 동적인 응답을 조정 및 제한 출혈3,4병 변 사이트에 그들의 길고, 얇은 프로세스를 확장 하는 신경 상해에 초기 응답자. Microglial 형태 및 기능에 변화는 급성 및 만성 CNS 상해에 유비 쿼터 스와 microglia 전시 변경 형태학, 지역화, 그리고 다양 한 질병 상태1에 염증 성 중재자의 표현. 인간 유전자 연구는 신경 퇴행 성 질환에 대 한 위험을 변경 하는 돌연변이 종종 주로 또는 독점적으로 표현 microglia microglia 질병 병 인 또는 진행5에 대 한 중요 한 역할을 가리키는 그대로 CNS에 의해 나타냅니다. . 상해 및 질병에 그들의 굴지를 감안할 때, 새로운 치료 접근을 개발 하기 위한 높은 우선 순위는 microglial 생물학의 이해 발전.
Microglial 생물학의 이해에 많은 중요 한 발전 기술과 문화 방법, 기능 정의 진 식 프로필, 등 다른 대 식 세포 인구의 학문에서 발견 하는 메커니즘을 바탕으로 발현 형태 / 상태. 대 식 세포 기능 CNS 풍경 내 놀라운 방법으로 자주 연주 일반화 microglia 스스로 매우 전문, 전시는 없는 형태 그리고 다른 조직 들을 차별 하는 독특한 유전자 식 서명 대 식 세포6. Microglia는 혈통은 다른 대부분의 다른 조직 대 식 세포; 그들은 원시 조의 초기 배아 파도 동안 CNS 식민지 하 고 자기 인생에 걸쳐, 최종 조7에서 기여의 독립 갱신. 성인 microglia의 완전히 성숙한 진 식 서명 하지 두 번째 출생 후 주8까지 이루어집니다. 주위 조직에서 환경 신호 특정 조직 대 식 세포 기능6, CNS에서 포함 하는 혈액-뇌 장벽9에 의해 부여 된 혈액 부담 요인에 제한 노출을 지시에 주요 역할을 한다.
완전히 microglial 기여 CNS 항상성 및 질병을 이해 하는 데 하나의 장애물은 업과 성숙한 microglia 본 비보에 순화 된 세포의 특수 속성의 어려움 생체 외에서. 많은 방법은 격리 하기 위해 개발 되었습니다 그리고 세포 생존을 지원 하기 위해 혈 청에 의존 하는 문화 그대로 microglia, 하지만 대부분의 방식. 우리는 본질적으로 가변 시 생리 활성 분자의 광대 한 배열을 포함 하는, 특히 문제가 microglia 작업 amoeboid 형태학 촉진 하기 때문에 증가 확산, 혈 청의 그 추가 나타났습니다 그리고 microglia 혈액-뇌 장벽 파괴 후 요소를 부담 하는 혈액에 노출 되 면 증가 먹어서9 vivo에서 수시로 보인다. 이 통계에 의해 혈 청 노출 셀 부상이 나 질병 상태, microglia 비슷하지만 이러한 변경 감소 때 microglia CSF-1 (또는 IL-34)를 포함 하는 정의 된 성장 매체, TGF-β, 콜레스테롤, 및 selenite 교양.
이 프로토콜 조건 하에서 혈 청 무료, 최근에 출판 된 작품9관련 청소년 쥐 microglia 경작에 대 한 세부 정보를 제공 합니다. 이 프로토콜에서 출생 후 하루 21-30 (P21-P30), 쥐를 간소화 하지만 수율과 전반적인 생존 종 및 동물의 나이 따라 달라 집니다 하지만 microglia 쥐 및 쥐의 모든 나이에서 분리를 적용할 수 있습니다. 최대한 하 고 최적의 생존 때 약간 미 숙 microglia를 사용 하 여 얻을 수 있다 (~ P9), 수율 및 점차적으로 성인 동물에 있는 저수준에 다소 가늘게 생존. Microglia 또한 마우스에서 격리 될 수 있습니다 하지만 우리는 쥐 세포 보여 상당히 높은 수익률, 생존, 그리고 없는 형태학의 복잡성 마우스 셀 세럼 무료 문화에 비교 될 때 나타났습니다. 동물 세 P50 보다 큰이 프로토콜 평가 되지 않았습니다. 이 immunopanning 격리 절차는 격리 하는 동안 microglial transcriptional 프로필에 변화를 최소화 하 고 셀의 다운스트림 생존 능력을 극대화 하기 위해 최적화 되었습니다. 이러한 기술과 미디어 공식 사용, 높은 생존 능력 주 문화는 주에 대 한 지속 수 있습니다. 이러한 조건 하에서 경작 Microglia 급속 한 확장 및 프로세스의 철회와 관련 된 매우 없는 형태를 전시 하 고 상대적으로 낮은 확산의 속도. 우리는 이러한 속성에 대 한 혈 청 노출의 중요성을 강조 하 고 힘과 다른 접근에 상대적으로이 방법의 약점을 토론.
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Protocol
설치류와 관련 된 모든 절차 스탠포드 대학 지침, 국가 및 국가 법률 및 정책 준수에 맞 췄 나. 모든 동물 절차는 실험실 동물 관리에 스탠포드 대학의 행정 패널에 의해 승인 되었다.
참고: 모든 솔루션 및 버퍼 구성 재료의 테이블에에서 제공 됩니다.
1. CD11b Immunopanning (하루 0)에 대 한 페 트리 접시를 준비
참고: 모든 1-2 청소년 쥐 두뇌에 대 한 1 immunopanning 접시를 준비 합니다.
- 15 cm 배양 접시를 50 mM Tris pH 9.5 솔루션의 25 mL를 추가 합니다.
- 6 µ g/mL의 최종 농도 대 한 접시에 염소 반대로 마우스 IgG (체인 H + L)를 추가 합니다. 균일 하 게 배포 플레이트를 소용돌이 친다.
- 1-3 h 37 ° c.에 대 한 접시를 품 어
- 린스 요리 세 번 DPBS+ + (인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS) 캘리포니아2 + 그리고 마그네슘2 +), 다음 1 µ g/mL OX42 항 체를 포함 하는 버퍼를 패닝의 솔루션 바꿉니다. 평평한 표면에 실 온에서 하룻밤 요리를 둡니다.
2. 조직 컬렉션 (1 일)
참고:이 프로토콜은 3 ~ 4 h 소요 됩니다.
- 시작 하기 전에, 모든 솔루션은 살 균 및 냉장 얼음에 확인 합니다. 얼음에 모든 악기를 진정 하 고 에탄올을 사용 하기 전에 소독.
- 적절 한 규제 절차에 따라 이산화탄소 질 식에 의해 청소년 실험실 쥐를 희생.
참고: 또는, 젊은 동물 수 희생 케 타 민/xylazine (100-200 µ L 24 mg/mL의 마 취 제, 2.4 mg/mL xylazine)의 치명적인 복용량. 케 타 민/xylazine 동물 14 일 미만 경우 사용 되어야 한다. 여러 동물을 사용 하 여, 하나의 동물에서 조직을 추출 하 고 이후 동물에 진행 하기 전에 얼음에 미리 냉장된 DPBS+ + 에 배치. - 핀치는 hindpaw 하 고 진행 하기 전에 동물에서 완전 한 응답을 확인 합니다.
- Transcardially perfuse 버퍼 실행 취소 될 때까지 27½-G 바늘을 사용 하 여 차가운 관류 버퍼의 10-30 mL를 가진 동물.
참고: 볼륨 관류 버퍼의 동물의 크기/나이 따라 달라 집니다. - 재 관류 후 즉시 동물의 머리를 제거 합니다. 해 부가 위, 양쪽에 후 두 관절 돌기를 잘라 척수에서 오는 될 두뇌를 손상 하지 않도록 주의 하십시오. 각 측면을 신중 하 게 절단 후 정수 리와 코 뼈를 향해 정면 뼈를 따라 한쪽을 잘라. 집게와 함께 신중 하 게 두개골의 상단을 다시 세우고, 신속 하 게 뇌 (또는 관심의 CNS 구조), 제거 고 미리 냉장된 DPBS+ + 얼음에 합니다.
- 모든 나머지 동물에 대 한 반복 합니다.
참고: 모든 진행 단계는 적절 한 무 균 조건 하에서 층 류 후드에서 수행 되어야 합니다.
3. 기계적 분리 (1 일)
- 모든 두뇌가 수집 하 고, 차가운 메스 블레이드, 얼음에 페 트리 접시에 1 m m3 덩어리로 한 뇌를 잘라 고 5-7 mL 차가운 douncing 버퍼와 얼음 dounce 균질 화기를 전송. 한 번에 하나의 뇌를 분리.
- 느슨한-피팅 dounce 균질 화기와 10-20 부드럽고 불완전 한 스트로크를 사용 하 여 조직의 해리 알아서 하지 직접 분쇄, 균질 화기의 하단에 조직 하지만 대신 억지로 피스톤의 측면과 균질 화기 사이 공간을 통해 조직.
- 조심 스럽게 기포의 소개를 방지 하기 위해 피스톤을 제거. 제대로 끊된 조직 덩어리, 균질 화기의 바닥에 정착 하 고 상쾌한 새로운 냉장된 50 mL 원뿔 튜브에 전송.
- 신선한 douncing 버퍼에 제거 된 볼륨을 바꿉니다 고 3-4 라운드, 또는 모든 조직의 해리 되었습니다 때까지 총 3.2 및 3.3 단계를 반복 합니다. 각 두뇌에 대 한 절차를 반복 합니다.
4. 수 초 제거 (1 일)
참고: 수 초 제거 microglia P12 보다 더 오래 된 동물에서의 절연을 위해 사용 됩니다.
- 25 mL 피 펫을 사용 하 여 50 mL 원뿔 튜브에 세포 현 탁 액을의 볼륨 측정 다음 33.5 ml 전체 볼륨을 조정 하려면 얼음 douncing 버퍼를 추가 합니다.
- 세포 현 탁 액을 혼합 수 초 분리 버퍼 (MSB)의 10 mL 추가 철저 하 게 여러 번 튜브를 거꾸로 하 여. 이 43.5 mL의 볼륨에 MSB의 23% 최종 농도 발생 합니다.
- 셀 느린 제동 4 ° C에서 500 x g에서 15 분 동안 원심
참고:는 원심 분리기 감속을 약 1.5-2 분 소요 됩니다. 이 myelin 및 죽은 세포 파편, 다소 어두운 상쾌한, 그리고 라이브 셀에 대 한 풍부 하 게 더 작은 펠 릿의 상위 계층을 생성 합니다. - 수 초/파편과는 피 펫과 상쾌한의 상위 레이어를 제거 합니다. 그것의 다량은 가능한 제거를 보장 하기 위해 상위 계층을 분리할 때 주의 합니다.
- 버퍼를 패닝의 12 mL에서 셀 펠 릿을 resuspend. 부드럽게 헤어 셀 수 있는 어떤 덩어리 셀 서 스 펜 션 triturate.
5입니다. Immunopanning (1 일)
- 70 µ m 셀 거르는 큰 파편 또는 셀 덩어리 제거를 통해 세포 현 탁 액을 전달 합니다.
- 세 번 DPBS+ +와 OX42 코팅 패닝 접시를 헹 구 십시오. 접시를 허용 하지 않습니다 완전히 건조 세척 사이.
- 마지막 DPBS+ + 세척을 부 어와 패닝 접시에 필터링 된 셀 서 스 펜 션 적용. 부드럽게 셀, 배포 접시 소용돌이 다음 준수를 셀 수 있도록 20 분 동안 실 온에서 평평한 표면에 접시를 품 어. 20 분 이상 품 어 하지 마십시오 또는 셀 매우 어려운 요리에서 복구 될 것 이다.
- 비 부착 한 세포를 제거 하 DPBS+ + 와 함께 패닝 접시 10 번을 씻어. Microglia 됩니다 그래서 다른 비 부착 한 세포의 제거를 보장 하기 위해 각 린스 접시 소용돌이 플레이트에 단단히 고정 되어.
- 마지막 DPBS+ + 세척을 부 어와 15 mL DPBS+ + 와 200 μ 트립 신 (1.25% 재고 솔루션)을 바꿉니다.
- 10% CO2 trypsinize를 37 ° C에서 ≤ 10 분 요리를 품 어.
참고: 10 분 이상 계속 하지 마십시오 또는 microglia 제거 하기 어려운 될 것 이다. - Trypsinization의 10 분 후 microglia 여전히 접시에 붙어 있을 것입니다. 트립 신/DPBS+ + 를 부 어와 부드럽게 씻어 트립 신을 제거, 얼음 처럼 차가운 microglia 성장 매체 (MGM)의 12 mL 바꿉니다 DPBS+ + 2 x.
- 셀/기판 상호 작용을 약하게 하 고 접시를 확인 데 접시 2 분 동안 얼음에 이동 하는 장소는 패닝 접시의 영역 밖으로 건조 하지 않도록 플랫.
- 10 mL 피 펫 및 피펫으로 컨트롤러와 고속 패닝 접시에서 세포를 회복 하기 위해 적극적으로 플라스틱. 시도 하 고 모든 셀을 제거 피 펫에서 액체의 흐름으로 16 × 16 그리드를 그립니다.
- 세포는 접시에서 분리 되도록 20 배 확대에 현미경으로 세포를 확인 합니다. 어디 셀 여전히 붙어 접시 위에 마크 명소 그리고 그 지역에 pipetting 반복.
- 셀 서 스 펜션과 15 mL 원뿔 튜브 당 상쾌한의 aliquot 3-4 mL를 수집 합니다. 천천히 브레이크와 4 ° C에서 500 x g에서 15 분 회전 합니다.
참고: 회전 하는 작은 볼륨을 통해 microglia 셀의 최대 복구 할 수 있습니다. - 셀 펠 릿으로 MGM의 0.5 mL를 떠나 상쾌한 발음
- 나머지 MGM에서 각 펠 릿을 resuspend 하 고 모든 튜브에서 셀 수영장.
- Hemocytometer 셀을 계산 합니다.
- 6 단계-응용 프로그램에 따라 7에에서 설명 된 대로 세포를 플레이트.
- 10% CO2와 37 ° C에 문화 세포.
참고: 셀 일반 미디어 변경 최대 3-4 주 또는 미디어 변경 없이 1 주일에 대 한 문화를 수 있습니다.
6. 현장 조직 문화 접시/Coverslips (주 1) 코팅
- 24 잘 음이온/양이온 코팅된 조직 문화 접시의 중앙에 직접 콜라겐 IV 코팅의 15 µ L 플레이트 (대 한 자세한 내용은 테이블의 자료 를 참조) 및 10% CO2와 37 ° C에서 15 분 동안 품 어.
- 후에 MGM에 105/mL x 2.3 hemocytometer 희석 셀과 셀을 카운트. 콜라겐 4 자리를 하 고 즉시이 자리;에 세포 현 탁 액의 접시 15 µ L 발음 이 3.5 x 103 셀/자리를 줄 것 이다. 품 어 준수,의 CO2-500 µ L equilibrated TGF-β2/IL-34/콜레스테롤 포함 성장 매체 (TIC) 추가 셀 수 있도록 10% CO2 와 37 ° C에서 5-10 분 동안 부드럽게 잘 하.
- Coverslips, 10 µ g/mL 계략-D-라이 신 (PDL) H2O에서 RT, 1 시간에 대 한 첫 번째 코트 불 임 유리 coverslips에 도금 하는 경우 H2O, 3 번 세척 하 고 후드 UV 빛의 밑에 건조 하자. Coverslips는 건조, 일단은 coverslips에 자리 도금 단계 6.2에서 설명 된 대로 진행.
7. RNA/단백질 격리 도금
- 하루에 1, 코트는 24-잘 음이온/양이온의 전체 영역 콜라겐 IV 코팅 조직 배양 플레이트를 코팅에 대 일 분-1 시간 10% CO2, 37 ° c를 품 어 다음 제거 하 고 즉시 접시 3-5 x 104 셀/CO2 잘 equilibrated TIC 미디어입니다.
- 2 일에 수행 50% 미디어 변화를 각각에 대 한 준비 후 잘 날. 우물의 센터에서 클러스터, 그래서 미디어 거기에서 죽은 세포에 의하여 경향이 있다.
- 문화를 유지 하기 위해 50% 미디어 변화 2-3 일 마다 수행 합니다. 미디어 변경 문화에 대 한 원치 않는 변수, 소개 셀 미디어 변경, 정기적인 유지 보수와 함께 3 주 이상 반대 없이 대략 1 주 동안 살아남을 수 있습니다.
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Representative Results
이 프로토콜 젊은 쥐에서 문화 고 순도 ramified microglia를 방법을 설명합니다. 비슷한 결과 얻어질 수 있다, 주 미 숙 하 고 성인 동물을 사용 하 여 아래 설명 된 대로. 셀 격리는 종종 미묘한 뉘앙스와 죽을 셀에 대 한 많은 기회를 포함, 우리는 다양 한 단계에서 성공을 확인 하는 데 품질 관리 검사점을 사용. 우리는 일반적으로 셀 정지는 hemocytometer를 사용 하 여 격리 프로토콜 (그림 1A)의 여러 단계에서 모니터링 합니다. 성공적인 격리 2.5-5 105 셀/청소년 동물 배를 양보 한다. P7-P15에서에서 동물 반면 P30 보다 더 오래 된 동물에서 분리 된 세포 가까이 105 세포/동물 x 2.5 수익률 105 세포/동물, x 5에 가까운 수익률을 보여줍니다. 총 셀 모니터링 넘어 프로토콜을 통해 건의 그것은 microglia 이와에서 고립 된 문화에 처음 몇 일 동안 둥근 또는 바이 폴라 형태를가지고 있기 때문에 어려울 수 있는 격리 된 셀의 전반적인 상태를 결정 하는 것이 중요 . 여기, 우리 콩에 콩 알 10% 태아 종 아리 혈 청 (FCS) (그림 1B)를 포함 하는 격리 후 처음 6 일 동안 문화에 P25 microglia의 단계 이미지를 포함 했다.
그림 1: 격리 프로토콜 및 문화의 6 일 이상 세포 건강의 평가. (A) 위상 대조 이미지 셀 격리 절차의 지정 된 단계에서 보여주는 품질 관리 검사점. 세포 현 탁 액의 0.4 %trypan 블루는 hemocytometer에 로드 하기 전에 1 µ L로 세포 현 탁 액의 9 µ L를 혼합 하 여 몇 군데 있었다. 다른 이미지 보기 패닝 접시 자체, 그리고 모든 이미지는 20 배 확대에 하나의 필드로 표시 됩니다. 눈금 막대, 200 µ m. MGM, microglia 성장 매체. (B) microglial 형태학 상 변화와 확산 문화 혈 청 무료 TIC 성장 매체 또는 TIC 플러스 10% 태아 종 아리 혈 청 (FCS)에서 6 일 동안 시간 코스. CD11b-immunopanned 셀 자리 콜라겐 코팅 음이온/양이온 코팅된 조직 문화 접시에 도금 했다 (자세한 내용은 테이블의 자료 를 참조 하십시오)와 같은 분야는 단계 대조 바, 100 µ m. 틱, TGF-β2/IL-34 모든 24 h. 규모에 의해 몇 군데 / 콜레스테롤 포함 성장 매체입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
건강의 일상적인 평가 고립 된 세포의 생존 능력은 재현성 및 실험의 성공을 위해 중요 합니다. 여기 우리가 microglia MGM, 틱, 또는 TIC 7 일 후 체 외에서 (DIV) 생존 분석 결과 함께 10 %fcs 보충 교양된 P21 동물에서 분리 된 보여줍니다. 그러나 고립 된 문화 콩이 인위적으로의 급속 한 확산에 의해 모두 비정상적 이다 결국 혈 청의 존재 양식 7 팀 셀 근처 100% 생존 능력의 측정, 등반 후에 80-90% 생존 사이 표시 혈 청에 노출 된 세포와이 문화 (그림 2A)에서 죽은 세포의 급속 한 먹어서. 강력한 생존 뿐만 아니라 TIC 배양 세포는 또한 표시 FCS에 비교 될 때 없는 형태 치료 세포 (그림 2B, C).
그림 2: 생존 microglia MGM, 콩 또는 콩 + FCS의 문화에 7 일 동안. (A) 전지와 P21 쥐에서 고립 되었다 microglia 성장 매체 (MGM), TGF-β2/IL-34/콜레스테롤 포함 성장 매체 (TIC), 또는 틱 + 10% 태아 종 아리 혈 청 (FCS)에서 경작. 각 시간 지점에서 문화 매체 calcein 오전 (최종 1.33 µ M) 및 브로민 homodimer (최종 2.5 µ M) 15 분 각각 살아있는 세포와 죽은 세포를 보충 되었다. 셀 자동된 ImageJ 스크립트를 사용 하 여 각 필드에 포함 되었습니다. (B 와 C) 7 DIV 후 미디어 변경 없이 세포에서 자란된 TIC (B) 또는 fcs (C)가 10% 보충 TIC 위와 같이 라이브 하 고 죽은 세포를 얼룩이 했다. 대표 이미지를 10 배 (왼쪽) 또는 40 X (오른쪽) 목표를 사용 하 여 찍은 사진. 눈금 막대, 40 µ m. 오차 막대는 평균 (SEM)의 표준 오차를 나타냅니다. 이 그림에서 Bohlen 그 외 수정 된 9 허가 함께 사용. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
성공적인 격리 및 매우 순수한 microglia의 문화를 설명 하기 위하여 우리 microglia P21 쥐에서 분리 하 고 TIC 또는 8 일에 대 한 fcs가 10% 보충 TIC에서이 세포를 배양. 셀 고정 그리고 microglial 마커 (Iba 1 및 CD11b) 및 확산 마커 (Ki67, 그림 3A)으로 물 했다. 셀 표식에 대 한 얼룩을 더하여 RNA-seq 갓 고립 된 세포에는 세포의 RNA 프로 파일을 평가 하기 위한 강력 하 고 중요 한 도구를 제공 하는 수 고 문화의 시작 순도 알려 하는 것을 도울 수 있다. CD11b immunopanning CD11b의 작은 비율에 일반적으로 결과+ CD11b 외 호 중구/monocyte carryover+ microglia (그림 3B). 이 셀 틱에서 몇 일 후에 죽을 것 이다 하지만 이전 시간 포인트의 분석을 복잡 하 게 수 있습니다.
그림 3: immunohistochemistry와 RNA이 사정으로 배양된 세포의 순도 (A) Microglia P21 쥐, PDL/콜라겐 코팅 유리 coverslips에 도금 및 TGF-β2/IL-34/콜레스테롤 포함 성장 매체 (TIC)에서 8 일 동안 배양에서 고립 되었다. 셀 4 %paraformaldehyde (PFA) 실 온에서 10 분으로 고정 되었고 면역 스테인드 Iba-1 (1: 500), CD11b (1:1500), 그리고 Ki67 (1: 500). 간단히, 고정된 셀 0.1% 세제로 차단 되었습니다 (자세한 내용은 방법 표 참조) 및 10% 정상 당나귀 세럼 (NGS) 실 온에서 1 h. 셀은 다음 NGS 4 ° c.에서 하룻밤 1%와 0.1% 세제에 1 차 항 체와 인 큐베이 팅 세포는 PBS에 각 5 분에 대 한 세 번 세척 했다. 셀은 다음 incubated 이차 항 체와 모든 1: 500에 1%와 0.1% 세제 NGS 실 온에서 1 h. 셀 다시 PBS에 세 번 씻어 되었고 DAPI 포함 된 설치 매체와 함께 탑재. 대표 이미지는 40 X 확대 촬영 했다. 눈금 막대, 50 µ m. (B) 특정 녹취 록 대표 셀 형 갓 분리 및 배양 세포의 표현. Microglia P21 쥐에서 고립 되었고 RNA 격리에 대 한 immunopanning 요리에서 직접 lysed 그리고 다른 주요 CNS 세포 유형 (이다, 신경, oligodendrocytes, 및 내 피 세포)의 RNA 시퀀스 마커 표시의 최소한의 오염 CD11b-immunopanned 셀입니다. 호 중구 마커 갓 절연 셀 (블랙), 감지 하지만 혈 청 무료 문화 (회색)에서 손실 됩니다. 배양된 세포 표현 높은 수준의 일반적인 대 식 세포 마커, 하지만 전문된 microglial 서명 정의 마커는 신속 하 게 경작된 한 세포에 의해 downregulated. 오차 막대는 평균 (SEM)의 표준 오차를 나타냅니다. Bohlen 그 외 여러분 에서 데이터 수정 9 허가 함께 사용. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
생존 및 셀 마커 얼룩 생존의 결정과 셀의 순수성에 대 한 허용 하지만 문화권의 역학에 제한 된 정보를 제공 합니다. 여기 우리가 제공 P21 쥐 microglia의 시간 경과 영화 TIC 14 DIV 후. 2 주 후 혈 청 무료 문화 쇼 빠른 프로세스 확장 및 접시에 걸쳐 retractions 동적 감시 동작 ( 동영상 1참조). 또한, 우리는 이전 발견 혈 청 노출 microglia의 상태 속성을 쉬고 이러한 변환 결과 형태학 및 phagocytic 변화를 지속. 우리 콩에 microglia 5 일에 대 한 교양된의 영화를 포함 다음 10 %FCS 노출 ( 영화 2참조).
영화 1: 정의 매체 microglia 문화 표시 동적 프로세스와 없는 형태. Microglia는 P21 쥐, 자리 콜라겐 코팅 음이온/양이온 코팅된 조직 문화 접시에 도금 및 TIC에서 14 일 동안 배양에서 고립 되었다. 14 DIV에서 이미지 마다 3 분을 수집 했다. 영화에서 6 프레임/s, 재생 하 고 오른쪽 아래 모서리에 있는 타임 스탬프는 이미징의 기간 h:min.에서 영화 Bohlen 그 외 여러분 에서 재현 9 허가 함께 사용. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)
영화 2: 혈 청 노출 트리거 정의 매체 microglial 문화에서 빠른 형태학 변화. Microglia는 P21 쥐, 자리 콜라겐 코팅 음이온/양이온 코팅된 조직 문화 접시에 도금 및 TIC에서 5 일 동안 배양에서 고립 되었다. 5 DIV 이미지 기준 운동 성/형태, 다음 2:55 (2 h 55 분)에 기록 된 5 분 마다 수집 된, 50% 미디어 변경 10%의 최종 농도에 FCS를 추가를 수행 했다. 셀 추가 7 h에 대 한 몇 군데 있었다. 영화에서 6 프레임/s, 재생 하 고 오른쪽 아래 모서리에 있는 타임 스탬프 이미징 h:min. 하시기 바랍니다 여기를 클릭이이 비디오를 볼의 기간을 나타냅니다. (다운로드 오른쪽 클릭.)
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Discussion
Microglia CNS의 센 티 넬 면역 세포 역할을, 때문에 그들은 높은 반응 환경 변화; 따라서, 주의 그들의 고립과 문화8동안 셀 내에서 선 동적인 응답을 최소화 하기 위해 필요 합니다. 이것은 속도 온도 통해이 프로토콜에서 수행 됩니다. 동물 차가운 관류 버퍼 끼얹는다는 가능한 크게 저하 활성화, 모든 원심 분리 단계 4 ° C에서 열릴 때마다 얼음에 또는 4 ° C에서 세포를 유지, 그리고 프로토콜 조직 사이 시간을 최소화 간소화 되었습니다. 추출 하 고 세포의 경작입니다. 갓 고립 된 세포의 유전자 표현 패턴을 평가 하는 경우 세포 lysates trypsinization 최소한 절연 유도 된 변화를 계속 하기 전에 CD11b immunopanning 요리에서 직접 수확. 주목 해야 한다도 신중 하 게 고립 된 해당 microglia 실행의 본질적으로 격리 절차와 관련 된 피해 관련 신호 인식, 아마도 따뜻한 온도에 배치 되 고 즉시 염증 반응. 프로토콜을 성공적으로 수행한, 2.5-5 x5 셀/청소년 쥐 10으로 예상 된다.
세포 격리 프로토콜 여기는 매우 CD11b + perfused CNS9에서 셀 분리에 대 한 구체적인 제공. 이 셀 인구 microglia 주로 이루어져 있다, 하지만 그것은 또한 혈관 주위 세포, meningeal 세포, 맥락 막 총 세포, monocytes, 호 중구10등 다른 골수성 인구의 저급을 포함 되어 있습니다. 맥락 막 관련 골수성 세포 인식 및 조직 분리 이전 맥락 막 신경 총의 제거에 의해 근본적으로 제거할 수 있습니다. Meninges도 어느 정도 제거 될 수 있다 하지만 모든 meningeal 조직의 완전 한 제거 여기에 설명 된 빠른 격리 대상 시간대 내에서 실용적이 지 않습니다. 따라서, meninges의 불완전 한 제거로 인해 변화를 제한, 우리 제거 하지 마십시오 meninges. Monocytes/호 중구 절연된 재료에 순환의 수를 최소화 하기 위해 그것은 또한 깨끗 한 관류 하는 것이 중요 하 고 우리가 일반적으로 가난 하 게 끼얹는다 조직 삭제. 도 우수한 관류, 혈액의 절대 정화를 통해 셀 펠 릿에 적혈구의 소량의 존재에 의해 분명 하 게 될 것입니다. 따라서, monocytes 그리고 호 중구의 작은 수준 공동 정화 하 고 갓 절연 셀 transcriptomic 프로필에 고유한 서명 기여. 그러나, 셀을 순환 혈 청 무료 콩 미디어에 신속 하 게 죽을 것 이다 하 고 그들은 생존 하 고 문화를 포함 하는 혈 청에서 증식을 계속할 수 있지만 영구 오염 물질을 대표 하지 마십시오.
다른 중요 한 건강 하 고, 가능한 문화를 달성 하는 점은 기계적 분리 단계 동안 돌 봐입니다. Douncing 죽 많은 뉴런, 명과, 그리고 다른 동안 CNS 셀, microglia 살아남을 상대적으로 (비록 microglia 이상 douncing에 의해 죽 ㄹ 수 있다)을 무사 히이 분리. 만약 제대로,이 프로토콜 셀 생산량 비교 분해 분리를 사용 하 여 얻은 그 결과, 염증 조직에서 변수 잠재적으로 혼동 하는 반면 높은 온도에 응답 피할 수 있습니다. 기계적 조직 분리의 연속 불완전 한 라운드를 수행 하 여 단일 셀 전체 문화에 기계적 스트레스의 양을 최소화 하면서 정지에서 수확 수 있습니다.
여기에 설명 된 immunopanning 프로토콜 microglia, 격리 하는 안정적이 고 재현 가능한 방법 이지만 다른 비교 방법을 사용할 수 있습니다. 우리 자기 활성화 셀 정렬 myelin 고갈 및 CD11b 선택 마그네틱 격리를 사용 하 여 비슷한 결과 얻은. 최고 품질 문화 날짜를 제공 하 고 덜 전문된 장비가 필요 합니다 문화 직전 셀에 산화 철 활용 된 항 체의 소개를 필요로 하지 않습니다 그것 때문에 우리가 여기 immunopanning 방법에 집중 했다. 또 다른 방법은 microglial 절연을 위해 일반적으로 사용 되는 프로토콜 다른 CD11b + 골수성 오염 물질 로부터 표면을 사용 하 여 선의 fide microglia의 정화에 대 한 존재에 현재 접근에 주요 이점이 있다 cytometry TEMEM1198등 서명 표식에 대 한 항 체 형광 활성화 된 세포 분류 결과 매우 순수 셀 인구, 비록 그것은 또한 셀에 추가 스트레스를 부과 하 고 낮은 생존 문화 또는 감소 된 수확량에 발생할 수 있습니다. 전반적으로, 우리는 재현성 및 셀 인구의 순도 최대화 하기 위해 레이블 없는 밀도 원심 분리와 쉐이크-오프 준비를 통해 항 체 기반 방법에 집중 한다.
이 프로토콜은 청소년 쥐 microglia의 문화에 대 한 최적화 하는 동안 사용할 수 있습니다 다양 한 연령대;에서 microglia 문화 총 셀 수익률은 1-2 주 된 쥐, microglial 확장의 피크 통과 후와 이전 조직에서 세포의 복구에 방해가 구조적 재배열 하기 전에 최대. Microglia 또한 분리 하 고 마우스 또는 인간의 epitopes 특정 적절 한 단일 클론 항 체와 CD11b 항 체를 대체 하 여 마우스 및 인간의 조직 배양 수 있습니다. 마우스와 인간의 microglia 이러한 문화 조건, 생존 하는 동안 그들은 쥐 세포에 비해 형태학 적 차이 보여줍니다. 마우스 세포 없는 형태를 유지 하지만 덜 인간의 세포는 거의 균일 한 amoeboid 형태학의 절연 하 고이 절차에 따라 경작 하는 동안 프로세스를 자세히 설명.
절연된 microglia 요구 분석에 따라 다른 방법으로 도금 될 수 있습니다. (라이브/죽은 분석 실험 및 형태학 영화 그림과 그림)으로 최적의 결과 위해 103 셀 x 3.5 자리"했다"로 콜라겐 IV의 10 분 코팅 후 24-잘 음이온/양이온 코팅된 조직 문화 접시의 우물의 센터에서 도금 위의 프로토콜에서 설명합니다. 또는, 셀, RNA 격리 등의 많은 수를 요구 하는 실험에 대 한 3-5 104 셀 배 수 수 도금 24-잘 접시의 당 콜라겐 IV 코팅의 1 시간에 10 분 후. 셀 약간 낮은 생존 능력을 보여 높은 밀도에서 도금 고 자리 했다 셀에 비해 덜 복잡 한 형태학 처리, 가능 하 게 염증 신호 고립에 응답에 분 비의 영향 때문. Immunohistochemistry 또는 유리 coverslips를 요구 하는 이미징, 세포 전시 최고의 생존 하 고 형태 coverslips 첫 번째 때 PDL 코팅 후 위에서 설명한 대로 콜라겐 IV에 코팅. 많은 조건 요구 분석, 대 한 세포 생존 능력 96 잘 또는 384-잘 콜라겐 코팅 접시에 고 이기도 합니다. 모든 조건에서 셀 라운드 또는 바이 폴라 밖으로 시작, 하루 3-4, 주위 프로세스를 습득 하 고 그림 1 과 영화 1에서 극대 없는 형태 전시 5-10 일이 걸릴 시작.
이 프로토콜은 동적 감시 행동과 microglia에서 vivo에서쉬고 비슷한 형태를 전시 하는 문화에서 결과, 하는 동안이 세포 완전히 microglia에서 vivo에서의 특수 유전자 식 서명 유지 하지. 많은 경작된 한 세포에 지속적인 유전자 변화의 일반적으로 배아 또는 염증이 CNS9본 변경 반영 합니다. 따라서,이 프로토콜 microglia 문화 및 혈 청 갖는 변화에서 살아남기 위해 필요 조건의 이해에서 전진 하지만 추가 연구 microglial 조정 CNS가 제공한 외부 신호를 이해 하는 데 필요한 속성 및 진 식입니다.
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Disclosures
저자는 연구 잠재적인 상충으로 해석 될 수 있는 어떤 상업적 또는 금융 관계의 부재에서 실시 되었다 선언 합니다.
Acknowledgments
이 작품은 크리스토퍼와 다 나 리브 재단 국제 연구 컨소시엄 셀던 G. 샌즈 의료 연구 재단, JPB 재단, 노바 티 스 연구소의 기본 연구, 척수 부상, 박사 미리 암에 의해 지원 되었다 빈센트 고 스텔라 Coates, 그리고 Damon Runyon 암 연구 재단 (DRG-2125-12)에서 관대 한 기여 금.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Rat: Sprague-Dawley | Charles River | Cat# 400 | |
mouse anti-rat CD11b monoclonal (clone OX42) | Bio-Rad | Cat# MCA275R | Panning: 1:1,000; Staining: 1:500 |
Goat polycolonal anti-Iba1 | Abcam | Cat# AB5076 | Staining: 1:500 |
Rabbit polyclonal anti-Ki67 | Abcam | Cat# AB15580 | Staining: 1:500 |
Alexa Fluor Donkey anti-mouse 594 | Invitrogen | Cat# 11055 | Staining: 1:500 |
Alexa Fluor Donkey anti-goat 488 | Invitrogen | Cat# A-21203 | Staining: 1:500 |
Alexa Fluor Donkey anti-Rabbit 647 | Invitrogen | Cat# A-31573 | Staining: 1:500 |
Triton-X (detergent in ICC staining) | Thermo Fisher | Cat# 28313 | |
Heparan sulfate | Galen Laboratory Supplies | Cat# GAG-HS01 | |
Heparin | Sigma | Cat# M3149 | |
Peptone from milk solids | Sigma | Cat# P6838 | |
TGF-β2 | Peprotech | Cat# 100-35B | |
Murine IL-34 | R&D Systems | Cat# 5195-ML/CF | |
Ovine wool cholesterol | Avanti Polar Lipids | Cat# 700000P | |
Collagen IV | Corning | Cat# 354233 | |
Oleic acid | Cayman Chemicals | Cat# 90260 | |
11(Z)Eicosadienoic (Gondoic) Acid | Cayman Chemicals | Cat# 20606 | |
Calcein AM dye | Invitrogen | Cat# C3100MP | |
Ethidium homodimer-1 | Invitrogen | Cat# E1169 | |
DNaseI | Worthington | Cat# DPRFS | |
Percoll PLUS | GE Healthcare | Cat# 17-5445-02 | |
Trypsin | Sigma | Cat# T9935 | |
DMEM/F12 | Gibco | Cat# 21041-02 | |
Penicillin/ Streptomycin | Gibco | Cat# 15140-122 | |
Glutamine | Gibco | Cat# 25030-081 | |
N-acetyl cysteine | Sigma | Cat# A9165 | |
Insulin | Sigma | Cat# 16634 | |
Apo-transferrin | Sigma | Cat# T1147 | |
Sodium selenite | Sigma | Cat# S-5261 | |
DMEM (high glucose) | Gibco | Cat# 11960-044 | |
Dapi Fluoromount-G | Southern Biotech | Cat# 0100-20 | |
Poly-D-Lysine | Sigma | Cat# A-003-E | |
Primaria Plates | VWR | Cat# 62406-456 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Stock reagents | |||
Apo-transferrin | Reconstitution: 10 mg/mL in PBS Concentration used: 1:100 Storage: -20°C |
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N-acetyl cysteine | Reconstitution: 5 mg/mL in H2O Concentration used: 1:1,000 Storage: -20°C |
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Sodium selenite | Reconstitution: 2.5 mg/mL in H2O Concentration used: 1:25,000 Storage: -20°C |
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Collagen IV | Reconstitution: 200 μg/mL in PBS Concentration used: 1:100 Storage: -80°C |
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TGF-b2 | Reconstitution: 2 mg/mL in PBS Concentration used: 1:1,000 Storage: -20°C |
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IL-34 | Reconstitution: 200 μg/mL in PBS Concentration used: 1:1,000 Storage: -80°C |
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Ovine wool cholesterol | Reconstitution: 1.5 mg/mL in 100% ethanol Concentration used: 1:1,000 Storage: -20°C |
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Heparan sulfate | Reconstitution: 1 mg/mL in H2O Concentration used: 1:1,000 Storage: -20°C |
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Oleic acid/Gondoic acid | Reconstitution: Gondoic: 0.001 mg/mL; Oleic: 0.1 mg/mL in 100% ethanol Concentration used: 1:1,000 Storage: -20°C |
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Heparin | Reconstitution: 50 mg/mL in PBS Concentration used: 1:100 Storage: -20°C |
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Solutions | |||
Perfusion Buffer | Recipe: 50 μg/mL heparin in DPBS++ (PBS with Ca++ and Mg+ +) Comments: Use when ice-cold |
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Douncing Buffer | Recipe: 200 μL of 0.4% DNaseI in 50 mL of DPBS++ Comments: Use when ice-cold |
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Panning Buffer | Recipe: 2 mg/mL of peptone from milk solids in DPBS++ | ||
Microglia Growth Medium (MGM) | Recipe: DMEM/F12 containing 100 units/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin, 2 mM glutamine, 5 μg/mL N-acetyl cysteine, 5 μg/mL insulin, 100 μg/mL apo-transferrin, and 100 ng/mL sodium selenite Comments: Use ice-cold MGM to pan microglia off of immnopanning dish. |
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Collagen IV Coating | Recipe: MGM containing 2 μg/mL collagen IV | ||
Myelin Seperation Buffer | Recipe: 9 mL Percoll PLUS, 1 mL 10x PBS without Ca++ and Mg++, 9 μL 1 M CaCl2, 5 μL 1 M MgCl2 Comments: Mix well after the addition of CaCl2 and MgCl2 |
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TGF-b2/IL-34/Cholesterol containing growth media (TIC) | Recipe: MGM containing human 2 ng/mL TGF-b2, 100 ng/mL murine IL-34, 1.5 μg/mL ovine wool cholesterol, 10 μg/mL heparan sulfate, 0.1 μg/ml oleic acid, and 0.001 μg/ml gondoic acid Comments: Make sure to add cholesterol to media warmed to 37 °C and do not add more than 1.5 μg/mL or it will precipitate out. Do not filter cholesterol-containing media. Equilibrate TIC media with 10% CO2 for 30 min- 1 hr before adding to cells to insure optimal pH. |
References
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- Wu, Y., Dissing-Olesen, L., MacVicar, B. A., Stevens, B. Microglia: Dynamic Mediators of Synapse Development and Plasticity. Trends Immunol. 36 (10), 605-613 (2015).
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Ontogeny of Tissue-Resident Macrophages. Front Immunol. 6, 486 (2015). - Bennett, M. L., et al. New tools for studying microglia in the mouse and human CNS. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (12), E1738-E1746 (2016).
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