Summary

في المختبر البنكرياس توالد من تفرقوا الجنينية الماوس أسلاف

Published: July 19, 2014
doi:

Summary

طريقة ثقافة ثلاثية الأبعاد الموصوفة في هذا البروتوكول يلخص التنمية البنكرياس من الأسلاف المتفرقة الجنينية الماوس البنكرياس، بما في ذلك توسعها الكبير، والتمايز والتشكل في هيئة متفرعة. هذا الأسلوب هو قابل للتصوير، والتدخل الوظيفية والتلاعب في مكانه.

Abstract

The pancreas is an essential organ that regulates glucose homeostasis and secretes digestive enzymes. Research on pancreas embryogenesis has led to the development of protocols to produce pancreatic cells from stem cells 1. The whole embryonic organ can be cultured at multiple stages of development 2-4. These culture methods have been useful to test drugs and to image developmental processes. However the expansion of the organ is very limited and morphogenesis is not faithfully recapitulated since the organ flattens.

We propose three-dimensional (3D) culture conditions that enable the efficient expansion of dissociated mouse embryonic pancreatic progenitors. By manipulating the composition of the culture medium it is possible to generate either hollow spheres, mainly composed of pancreatic progenitors expanding in their initial state, or, complex organoids which progress to more mature expanding progenitors and differentiate into endocrine, acinar and ductal cells and which spontaneously self-organize to resemble the embryonic pancreas.

We show here that the in vitro process recapitulates many aspects of natural pancreas development. This culture system is suitable to investigate how cells cooperate to form an organ by reducing its initial complexity to few progenitors. It is a model that reproduces the 3D architecture of the pancreas and that is therefore useful to study morphogenesis, including polarization of epithelial structures and branching. It is also appropriate to assess the response to mechanical cues of the niche such as stiffness and the effects on cell´s tensegrity.

Introduction

يوفر الجهاز الثقافة نموذجا مفيدا أن يسد الفجوات بين المجمع ولكن ذات أهمية كبيرة في التحقيقات المجراة والمحاكاة مريحة ولكن التقريبية للنماذج خط الخلية. في حالة البنكرياس، وليس هناك خط الخلية يعادل تماما لالأسلاف البنكرياس على الرغم من أن هناك يتم تحويل خطوط الخلايا محاكاة خلايا الغدد الصماء وإفرازات. لا يمكن تربيتها الكبار البنكرياس كله؛ يمكن الحفاظ على الجزر المعزولة الغدد الصماء لبضعة أسابيع دون تكاثر الخلايا ويمكن أن تظل شرائح الأنسجة في المختبر لبضع ساعات 5. وقد الثقافة البنكرياس الجنينية المستخدمة على نطاق واسع ليس فقط لدراسة تطورها، ولكن أيضا للتحقيق في الظهارة الوسيطة التفاعلات 4،6،7، لصورة يعالج 8 أو التدخل كيميائيا معهم 9. وتستخدم طريقتين ثقافة الجهاز أساسا: الأول يتمثل في زراعة براعم البنكرياس على فبرونيكتين المغلفة لوحات وهو محول،nient لأغراض التصوير؛ الخيار الثاني هو الثقافة الأجهزة على مرشحات في واجهة الهواء السائل 3،4 الذي يحافظ على أفضل التشكل. على الرغم من المفيد جدا، وهذه الأساليب تؤدي إلى درجة معينة من تسطيح؛ توسيع الأسلاف محدودة جدا بالمقارنة مع التطور الطبيعي والسكان بدءا معقد يضم جميع أنواع خلايا البنكرياس وخلايا اللحمة المتوسطة.

القدرة على الثقافة، وتوسيع الخلايا الأولية فرقت هو قيمة لدراسة علاقات النسب وكشف الخصائص الذاتية من أنواع الخلايا المعزولة 10. سوغيياما وآخرون 11 يمكن الحفاظ على الأسلاف البنكرياس والغدد الصماء الأسلاف التي احتفظت بعض الشخصيات الفنية لمدة 3-5 أيام في الثقافة على طبقات المغذية. Pancreatospheres، أقرب إلى neurospheres 12 و 13 mammospheres، تم توسيع من الجزر الكبار وخلايا الأقنية على الرغم من أن طبيعة الأسلاف / الخلايا الجذعيةالتي تولد هذه المجالات ليست واضحة. بالإضافة إلى ذلك، في تناقض مع التنمية الفسيولوجية، تضمن pancreatospheres بعض الخلايا العصبية 14،15. كما أنتجت مؤخرا المجالات من الأسلاف البنكرياس الجنينية 16،17 وتجديد 18 بنكرياسات جيدة مع التوسع السلف والتمايز لاحقة لكنها فشلت في ألخص التشكل.

3D نماذج من الخلايا المتفرقة وغالبا ما تعرف أن تنظيم الذاتي في الأجهزة المنمنمة ازدهرت مؤخرا ومحاكاة تطوير أو الكبار دوران أجهزة متعددة مثل الأمعاء 19،20، 21 المعدة، والكبد 22، 23 البروستاتا والقصبة الهوائية 24. في بعض الحالات، وقد لخص التشكل التنموية والتمايز في 3D من خلايا ES، كما هو الحال بالنسبة للأكواب البصرية 25، 26 الأمعاء أو الدماغ 27.

هنا، ونحن قصرcribe طريقة لتوسيع فصلها الأسلاف البنكرياس متعددة القدرات في سقالة 3D Matrigel حيث يمكنهم تمييز وتنظيم الذات.

Protocol

ويهدف هذا البروتوكول لتنمو organoids البنكرياس المستمدة من الفئران E10.5 فصل الخلايا الظهارية البنكرياس. البروتوكول يتطلب موافقة أخلاقية لإجراء التجارب على الحيوانات. 1. تشريح الظهرية البنكرياس بر?…

Representative Results

E10.5 الظهرية الأسلاف البنكرياس فصلها والمصنفة في 3D Matrigel ألخص التنمية البنكرياس. الأسلاف يمكن اتباعها بسهولة أكثر مع صحفيين الفلورسنت. في حالتنا استخدمنا الماوس المعدلة وراثيا التي تعبر عن بروتين GFP النووية التي تسيطر عليها Pdx1 المروج (Pdx1-Ngn3-ER TM-nGFP) (فيلم …

Discussion

الإنتاج على نطاق واسع من خلايا بيتا وظيفية في المختبر لا تزال غير فعالة 1. في هذا السياق الصعب، قد تساعد الدراسات البيولوجيا التطورية فك رموز الإشارات الدقيقة التي مطلوبة من أجل تمايز الخلايا بيتا وظيفية. هذا البروتوكول يسمح للصيانة وتوسعة والتفريق بين ال?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل بالتتابع حدود NCCR في جائزة رائد علم الوراثة، الأحداث السكري أبحاث مؤسسة جرانت 41-2009-775 والمنح 12-126875 من ديت Frie Forskningsråd / Sundhed عوج Sygdom. المؤلفين أشكر مختبر Spagnoli لاستضافة تصوير الفيديو.

Materials

Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
KnockOut Serum replacement (supplement) Gibco 10828-028 Stock keept at -20°C
2-mercaptoethanol Sigma Aldrich 3148-25ML Stock keept at 4°C
Phorbol Myristate Acetate (PMA) Calbiotech 524400-1MG Stock keept at -20°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
EGF Sigma Aldrich E9644-2MG Stock keept at -80°C
Recombinant Human R-spondin 1 R&D 4645-RS-025/CF Stock keept at -80°C
 - or - 
Recombinant Mouse R-spondin 1 R&D 3474-RS-050 Stock keept at -80°C
Recombinant Human FGF1 (aFGF) R&D 232-FA-025 Stock keept at -80°C- do not include to increase beta cell production
Heparin (Liquemin) Drossapharm Stock keept at 4°C
Recombinant Human FGF10 R&D 345-FG-025 Stock keept at -80°C
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063 Stock keept at -20°C
B27 x50 (supplement) Gibco 17504-044 Stock keept at -20°C
Recombinant Human FGF2 (bFGF) R&D 233-FB-025 Stock keept at -80°C
Y-27632 (ROCK inhibitor) Sigma Aldrich ab120129 Stock keept at -20°C- Attention! Stability/source is a frequent source of problems
DMEM/F-12 Gibco 21331-020
Matrigel Corning 356231 Stock keept at -20°C
Trypsin 0.05% Gibco 25300-054 Stock keept at 4°C
RNAlater – RNA stabilizing reagent Qiagen 76104 Store at room temperature
Dispase  Sigma Aldrich D4818-2MG Stock keept at -20°C
BSA for reconstitution Milipore 81-068 For reconstituition of cytokines  – Stock keept at -20°C
Fetal calf serum (FCS) Gibco 16141079 Stock keept at -20°C
60 well MicroWell trays Sigma Aldrich M0815-100EA
4-well plates Thermo Scientific 176740
95-well plates F bottom Greiner Bio 6555180
Glas bottom plates Ibidi 81158
Disposal micropittes Blaubrand 708745

References

  1. Pagliuca, F. W., Melton, D. A. How to make a functional beta-cell. Development. 140, 2472-2483 (2013).
  2. Percival, A. C., Slack, J. M. Analysis of pancreatic development using a cell lineage label. Exp Cell Res. 247, 123-132 (1999).
  3. Attali, M., et al. Control of beta-cell differentiation by the pancreatic mesenchyme. Diabetes. 56, 1248-1258 (2007).
  4. Johansson, K. A., et al. Temporal control of neurogenin3 activity in pancreas progenitors reveals competence windows for the generation of different endocrine cell types. Dev Cell. 12, 457-465 (2007).
  5. Speier, S., Rupnik, M. A novel approach to in situ characterization of pancreatic beta-cells. Pflugers Arch. 446, 553-558 (2003).
  6. Golosow, N., Grobstein, C. Epitheliomesenchymal interaction in pancreatic morphogenesis. Dev Biol. 4, 242-255 (1962).
  7. Miralles, F., Czernichow, P., Scharfmann, R. Follistatin regulates the relative proportions of endocrine versus exocrine tissue during pancreatic development. Development. 125, 1017-1024 (1998).
  8. Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A system for ex vivo culturing of embryonic pancreas. J. Vis. Exp. , 3979 (2012).
  9. Miralles, F., Battelino, T., Czernichow, P., Scharfmann, R. TGF-beta plays a key role in morphogenesis of the pancreatic islets of Langerhans by controlling the activity of the matrix metalloproteinase MMP-2. J Cell Biol. 143, 827-836 (1998).
  10. Hope, K., Bhatia, M. Clonal interrogation of stem cells. Nat Methods. 8, 36-40 (2011).
  11. Sugiyama, T., Rodriguez, R. T., McLean, G. W., Kim, S. K. Conserved markers of fetal pancreatic epithelium permit prospective isolation of islet progenitor cells by FACS. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 175-180 (2007).
  12. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  13. Dontu, G., et al. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes Dev. 17, 1253-1270 (2003).
  14. Smukler, S. R., et al. The adult mouse and human pancreas contain rare multipotent stem cells that express insulin. Cell Stem Cell. 8, 281-293 (2011).
  15. Seaberg, R. M., et al. Clonal identification of multipotent precursors from adult mouse pancreas that generate neural and pancreatic lineages. Nat Biotechnol. 22, 1115-1124 (2004).
  16. Jin, L., et al. Colony-forming cells in the adult mouse pancreas are expandable in Matrigel and form endocrine/acinar colonies in laminin hydrogel. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 3907-3912 (2013).
  17. Sugiyama, T., et al. Reconstituting pancreas development from purified progenitor cells reveals genes essential for islet differentiation. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 12691-12696 (2013).
  18. Huch, M., et al. Unlimited in vitro expansion of adult bi-potent pancreas progenitors through the Lgr5/R-spondin axis. Embo J. , (2013).
  19. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. , (2009).
  20. Ootani, A., et al. Sustained in vitro intestinal epithelial culture within a Wnt-dependent stem cell niche. Nat Med. 15, 701-706 (2009).
  21. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6, 25-36 (2010).
  22. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494, 247-250 (2013).
  23. Lukacs, R. U., Goldstein, A. S., Lawson, D. A., Cheng, D., Witte, O. N. Isolation, cultivation and characterization of adult murine prostate stem cells. Nat Protoc. 5, 702-713 (2010).
  24. Rock, J. R., et al. Basal cells as stem cells of the mouse trachea and human airway epithelium. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 12771-12775 (2009).
  25. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472, 51-56 (2011).
  26. Spence, J. R., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro. Nature. 470, 105-109 (2011).
  27. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 10, (2013).
  28. Greggio, C., et al. Artificial three-dimensional niches deconstruct pancreas development in vitro. Development. 140, 4452-4462 (2013).
  29. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45, 593-605 (2007).
check_url/cn/51725?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Greggio, C., De Franceschi, F., Figueiredo-Larsen, M., Grapin-Botton, A. In Vitro Pancreas Organogenesis from Dispersed Mouse Embryonic Progenitors. J. Vis. Exp. (89), e51725, doi:10.3791/51725 (2014).

View Video