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Bioengineering

Caracterización viscoelástica de fantasmas de gelatina que imitan tejidos blandos mediante elastografía por indentación y resonancia magnética

Published: May 10, 2022 doi: 10.3791/63770

Summary

Este artículo presenta una demostración y resumen de los protocolos de fabricación de fantasmas de gelatina que imitan los tejidos blandos, y la correspondiente caracterización viscoelástica mediante indentación y elastografía por resonancia magnética.

Abstract

La caracterización de las propiedades biomecánicas de los tejidos biológicos blandos es importante para comprender la mecánica tisular y explorar los mecanismos biomecánicos relacionados con la enfermedad, las lesiones y el desarrollo. El método de prueba mecánica es la forma más sencilla para la caracterización de tejidos y se considera como verificación para la medición in vivo . Entre las muchas técnicas de prueba mecánica ex vivo , la prueba de indentación proporciona una forma confiable, especialmente para muestras que son pequeñas, difíciles de fijar y viscoelásticas, como el tejido cerebral. La elastografía por resonancia magnética (ERM) es un método utilizado clínicamente para medir las propiedades biomecánicas de los tejidos blandos. Sobre la base de la propagación de ondas cortantes en tejidos blandos registrada mediante MRE, las propiedades viscoelásticas de los tejidos blandos se pueden estimar in vivo basándose en la ecuación de onda. Aquí, las propiedades viscoelásticas de los fantasmas de gelatina con dos concentraciones diferentes se midieron mediante MRE y sangría. Se han presentado los protocolos de fabricación fantasma, pruebas y estimación del módulo.

Introduction

La mayoría de los tejidos biológicos blandos parecen tener propiedades viscoelásticas que son importantes para comprender su lesión y desarrollo 1,2. Además, las propiedades viscoelásticas son biomarcadores importantes en el diagnóstico de una variedad de enfermedades como la fibrosis y el cáncer 3,4,5,6. Por lo tanto, la caracterización de las propiedades viscoelásticas de los tejidos blandos es crucial. Entre las muchas técnicas de caracterización utilizadas, las pruebas mecánicas ex vivo de muestras de tejido y la elastografía in vivo utilizando imágenes biomédicas son los dos métodos ampliamente utilizados.

Aunque se han utilizado varias técnicas de prueba mecánica para la caracterización de tejidos blandos, los requisitos para el tamaño de la muestra y las condiciones de prueba no son fáciles de cumplir. Por ejemplo, las pruebas de cizallamiento deben tener muestras fijadas firmemente entre las placas de cizallamiento7. La prueba biaxial es más adecuada para el tejido de membrana y tiene requisitos específicos de sujeción 8,9. Una prueba de compresión se usa comúnmente para pruebas de tejidos, pero no puede caracterizar posiciones específicas dentro de una muestra10. La prueba de indentación no tiene requisitos adicionales para fijar la muestra de tejido y se puede usar para medir muchas muestras de tejido biológico, como el cerebro y el hígado. Además, con una pequeña cabeza penetradora, se podrían probar propiedades regionales dentro de una muestra. Por lo tanto, se han adoptado pruebas de indentación para probar una variedad de tejidos blandos 1,3,11.

La caracterización de las propiedades biomecánicas de los tejidos blandos in vivo es importante para los estudios traslacionales y las aplicaciones clínicas de la biomecánica. Las modalidades de imagen biomédica como la ecografía (US) y la resonancia magnética (RM) son las técnicas más utilizadas. Aunque las imágenes estadounidenses son relativamente baratas y fáciles de llevar a cabo, sufren de bajo contraste y son difíciles de medir órganos como el cerebro. Capaz de obtener imágenes de estructuras profundas, la elastografía por RM (ERM) pudo medir una variedad de tejidos blandos 6,12, especialmente el cerebro13,14. Con la vibración externa aplicada, MRE podría medir las propiedades viscoelásticas de los tejidos blandos a una frecuencia específica.

Los estudios han demostrado que a 50-60 Hz, el módulo de corte del cerebro normal es ~ 1.5-2.5kPa 5,6,13,14,15 y ~ 2-2.5 kPa para el hígado normal 16. Por lo tanto, los fantasmas de gelatina que tienen propiedades biomecánicas similares han sido ampliamente utilizados para imitar tejidos blandos para pruebas y validación17,18,19. En este protocolo, se prepararon y probaron fantasmas de gelatina con dos concentraciones diferentes. Las propiedades viscoelásticas de los fantasmas de gelatina se caracterizaron utilizando un dispositivo electromagnético MRE hecho a medida14 y un dispositivo de hendidura 1,3. Los protocolos de prueba podrían usarse para analizar muchos tejidos blandos como el cerebro o el hígado.

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Protocol

1. Preparación fantasma de gelatina

  1. Pese la gelatina, el glicerol y el agua de acuerdo con la Tabla 1. Mezclar la gelatina en polvo con agua para obtener la solución de gelatina.
    NOTA: Las concentraciones de los componentes individuales para preparar los dos fantasmas se muestran en la Tabla 1. Cuanto mayor es la concentración de gelatina, más rígido es el fantasma.
  2. Calentar la solución de gelatina a 60 °C en un baño maría. Agregue glicerol a la solución de gelatina mientras mantiene la temperatura.
    NOTA: El glicerol estabiliza las mezclas de gelatina aumentando su temperatura de fusión y módulo de cizallamiento17.
  3. Revuelva la solución y caliéntela a 60 °C de nuevo. Vierta la solución mezclada en un recipiente que se utilizará para MRE y pruebas de indentación. Enfríe la solución a temperatura ambiente y espere hasta que la solución se solidifique.

2. Prueba de MRE

  1. Coloque la placa de vibración encima del fantasma de gelatina. Asegúrese de que el contacto entre el fantasma y la placa vibratoria sea firme (Figura 1A).
    NOTA: La placa vibratoria está fabricada en Poliamida con una dimensión de 50 x 50 x 5 mm3.
  2. Coloque el fantasma de gelatina en la bobina de la cabeza. Coloque esponjas y sacos de arena alrededor del fantasma de gelatina para asegurarse de que el fantasma esté firmemente colocado. Utilice un actuador electromagnético personalizado con una barra de transmisión14,18. Monte un actuador electromagnético en la bobina de la cabeza. Conecte la barra de transmisión a la placa vibratoria (Figura 1B).
  3. Conecte las líneas de alimentación del actuador con el amplificador. Conecte las líneas de control con el controlador (Figura 1C).
  4. Configuración de los parámetros del actuador y de la resonancia magnética
    1. Establezca la forma de onda, la frecuencia de vibración y la amplitud en el generador de funciones. Ajuste la amplitud de vibración deseada ajustando el amplificador de potencia.
      NOTA: Aquí, la forma de onda se establece en sinusoidal en el generador de funciones; la frecuencia de vibración se establece en 40 Hz o 50 Hz, y la amplitud se establece en 1,5 Vpp. En el amplificador de potencia, la relación de amplificación se establece en 40%.
    2. Configure el generador de funciones para que funcione en el modo de disparo. Conecte la línea de activación al puerto de disparo externo de la máquina de resonancia magnética.
    3. Ajuste la frecuencia de escaneo MRE (actuador) igual que la del generador de funciones, de modo que el gradiente de codificación de movimiento se sincronice con el movimiento de la placa de vibración.
  5. Medición y análisis de datos
    1. Siga los procedimientos rutinarios de posicionamiento por imágenes. Utilice una secuencia de MRE basada en eco de gradiente (GRE) 2D para obtener imágenes del fantasma de gelatina20. Establezca los parámetros de imagen GRE-MRE de la siguiente manera: Ángulo de giro = 30°; TR/TE = 50/31 ms; Campo de visión = 300 mm; Grosor de la rebanada = 5 mm; Tamaño del vóxel = 2,34 x 2,34 mm2.
    2. Mida las imágenes de fase en cuatro puntos temporales en un ciclo sinusoidal. Aplique gradientes de codificación de movimiento positivo y negativo en cada punto de tiempo.
    3. En función de la imagen de fase adquirida, elimine la fase de fondo restando las imágenes de fase codificadas positiva y negativa. Desenvuelva la fase con un algoritmo basado en la clasificación de fiabilidad21.
    4. Extraiga el componente principal del movimiento aplicando la transformada rápida de Fourier a las imágenes de fase sin ajustar. Filtre la imagen de fase con un filtro de paso de banda digital. Estimar el módulo de corte con un algoritmo de inversión directa (DI) 2D para obtener el módulo de almacenamiento G' y el módulo de pérdida G''13,14.
      NOTA: La frecuencia de corte del filtro de paso de banda es [0,04 0,08]. El tamaño de la ventana de ajuste del algoritmo DI es 11 x 11.

3. Prueba de sangría

  1. Use un punzón circular o una cuchilla quirúrgica para recortar el fantasma de gelatina en una muestra cilíndrica o cuboide, respectivamente. Asegúrese de que el grosor de la muestra esté entre 3 y 10 mm y que el diámetro de la muestra cilíndrica o del lado largo del cuboide sea mayor de 4 mm. Use una cuchilla afilada para recortar la superficie de la muestra para que sea lo más suave posible para la hendidura.
  2. Encienda la alimentación del probador de sangría. Realice lo siguiente utilizando el programa de control de penetrador diseñado para automatizar el procedimiento de contacto del penetrador (programa personalizado; consulte Tabla de materiales).
    1. Haga clic en el botón Retroceder en la GUI para inicializar el proceso de calibración (Figura 2B). Lea el valor del sensor láser y escriba el valor en el cuadro Línea base .
      NOTA: Durante el proceso de calibración, la distancia entre el sensor láser y la placa deflectora se ajusta a un valor predefinido específico.
    2. Coloque un portaobjetos de vidrio en la placa deflectora y registre el valor mostrado por el sensor láser. A continuación, coloque la muestra en el portaobjetos de vidrio y colóquelos juntos en la placa deflectora. Lea el valor del sensor láser y escriba este valor en el cuadro Muestra+Diapositiva .
      NOTA: El sensor láser se utiliza para registrar el desplazamiento de la hendidura, pero también se utiliza para medir el grosor de la muestra antes de la prueba.
    3. Tome la diferencia entre los dos valores obtenidos en el paso 3.2.2 como el espesor de la muestra en la región de interés (ROI).
    4. Coloque cuidadosamente la muestra junto con el portaobjetos de vidrio subyacente justo debajo del penetrador y, a continuación, haga clic en el botón Contacto para iniciar el contacto automático entre el penetrador y la superficie de la muestra.
      NOTA: Si el contacto automático no es satisfactorio, es decir, el penetrador presiona profundamente en la muestra o no tiene un contacto, ajuste la posición del penetrador escribiendo un valor en el rango de 0,05-0,1 mm en el cuadro Desplazamiento y repita los pasos 1.2.1-1.2.4.
    5. Sobre la base del espesor de la muestra medida (paso 3.2.3), estime el desplazamiento de la hendidura (es decir, la profundidad total de la hendidura) multiplicando el espesor por la deformación de prueba con sangría (aquí, se establece en ≤8% para mantener la hendidura dentro de la suposición de deformación pequeña).
    6. Escriba los valores de desplazamiento (paso 3.2.5) en el cuadro Desplazamiento (mm). Ajuste el tiempo de relajación a 180 s en el cuadro Tiempo de permanencia . Haga clic en el botón Sangría . El desplazamiento y la fuerza reactiva durante el procedimiento de retención de rampa se registrarán automáticamente y se guardarán en un archivo en la ruta de archivo especificada.
      NOTA: La ruta de archivo se puede predefinir como la ruta para guardar datos de prueba.
  3. Exporta los datos de sangría a una hoja de cálculo. Utilice una serie Equation 1 de Prony de dos términos para ajustarse a la curva de relajación de la fuerza 1,3,11:
    Equation 2
  4. Estimar el módulo de cizallamiento instantáneo (G 0) y el módulo de cizallamiento a largo plazo (G) basándose en los parámetros ajustados:
    Equation 3
    NOTA: En las ecuaciones anteriores, C 0, C i y τi son parámetros del modelo de la serie Prony, F es la fuerza de indentación, R es el radio del penetrador, X es el factor de compensación para el supuesto de medio espacio infinito, V es la velocidad de indentación, t es la variable de tiempo y t R es el tiempo de rampa.

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Representative Results

Siguiendo el protocolo MRE, se observó una clara propagación de onda de corte en los fantasmas de gelatina a 40 y 50 Hz (Figura 3). Las propiedades viscoelásticas medidas a partir de MRE, y las pruebas de indentación se muestran en la Figura 4. Los valores estimados de G' y G" en cada prueba para cada fantasma se resumen en la Tabla 2. Siguiendo el protocolo de indentación, las propiedades viscoelásticas de cada fantasma en cada punto de prueba se resumen en la Tabla 3.

Como se muestra en la Figura 4, para las mediciones con MRE, una comparación de los valores de G' y G" medidos a 40 y 50 Hz mostró diferencias significativas entre los dos fantasmas de gelatina (prueba t de Student, p < 0,05). Además, se observaron diferencias significativas para los valores de G' y G" entre las mediciones de 40 y 50 Hz (prueba t de Student, p < 0,05). Del mismo modo, para las mediciones mediante prueba de indentación, se observaron diferencias significativas entre los dos fantasmas para los valores de G 0 y G (prueba t de Student, p < 0,05). Tanto la ERM como la sangría proporcionaron resultados consistentes para distinguir los fantasmas de gelatina blanda y rígida.

Figure 1
Figura 1: Prueba de ERM . (A) Coloque la placa de vibración encima del fantasma de gelatina. (B) Coloque el fantasma de gelatina dentro de la bobina de la cabeza y monte el actuador electromagnético en la parte superior de la bobina de la cabeza. (C) Una visión general del sistema electromagnético MRE que muestra las conexiones entre cada componente. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 2
Figura 2: Prueba de indentación . (A) Coloque el fantasma de gelatina justo debajo de la cabeza del penetrador en el probador. (B) Prepare la sangría utilizando el panel Configuración de control en la GUI. Introduzca los parámetros de sangría en la GUI para configurar la prueba de relajación en rampa. Observe las curvas de sangría en la ventana Visor de datos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 3
Figura 3: Imágenes de propagación de ondas para los dos fantasmas de gelatina a 40 y 50 Hz. Las cuatro fases corresponden a los cuatro puntos temporales en un ciclo sinusoidal. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 4
Figura 4: Propiedades viscoelásticas medidas a partir de MRE y experimentos de indentación. (A) Mapas típicos estimados de G' y G'' a 40 y 50 Hz para los dos fantasmas de gelatina de MRE. (B) Media y desviación típica de los valores G0 y G para los dos fantasmas de seis pruebas de sangría repetidas. (C) Media y desviación estándar de los valores de G' y G'' a 40 y 50 Hz para los dos fantasmas de seis pruebas repetidas de ERM. El símbolo del asterisco indica una diferencia significativa (prueba t de Student; p < 0,05). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Gelatina Agua Glicerol Total
Fantasma 1 100 (4.35%) 1200 (52.17%) 1000 (43.48%) 2300 (100%)
Phantom 2 160 (6.96%) 1140 (49.56%) 1000 (43.48%) 2300 (100%)

Tabla 1: La masa y la concentración de masa de la gelatina, el glicerol y el agua utilizados para preparar los dos fantasmas de gelatina. La unidad de masa es gramos.

Módulo (Pa) Prueba 1 Prueba 2 Prueba 3 Prueba 4 Prueba 5 Prueba 6 Significar ETS
Fantasma 1 40 Hz G' 2978 2976 2976 2974 2971 2972 2975 3
G'' 198 197 197 198 199 199 198 1
50 Hz G' 2854 2852 2852 2851 2850 2848 2851 2
G'' 341 342 342 342 341 341 341 1
Phantom 2 40 Hz G' 5603 5589 5596 5590 5586 5588 5592 7
G'' 419 412 419 413 408 408 413 5
50 Hz G' 5343 5341 5336 5336 5329 5331 5336 6
G'' 317 317 318 324 321 323 320 3

Tabla 2: Módulo de almacenamiento (G') y módulo de pérdida (G") de los dos fantasmas de gelatina medidos por MRE. Cada fantasma se probó seis veces a una frecuencia de actuación de 40 y 50 Hz.

Prueba 1 Prueba 2 Prueba 3 Prueba 4 Prueba 5 Prueba 6 Significar ETS
Fantasma 1 C0 1.54 1.88 1.81 1.71 1.65 1.60 1.70 0.13
C1 0.64 0.16 0.09 0.16 0.16 0.21 0.23 0.20
C2 0.10 0.12 0.15 0.11 0.13 0.11 0.12 0.02
τ1 (s) 459.71 177.52 114.14 7.32 6.1 3.73 128.09 177.51
τ2 (s) 9.83 6.38 5.83 199.28 200.2 55.78 79.55 94.98
R2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 0.99 1.00 0.00
G0 (Pa) 2273 2145 2040 1991 1935 1920 2051 136
G (Pa) 1535 1875 1808 1714 1650 1601 1697 128
Phantom 2 C0 5.97 6.29 6.16 6.20 6.14 6.11 6.14 0.11
C1 0.29 0.30 0.43 0.38 0.18 0.48 0.34 0.11
C2 0.64 0.24 0.24 0.17 0.39 0.18 0.31 0.18
τ1 (s) 5.99 3.50 2.46 2.71 69.34 2.36 14.39 26.95
τ2 (s) 96.28 124.98 123.87 88.01 2.34 63.35 83.14 45.88
R2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 0.00
G0 (Pa) 6899 6827 6825 6751 6710 6771 6797 67
G (Pa) 5967 6286 6160 6197 6144 6113 6145 105

Tabla 3: Parámetros viscoelásticos estimados a partir de pruebas de indentación para los dos fantasmas de gelatina. Cada fantasma fue probado seis veces.

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Discussion

Los fantasmas de gelatina se utilizan comúnmente como materiales que imitan el tejido para probar y validar algoritmos y dispositivos 17,19,22,23,24,25,26,27. Uno de los estudios pioneros que utilizaron el fantasma de gelatina para comparar la ERM y las pruebas de cizallamiento dinámico fue presentado por Okamoto et al. (2011)17. En su estudio, la concentración de masa de la gelatina fue ~ 2.8%, y los valores estimados de G 'y G' después de la corrección estaban en los rangos de 1.06-1.15 kPa y 0.11-0.27 kPa, respectivamente. Zeng et al. (2020)19 también utilizaron gelatina fantasma para validar el algoritmo de inversión para MRE. Con una concentración de masa de gelatina de ~3.5%, el valor G' estimado fue ~2.5 kPa. Dado que el módulo de cizallamiento aumenta con la concentración de gelatina, todos estos valores fueron consistentes con la estimación en este estudio.

Para hacer fantasmas de gelatina, se observa que se requiere una agitación completa y completa al mezclar una gran cantidad de gelatina en polvo con agua. Esto es necesario para la disolución completa para hacer fantasmas homogeneizados. Para aumentar la temperatura de fusión y el módulo de cizallamiento, se agregó glicerol a la mezcla17. El baño de agua a unos 60 °C ayudará a acelerar la mezcla y se recomienda durante el proceso de agitación. Por lo general, la gelatina se formará en un recipiente con una forma específica, por ejemplo, cubo o cilindro. Por lo tanto, es importante filtrar las burbujas antes de verter la solución mezclada en el recipiente.

Al prepararse para la prueba de ERM, una transmisión estable de la onda de corte es crucial. Por lo tanto, es necesario asegurarse de que la placa vibratoria esté firmemente presionada sobre el fantasma. Esto es para evitar cualquier posible deslizamiento entre la placa y el fantasma. Sin embargo, esto potencialmente traerá un cierto nivel de preestrés local. Por lo tanto, es importante no presionar demasiado la placa en el fantasma. Al configurar la frecuencia de actuación, se observa que la amortiguación de la propagación de la onda aumenta con la frecuencia.

Se sugiere colocar el dispositivo de hendidura en una mesa de aislamiento de vibraciones. Esto se debe a que incluso una pequeña vibración afectará el proceso de grabación de la rampa. Además, es necesario volver a calibrar los sensores si el dispositivo no se ha utilizado durante más de 1 mes.

Para tener el mejor rendimiento de medición de MRE, se sugiere mantener la frecuencia dentro de 100 Hz. Esto se debe a que cuanto mayor es la frecuencia, más disipación de la vibración, induciendo así una menor SNR de las imágenes adquiridas. La prueba de indentación mide principalmente la muestra en un rango de frecuencia inferior al de MRE. Para una discusión de las conversiones de parámetros entre los dos métodos, se puede consultar a Chen et al. (2020)11. La MRE y la hendidura se pueden usar para medir muchos tejidos biológicos blandos para investigar las propiedades biomecánicas y explorar los posibles biomarcadores basados en la biomecánica para el diagnóstico de enfermedades o la evaluación del tratamiento.

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Disclosures

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

Acknowledgments

Se reconoce el apoyo financiero de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (subvención 31870941), la Fundación de Ciencias Naturales de Shanghai (subvención 22ZR1429600) y la Comisión de Ciencia y Tecnología de la Municipalidad de Shanghai (subvención 19441907700).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
24-channel head & Neck coil United Imaging Healthcare 100120 Equipment
3T MR Scanner United Imaging Healthcare uMR 790 Equipment
Acquisition board Advantech Co PCI-1706U Equipment
Computer-Windows HP 790-07 Equipment
Electromagnetic actuator Shanghai Jiao Tong University Equipment
Function generator RIGOL DG1022Z Equipment
Gelatin CARTE D’OR Reagent
Glycerol Vance Bioenergy Sdn.Bhd Reagent
Indenter control program custom-designed Software; accessed via: https://github.com/aaronfeng369/FengLab_indentation_code.
Laser sensor Panasonic HG-C1050 Equipment
Load cell Transducer Technique GSO-10 Equipment
MATLAB Mathworks Software
Power amplifier Yamaha A-S201 Equipment
Voice coil electric motor SMAC Corporation DB2583 Equipment

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