Summary

ميكرومانيبوليشن الكروموسومات في سبيرماتوسيتيس الحشرات

Published: October 22, 2018
doi:

Summary

يصف لنا في هذا البروتوكول، واختيار وإعداد الخلايا المناسبة ميكرومانيبوليشن واستخدام ميكرومانيبولاتور كهرضغطية لتغيير موضع الكروموسومات داخل تلك الخلايا.

Abstract

ميكرومانيبوليشن الكروموزومات كانت وسيلة أساسية لإلقاء الضوء على إليه كونجريشن كروموسوم، وحاجز المغزل، وحركات كروموسوم طور الصعود، وكان مفتاح لفهم ما هي الضوابط حركات كروموسوم خلال تقسيم الخلية. يمكن استخدام بيولوجي مهرة ميكرومانيبولاتور لفصل الكروموسومات من محور الدوران، لإعادة تعيين موضع الكروموزومات داخل الخلية، وتطبيق القوات على الكروموسومات باستخدام إبرة زجاجية صغيرة مع تلميح جيد جداً. بينما يمكن جعل اضطرابات الكروموسومات باستخدام أساليب أخرى مثل تعويض بصري واستخدامات أخرى لليزر، حتى الآن، لا توجد طريقة أخرى يسمح إعادة تنظيم المكونات الخلوية بمقياس من عشرات إلى مئات ميكرون مع قليل من أي ضرر للخلية .

يتم اختيار وإعداد الخلايا المناسبة ميكرومانيبوليشن الكروموسومات، تصف على وجه التحديد إعداد جندب والكريكيت spermatocyte الثقافات الأولية لاستخدامها في تصوير خلية يعيش وميكرومانيبوليشن، ووصف هنا. وباﻹضافة إلى ذلك، نعرض بناء إبرة لاستخدامها لنقل الصبغيات داخل الخلية، واستخدام ميكرومانيبولاتور كهرضغطية تسيطر جويستيك بإبرة زجاجية الملحقة بها لتغيير موضع الكروموسومات داخل تقسيم الخلايا. ويظهر عينة نتيجة استخدام ميكرومانيبولاتور لفصل كروموسوم من مغزل في سبيرماتوسيتي الأولية وتغيير موضع هذا الكروموسوم داخل الخلية.

Introduction

وكشفت ميكرومانيبوليشن أجزاء إليه كونجريشن كروموسوم، وحاجز المغزل، وحركات كروموسوم طور الصعود. وكان المنشور أقرب وصف نتائج التجارب ميكرومانيبوليشن روبرت تشامبرز1. استخدام الدوائر ميكرومانيبولاتور ميكانيكية مع إبرة زجاج مرفقة التحقيق في السيتوبلازم لعدد من أنواع مختلفة من الخلايا. ولسوء الحظ، تباين الأساليب التي يسمح التصور من الكروموسومات والعديد من المكونات الخلوية الأخرى في الخلايا الحية لم تكن متاحة في ذلك الوقت، حيث لا تستطيع أن تثبت التجارب الدوائر آثار إعادة تموضع هذه المكونات الخلوية. ميكرومانيبوليشنز المبكر التي غيرت موقف كروموسوم يستخدم جهاز الدوائر لاكتساح ميدزوني المغزل في طور الصعود الخلايا، تبين أن مثل هذه المعالجات يمكن أن تغير موقف كروموسوم الأسلحة في طور الصعود جندب نيوروبلاستس2 . نيكلاس ومعاونيه كانوا الأول من أداء غرامة ميكرومانيبوليشنز من الكروموسومات، تمتد الكروموسومات3، وفصل لهم من محور الدوران والحث إعادة توجيه3،4، استقرار مالورينتيشن تطبيق التوتر إلى الكروموسومات6،،من57، وقياس القوى المنتجة بمغزل في طور الصعود8،9. أعمال أخرى بالمعمل نيكلاس أظهرت أيضا أن حبيبات هيولى التلاعب10 وأن سينتروسوميس يمكن أن تكون إعادة ميكرومانيبوليشن11. ميكرومانيبوليشن ليست مفيدة فقط لنقل الكروموسومات والمكونات الخلوية الأخرى. يمكن قطع نظيفة من خلال مغزل الانقسامية في الخلايا ديميمبراناتيد12 إبرة ميكرومانيبوليشن أو يمكن استخدامها لحل المغلف النووية13. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن أن تنصهر فيها الخلايا المتجاورة ميكرومانيبوليشن14،15.

مع طائفة واسعة من التجارب المثيرة للاهتمام التي يمكن القيام به باستخدام ميكرومانيبوليشن، فمن المدهش للوهلة الأولى أن ميكرومانيبوليشن تجارب أجريت بعدد قليل جداً من علماء الأحياء كروموسوم. أحد أسباب هذا القصور هو أن تقسيم ميتوتيكالي الخلايا المستزرعة التي مشتقة من الأنسجة الفقاريات وتستخدم عادة لدراسة الحركات كروموسوم صعبة للغاية في ميكرومانيبولاتي. عموما لديهم هذه الخلايا زراعة الأنسجة سيتوسكيليتون القشرية أن “يحصل في الطريق” من ميكرومانيبوليشن إبرة، والكروموسومات أما لا يمكن الوصول بالإبرة أو يطحن الإبرة عن طريق الخلية، مما يؤدي إلى تمزق الخلايا والموت. ونحن، والأخرى المجربون الذين يستخدمون ميكرومانيبوليشن، وجدت الخلايا المفصلية لتكون قابلة ميكرومانيبوليشن. وتنتشر بسهولة تحت طبقة النفط الهالوكربون spermatocytes المفصلية ويبدو cytoskeleton القشرية أقل بكثير من قوي الكامنة وراء غشاء الخلية أثناء تقسيم الخلية. وهكذا، الخصيتين المفصلية توفر مصدرا جيدا لخلايا تقسيم ميوتيكالي (سبيرماتوسيتيس) وميتوتيكالي تقسيم الخلايا (سبيرماتوجونيا) مع الكروموزومات يمكن الوصول بسهولة ميكرومانيبوليشن. تقطيع المسلسل من spermatocyte جندب ثابت خلال تلاعب كشفت أن الإبرة ابدأ تخترق غشاء الخلية؛ تبعثر غشاء الخلية حول الإبرة (نيكلاس سنغ، اتصال شخصي). سبيرماتوسيتيس من عدد من الأصناف العنكبوت والحشرات، وقد تم ميكرومانيبولاتيد بنجاح، بما في ذلك الجنادب، mantids الصلاة وذباب الفاكهة، رافعة الذباب، الصراصير، سبيتليبوجس، العث، العناكب الأرملة السوداء، عناكب القبو والجرم السماوي نسج العناكب 37،،،من1719،18،20،،من2122. يمكن أن تكون الخلايا المستزرعة، وتقسيم ميتوتيكالي من الحشرات ميكرومانيبولاتيد. على سبيل المثال، قد الكروموسومات في neuroblasts جندب في ثقافة الابتدائي الكروموسومات التي يمكن بسهولة ميكرومانيبولاتيد2،23. أننا نشتبه في أنه مثقف تتوفر خطوط المستمدة من المورفولوجية والحشرات الأخرى سوف تكون أيضا ميكرومانيبولاتابل، على الرغم من أننا لم تختبر هذه التقنية مع هذه الخلايا. ونحن سوف تظهر كيف يمكن إعداد تقسيم الخلايا من الجنادب والصراصير ميكرومانيبوليشن. الصراصير سهلة للحصول على معظم محلات الحيوانات الأليفة في أي وقت من السنة. الجنادب فقط التي يمكن الحصول عليها بسهولة في الصيف إلا إذا كان الباحث الوصول إلى مستعمرة مختبر، ولكن الأنواع المستخدمة (سانجوينيبيس ميلانوبلوس) وقد سويت بالأرض بسهولة الخلايا والكروموسومات طويلة، وسهلة للتعامل.

وهناك سبب آخر لماذا فعلت التجارب ميكرومانيبوليشن حفنة صغيرة من علماء الأحياء هو أن ميكرومانيبولاتورس أن تتحرك الكروموسومات نادراً ما تتوفر في السوق. وقد وجدنا أن يتحكم ميكرومانيبولاتور كهرضغطية جويستيك تسيطر حركة إبرة مع لا اهتزاز أو الانجراف الفاصلة بين الإبرة وحركة المقود، ولكن يمكن دفع أنواع أخرى من المتلاعبين بنجاح أيضا الكروموسومات حولها في الخلية. ميكرومانيبولاتورس صممه إيليس وبيج25،26 تعتبر مثالية ميكرومانيبوليشن الكروموسومات، على الرغم من أنها تستخدم تكنولوجيا قديمة. ميكرومانيبولاتورس كهرضغطية المتوفرة حاليا والمستخدمة عادة في الكهربية؛ ومع ذلك، ليست هذه ميكرومانيبولاتورس عادة ما تسيطر عليها جويستيك. عصا التحكم هو المفتاح لحركات سلسة المطلوبة من أجل ميكرومانيبوليشن نجاح، وحتى ينبغي تشييد جويستيك مخصصة لجعل ميكرومانيبولاتورس كهرضغطية متاحة في الوقت الراهن العمل من أجل ميكرومانيبوليشن كروموسوم. وقد ميكرومانيبولاتورس كهرضغطية تسيطر على عصا التحكم التي تعمل بشكل أفضل مراقبة الموقف المباشر، الذي يترجم حركة الجويستيك مباشرة إلى حركة إبرة.

يمكن بناؤها ميكرومانيبولاتور كهرضغطية المصممة حديثا من أجزاء المتاحة تجارياً التي يمكن استبدالها بسهولة، ومن بعض المكونات المطبوعة ثلاثي الأبعاد الصغيرة، وأنه يعمل بشكل جيد كروموسوم ميكرومانيبوليشن24. وقد ميكرومانيبولاتور حساسية قابلة للضبط أو دليل المواقع الخشنة، ولا الاهتزاز، والانجراف أو متخلفة في حركة الإبرة، ومراقبة الموقف المباشر من الإبرة. يمكن للعلماء بناء ميكرومانيبولاتور استخدام الإرشادات المتوفرة على الإنترنت24. وفيما يلي الطرق لإعداد ثقافة خلية الأولية سبيرماتوسيتي وميكرومانيبولاتينج الكروموسومات داخل الخلايا في تلك الثقافة.

Protocol

1-إعداد ثقافة الخلية الأولية Spermatocyte الحشرات ميكرومانيبوليشن إعداد الشرائح الحصول على شريحة زجاجية 75 مم × 25 مم مع فتحه دائرية قطرها 20 ملم قطع في وسط الشريحة.ملاحظة: هذه قطعت من ورقة واحدة من زجاج النوافذ ليكون بحجم شريحة زجاجية مع وجود ثقب في الوسط. تشغيل ساترة 25 مم × 25 مم #1.5…

Representative Results

ويبين الشكل 6 ميكرومانيبوليشن عينة من 2 جندب المتاخمة سبيرماتوسيتيس الأولية في عدة أمثلة للاستخدامات الممكنة ميكرومانيبوليشن. هذه التجربة تم استخدام مجهر تباين مرحلة مقلوب،. 0:00 (أوقات سيظهر في min:s) تظهر الصورة كلا الخليتين قبل التلاعب. ويرد كروموسوم واحد …

Discussion

مع الممارسة، تتحرك الكروموسومات في الخلية يمكن أن تصبح طبيعة ثانية. الإبر التي تكون شديدة بما فيه الكفاية ورقيقة ذات الرؤوس بما فيه الكفاية من الصعب على “الحصول على براعة من” اختﻻق، ولكن هذه القدرة كما يأتي مع الممارسة. الإبر التي على ما يرام حتى أنها تشوه عند نقل النفط الهالوكربون لن يكون …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ونحن نشكر جيسيكا قاعة لمناقشة قيمة لها.

Materials

VWR micro cover glass VWR 48366 249 25×25 mm, no 1.5
Dow Corning High Vacuum Grease VWR AA44224-KT
KEL-F Oil #10 Ohio Valley Specialty Chemical 10189
Microdissecting Scissors, Stainless Steel Sigma-Aldrich S3271-1EA
Dumont #5 fine foreceps Fine Science Tools 11254-20
0.85 mm outer diameter, 0.65 mm inner diameter Pyrex glass tube  Drummond Scientific Custom order–call to request
Inverted, Phase contrast microscope with 10X or 16X low magnification objective and 60X or 100X high magnification objective Any brand
microforge either custom built or Narashige MF-900
micromanipulator either custom built or Burleigh PCS-6000 with custom piezo-controlling joystick PCS-6300

References

  1. Chambers, R. Microdissection studies II. The cell aster: a reversible gelation phenomenon. Journal of Experimental Zoology. 23 (3), 483-505 (1917).
  2. Carlson, J. G. Microdissection studies of the dividing neuroblast of the grasshopper, Chortophaga viridifasciata. Chromosoma. 5 (3), 199-220 (1952).
  3. Nicklas, R. B., Staehly, C. A. Chromosome micromanipulation. I. The mechanics of chromosome attachment to the spindle. Chromosoma. 21 (1), 1-16 (1967).
  4. Nicklas, R. B. Chromosome micromanipulation. II. Induced reorientation and the experimental control of segregation in meiosis. Chromosoma. 21 (1), 17-50 (1967).
  5. Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. 3. Spindle fiber tension and the reorientation of mal-oriented chromosomes. Journal of Cell Biology. 43 (1), 40-50 (1969).
  6. Nicklas, R. B., Ward, S. C. Elements of error correction in mitosis: microtubule capture, release, and tension. Journal of Cell Biology. 126 (5), 1241-1253 (1994).
  7. Li, X., Nicklas, R. B. Mitotic forces control a cell-cycle checkpoint. Nature. 373 (6515), 630-632 (1995).
  8. Nicklas, R. B. Measurements of the force produced by the mitotic spindle in anaphase. Journal of Cell Biology. 97 (2), 542-548 (1983).
  9. Nicklas, R. B. The forces that move chromosomes in mitosis. Annual Review of Biophysics and Biophysical Chemistry. 17, 431-449 (1988).
  10. Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. IV. Polarized motions within the spindle and models for mitosis. Chromosoma. 39 (1), 1026 (1972).
  11. Zhang, D., Nicklas, R. B. The impact of chromosomes and centrosomes on spindle assembly as observed in living cells. Journal of Cell Biology. 129 (5), 1287-1300 (1995).
  12. Nicklas, R. B., Lee, G. M., Rieder, C. L., Rupp, G. Mechanically cut mitotic spindles: clean cuts and stable microtubules. Journal of Cell Science. 94 (Pt 3), 415-423 (1989).
  13. Zhang, D., Nicklas, R. B. Chromosomes initiate spindle assembly upon experimental dissolution of the nuclear envelope in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Biology. 131 (5), 1125-1131 (1995).
  14. Nicklas, R. B. Chromosome distribution: experiments on cell hybrids and in vitro. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B. 227 (955), 267-276 (1977).
  15. Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. The reduction of chromosome number in meiosis is determined by properties built into the chromosomes. Journal of Cell Biology. 150 (6), 1223-1232 (2000).
  16. Church, K., Nicklas, R. B., Lin, H. P. Micromanipulated bivalents can trigger mini-spindle formation in Drosophilamelanogaster spermatocyte cytoplasm. Journal of Cell Biology. 103 (6), 2765-2773 (1986).
  17. Forer, A., Koch, C. Influence of autosome movements and of sex-chromosome movements on sex-chromosome segregation in crane fly spermatocytes. Chromosoma. 40 (4), 417-442 (1973).
  18. Camenzind, R., Nicklas, R. B. The non-random chromosome segregation in spermatocytes of Gryllotalpa hexadactyla. A micromanipulation analysis. Chromosoma. 24 (3), 324-335 (1968).
  19. Ault, J. G., Felt, K. D., Doan, R. N., Nedo, A. O., Ellison, C. A., Paliulis, L. V. Co-segregation of sex chromosomes in the male black widow spider Latrodectus mactans (Araneae, Theridiidae). Chromosoma. 126 (5), 645-654 (2017).
  20. Felt, K. D., Lagerman, M. B., Ravida, N. A., Qian, L., Powers, S. R., Paliulis, L. V. Segregation of the amphitelically attached univalent X chromosome in the spittlebug Philaenus spumarius. Protoplasma. 254 (6), 2263-2271 (2017).
  21. Golding, A. E., Paliulis, L. V. Karyotype, sex determination, and meiotic chromosome behavior in two pholcid (Araneomorphae, Pholcidae) spiders: implications for karyotype evolution. PLoS One. 6, e24748 (2011).
  22. Doan, R. N., Paliulis, L. V. Micromanipulation reveals an XO-XX sex determining system in the orb-weaving spider Neoscona arabesca (Walckenaer). Hereditas. 146 (4), 180-182 (2009).
  23. Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. Micromanipulation of chromosomes reveals that cohesion release during cell division is gradual and does not require tension. Current Biology. 14 (23), 2124-2129 (2004).
  24. . . Biology Micromanipulator. DIY High Precision Micromanipulator. , (2018).
  25. Ellis, G. W. Piezoelectric micromanipulators. Science. 138 (3537), 84-91 (1962).
  26. Ellis, G. W., Begg, D. A., Zimmerman , . A. M., Forer, A. Chromosome micromanipulation studies. Mitosis/Cytokinesis. , 155-179 (1981).
  27. Powell, E. O. A microforge attachment for the biological microscope. Journal. Royal Microscopical Society. 72 (4), 214-217 (1953).
  28. Alsop, G. B., Zhang, D. Microtubules continuously dictate distribution of actin filaments and positioning of cell cleavage in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Science. 117 (Pt 8), 1591-1602 (2004).
  29. Zhang, D., Nicklas, R. B. Anaphase’ and cytokinesis in the absence of chromosomes. Nature. 382, 466-468 (1996).

Play Video

Cite This Article
Lin, N. K., Nance, R., Szybist, J., Cheville, A., Paliulis, L. V. Micromanipulation of Chromosomes in Insect Spermatocytes. J. Vis. Exp. (140), e57359, doi:10.3791/57359 (2018).

View Video