Summary

الأرنب نموذج الدم تحويلة لدراسة الحاد وعقابيل في وقت متأخر نزيف تحت العنكبوتية: الجوانب التقنية

Published: October 02, 2014
doi:

Summary

The experimental intracranial pressure-controlled blood shunt subarachnoid hemorrhage (SAH) model in the rabbit combines the standard procedures — subclavian artery cannulation and transcutaneous cisterna magna puncture, which enables close mimicking of human pathophysiological conditions after SAH. We present step-by-step instructions and discuss key surgical points for successful experimental SAH creation.

Abstract

إصابات الدماغ في وقت مبكر وتأخر بالتشنج الدماغي كل من يساهم في نتائج سلبية بعد نزيف تحت العنكبوتية (SAH). النماذج الحيوانية استنساخه والسيطرة عليها التي تحاكي كل من الظروف غير شائعة في الوقت الحاضر. ولذلك، هناك حاجة إلى نماذج جديدة من أجل محاكاة الظروف المرضية في جسم المريض الإنسان الناجمة عن SAH.

ويصف هذا التقرير الفروق الدقيقة الفنية للأرنب الدم تحويلة نموذج SAH التي تمكن السيطرة على الضغط داخل المخ (ICP). يتم وضع تحويلة خارج الجسم بين النظام الشرياني والفضاء تحت العنكبوتية، والتي تمكن-الفاحص مستقلة SAH في الجمجمة مغلقة. خطوة بخطوة وصفت التعليمات الإجرائية والمعدات اللازمة، فضلا عن الاعتبارات التقنية لإنتاج نموذج مع الحد الأدنى من الوفيات والمراضة. يتم وصف التفاصيل المهمة المطلوبة لإنشاء الجراحي الناجح لهذا النموذج SAH أرنب قوي وبسيط وثابت التي تسيطر عليها ICP.

Introduction

أمهات الدم، نزيف تحت العنكبوتية (SAH) هي واحدة من أكثر الظروف عصبية مرضية تهدد الحياة، وكثيرا ما يؤدي إلى الضرر العصبي الدائم أو الوفاة 1. وقد ركزت بحوث سابقة على بالتشنج الدماغي المتأخر (DCVS) كما المسببات الرئيسي للعجز العصبية المرتبطة SAH 2. ومع ذلك، فإن النتائج السريرية الفقيرة عموما من المرضى الذين يعانون من SAH بعد علاج بالتشنج أدى إلى توسيع نطاق التركيز على البحوث لتشمل تأثيرات إصابات الدماغ في وقت مبكر (بنك الإمارات الدولي) بعد SAH 3. فهم أكبر لأهمية كل من بنك الإمارات الدولي وDCVS في المساهمة في النتائج السريرية الفقيرة بعد SAH أمر ضروري لتطوير استراتيجيات علاجية أكثر فعالية.

حتى الآن، كانت مفردة ومزدوجة حقن الدم الذاتي في صهريج ماجنا الطريقة المعيارية لSAH تحريض لدراسة DCVS 2-6. على الرغم يشيع استخدامها في الدراسات السابقة،هذا النموذج الأرجح لا يتم إنتاج تغييرات عصبية مرضية الرئيسية المرتبطة SAH يسببها بنك الإمارات الدولي 7. في المقابل، يعرف ثقب اللف لإنتاج التغيرات المرضية في جسم المريض الحاد التي تحاكي جزئيا من أعراض بنك الإمارات الدولي 7.

ويصف هذا التقرير نموذجا أرنب رواية SAH مصممة لتمكين التحقيق في كل من بنك الإمارات الدولي وDCVS، مما يسمح توصيف أكثر دقة للأمراض التي يسببها SAH 8-10. مع تقنية وصفها، ويتم تكييف القياسية صهريج ماجنا النموذج من خلال ربط نظام الشرايين من الشريان تحت الترقوة وصهريج ماجنا عبر تحويلة خارج الجسم. وبالتالي ربط تدفق الدم إلى فسيولوجيا الأرنب ويقودها التدرج الضغط بين الدم الشرياني والضغط داخل الجمجمة. يتوقف النزيف عند الضغط داخل المخ (ICP) يساوي ضغط الدم الانبساطي والدم في نظام تحويلة يتخثر. استخدام المضيف & #8217؛ ق الفيزيولوجيا يقلل تعتمد على الاستقراء الفاحص SAH، مما يؤدي إلى نموذج أكثر اتساقا من SAH التي تنتج كلا من بنك الإمارات الدولي وموثوق الظواهر DCVS 3،8-10.

Protocol

واستخدمت 3.5 كجم لهذا الإجراء – ثلاث إناث الأرانب نيوزيلندا الشهر القديمة وزنها 2.5. تم إجراء الدراسة وفقا للمعاهد الوطنية للصحة المبادئ التوجيهية لرعاية واستخدام حيوانات التجارب وبموافقة لجنة رعاية الحيوان في كانتون برن، سويسرا (الموافقة رقم 105/13). أجريت جميع العمليات…

Representative Results

نموذج تحويلة أرنب الدم من SAH وصفها في هذا التقرير تنتج بنك الإمارات الدولي في قرن آمون (الشكل 2A، B)، القشرة القاعدية (الشكل 2A، B)، والأوعية الدموية الدماغية (الشكل 2C) في أقرب وقت 24 ساعة بعد الإصابة، ويبين صفة توزيع الدم (الشكل 2D) …

Discussion

نموذج تحويلة تنتج أمراض مماثلة لتلك التي لوحظت في البشر بعد الحادة SAH 3،8،10. وقد اقترح أن بنك الإمارات الدولي قد تفاقم، والحفاظ بل وتؤدي إلى DCVS 12، وعلى هذا النحو هذا النموذج قد تساعد في التحقيق في كل من مراحل DCVS المبكرة والمتأخرة، بما في ذلك بنك الإمارات الد…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

المؤلفان بالشكر لوري فون Melchner، مستشفى جامعة برن، قسم جراحة المخ والأعصاب، برن، سويسرا، لتصحيح التجارب المطبعية وتحرير مخطوطة وPaskus إرميا، مستشفى الأطفال في بوسطن، بوسطن، MA لتصحيح التجارب المطبعية المسودة الأولية. نحن نقدر إدارة ماهرا الرعاية الحيوانية، والتخدير، والمساعدة المنطوق من دانيال METTLER، DVM، وماكس مولر، DVM، دانيال Zalokar، وOlgica Beslac، التجريبي المركز الجراحي، قسم البحوث السريرية في جامعة برن، برن، سويسرا. نشكر مايكل Lensch، رئيس البحوث ممرضة بقسم العناية المركزة، مستشفى جامعة برن وجامعة برن، برن، سويسرا، لرصد البيانات في الوقت الحقيقي، وبعد تجهيز من المعلمات الفسيولوجية. نشكر إدين Nevzati، كارل موروي، وسالومي إيرهارت، مختبر المساعدة التقنية والمنطوق الممتازة.

وأيد هذا العمل من قبل وزارة Intensivالبريد العناية الطبية، مستشفى جامعة برن وجامعة برن، برن، سويسرا، وإدارة البحوث السريرية في جامعة برن، برن، سويسرا، وصندوق البحوث من Kantonsspital أراو، أراو، سويسرا. نشكر إلسفير، للحصول على إذن لطبع أرقام 1 و 2.

Materials

Name Company Catalog Number Comments/Description
Equipment
operation microscope Zeiss, Jena, Germany Zeiss, OPMI-MD surgical microscope
surgical equipment B. Braun, Germany forceps medical n°5, vessel sciccors 8cm, microclip 4mm
respirator Hugo Sachs
hair clipper 3M Surgical Clipper   Starter Kit 9667A
body warm plate FHC
blood gas analyzer Radiometer, Copenhagen, Denmark ABL 725
cardiac monitoring Camino Multi-Parameter Monitor, Integra, Plainsboro, NJ, US AP-05
software analysis BIOPAC Systems, Inc., Goleta, CA, USA Biopac MP100 and acqKnowledge software,version 3.8.1
software analysis ImagePro Discovery, MediaCybernetics, Silver Spring, MD, USA image-Pro Plus version 
angiography apparatus DFP 2000 A-Toshiba MIIXR0001EAA
ICP monitor Camino Laboratories, San Diego, CA, USA ICP monitor, Model 110-4B
blood flow monitor Oxford Optronix Ltd., Oxford, UK CAL KIT microsphere solution
laser-Doppler flowmetry fine needle probes  Oxford Optronix Ltd., Oxford, UK MNP110XP, 0.48 mm diameter
pressure tube B. Braun, Germay PE 1.0 mm × 2.0 mm
anesthesia monitor GE Medical Systems, Switzerland  Datex S5 Monitor
Material
20 G vascular catheter Smiths Medical Jelco i.v. catheter, REF 4057
5.5F three-lumen central venous catheter  Connectors, Tagelswangen, Switzerland silicone catheter STH-C040
22Gx40mm needle  Emergo Group Inc., Netherlands
high-speed microdrill Stryker, Solothurn, Switzerland 5400-15 
bone wax Ethicon, Johnson & Johnson,NJ, USA ETHW31G
bipolar forceps Aesculap, Inc., PA, US US349SP 
Ketamin Any generic product
Xylazine Any generic product
Buprenorphine Any generic product
Fentanyl Any generic product
transdermal fentanyl matrix patches  Any generic product
Lidocaine 1%  Any generic product
4% papaverin HCl  Any generic product
Neomycin sulfate  Research Organics Inc., OH, USA Any generic product
Povidone-iodine  Any generic product
0.9% sodium chloride Any generic product
Iopamidol  Abott Laboratories, IL, USA Any generic product
3-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP824G
5-0 non absorbable suture Ethicon Inc., USA 8618G
4-0 polyfilament sutures Ethicon Inc., USA VCP284G

References

  1. Taylor, T. N., et al. Lifetime cost of stroke in the United States. Stroke; a journal of cerebral circulation. 27, 1459-1466 (1996).
  2. Kikkawa, Y., Kameda, K., Hirano, M., Sasaki, T., Hirano, K. Impaired feedback regulation of the receptor activity and the myofilament Ca2+ sensitivity contributes to increased vascular reactiveness after subarachnoid hemorrhage. Journal of cerebral blood flow and metabolism : official journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 30, 1637-1650 (2010).
  3. Marbacher, S., Fandino, J., Kitchen, N. D. Standard intracranial in vivo animal models of delayed cerebral vasospasm. British journal of neurosurgery. 24, 415-434 (2010).
  4. Marbacher, S., Neuschmelting, V., Graupner, T., Jakob, S. M., Fandino, J. Prevention of delayed cerebral vasospasm by continuous intrathecal infusion of glyceroltrinitrate and nimodipine in the rabbit model in vivo. Intensive care medicine. 34, 932-938 (2008).
  5. Zhou, M. L., et al. Comparison between one- and two-hemorrhage models of cerebral vasospasm in rabbits. Journal of neuroscience. 159, 318-324 (2007).
  6. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58, 1190-1197 (2006).
  7. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65, 331-343 (2009).
  8. Marbacher, S., et al. A new rabbit model for the study of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of neuroscience. 208, 138-145 (2012).
  9. Marbacher, S., et al. Outer skull landmark-based coordinates for measurement of cerebral blood flow and intracranial pressure in rabbits. Journal of neuroscience methods. 201, 322-326 (2011).
  10. Marbacher, S., et al. Extra-intracranial blood shunt mimicking aneurysm rupture: intracranial-pressure-controlled rabbit subarachnoid hemorrhage model. Journal of neuroscience. 191, 227-233 (2010).
  11. Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model. J Neurosci Methods. 167, 327-334 (2008).
  12. Macdonald, R. L. Delayed neurological deterioration after subarachnoid haemorrhage. Nature reviews. Neurology. 10, 44-58 (2014).
  13. Zhang, Z. W., et al. Platelet-derived growth factor-induced severe and chronic vasoconstriction of cerebral arteries: proposed growth factor explanation of cerebral vasospasm. Neurosurgery. 66, 728-735 (2010).
  14. Laslo, A. M., Eastwood, J. D., Chen, F. X., Lee, T. Y. Dynamic CT perfusion imaging in subarachnoid hemorrhage-related vasospasm. AJNR. American journal of neuroradiology. 27, 624-631 (2006).
  15. Shao, Z., et al. Effects of tetramethylpyrazine on nitric oxide/cGMP signaling after cerebral vasospasm in rabbits. Brain research. 1361, 67-75 (2010).
  16. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1086-1091 (1995).
  17. Veelken, J. A., Laing, R. J., Jakubowski, J. The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1279-1283 (1995).
  18. Zakhartchenko, V., et al. Cell-mediated transgenesis in rabbits: chimeric and nuclear transfer animals. Biology of reproduction. 84, 229-237 (2011).
  19. Capecchi, M. R. Gene targeting in mice: functional analysis of the mammalian genome for the twenty-first century. Nature reviews. Genetics. 6, 507-512 (2005).
  20. Flisikowska, T., et al. Efficient immunoglobulin gene disruption and targeted replacement in rabbit using zinc finger nucleases. PloS one. 6, e21045 (2011).
  21. Nakajima, M., et al. Effects of aging on cerebral vasospasm after subarachnoid hemorrhage in rabbits. Stroke. 32, 620-628 (2001).
check_url/cn/52132?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Andereggen, L., Neuschmelting, V., von Gunten, M., Widmer, H. R., Takala, J., Jakob, S. M., Fandino, J., Marbacher, S. The Rabbit Blood-shunt Model for the Study of Acute and Late Sequelae of Subarachnoid Hemorrhage: Technical Aspects. J. Vis. Exp. (92), e52132, doi:10.3791/52132 (2014).

View Video