Summary

マウス心筋細胞を一貫して単離するための簡単で効果的な方法

Published: November 11, 2022
doi:

Summary

細胞および分子機能実験の心臓病学のゴールドスタンダードは心筋細胞です。この記事では、マウス心筋細胞を単離するための非ランゲンドルフ法への適応について説明します。

Abstract

高品質の心筋細胞を生成する再現性がありながら技術的に単純な方法の必要性は、心臓生物学の研究に不可欠です。心筋細胞に関する細胞および分子機能実験(収縮、電気生理学、カルシウムサイクリングなど)は、疾患のメカニズムを確立するためのゴールドスタンダードです。マウスは機能実験に最適な種であり、記載された技術は特にマウス心筋細胞の単離のためのものです。ランゲンドルフ装置を必要とする以前の方法では、大動脈カニュレーションのために高レベルのトレーニングと精度が必要であり、しばしば虚血を引き起こします。この分野は、シンプルで再現性があり、生理学的データの取得と培養のために生存可能な筋細胞を生成するランゲンドルフフリーの分離方法に移行しています。これらの方法は、大動脈カニュレーションと比較して虚血時間を大幅に短縮し、確実に心筋細胞を得る。ランゲンドルフフリー法への適応には、氷冷透明化溶液による初期灌流、灌流中に安定した針を保証する安定化プラットフォームの使用、および機能測定および培養に使用する心筋細胞を確実に取得するための追加の消化ステップが含まれます。この方法は簡単かつ迅速に実行でき、技術的なスキルはほとんど必要ありません。

Introduction

何十年もの間、心臓生物学の文献に不可欠なアイデアは、分子作用機序です。信頼できる研究を発表するためには、作用機序を確立する必要があります。分子メカニズムを決定するための確立された戦略は、信頼できるデータを得るために高品質の心筋細胞を必要とする単離心筋細胞研究です。作用機序を決定するために心筋細胞に対して行われる細胞および分子実験は、収縮1、電気生理学2、カルシウム(Ca2+)サイクリング3、筋フィラメントCa2+感受性4、細胞骨格5、代謝6、ホルモンの影響7、シグナル伝達分子8、薬物研究9等。マウスは、遺伝子操作の容易さ、サイズが小さく、寿命が比較的短く、低コストなどにより、ほとんどの心臓生物学実験に最適な種になっています10。しかし、高品質のマウス心筋細胞の信頼性の高い単離は、現在の技術では自明ではありません。

ラボは、ほぼ70年間心筋細胞を分離してきました11。心筋細胞を単離する事実上すべての技術は、さまざまな酵素(コラゲナーゼ、プロテアーゼ、トリプシンなど)を介した心臓の消化に依存しています。初期(1950年代から1960年代)には、心臓を取り除き、はるかに小さな断片に切断し、コラゲナーゼ/プロテアーゼ/トリプシン12を含む溶液中でインキュベートするチャンク法が採用されました。1970年代の研究室では、冠状動脈灌流ベースの分離技術(ランゲンドルフ装置を介した酵素による逆行性灌流)を使用して心筋細胞を単離する改善された「ランゲンドルフ」法13を実施しました。この技術は、今日でもこの分野で筋細胞単離の支配的な方法であり、~50年後の14,15,16。最近の研究では、低酸素時間と虚血性損傷を制限するためにin vivoで心臓をカニューレ挿入することに移行し、優れた心筋細胞分離(より良い収量とより高い品質)をもたらします17。最近、これはin vivoで行う、ランゲンドルフフリー心臓灌流18、19202122に進化した。私たちは、Ackers-Johnsonら18技術に基づいてランゲンドルフフリー心筋細胞分離技術を進化させ、以前の多くの分離技術からさまざまなコンポーネントを採用しました。これらの重要な適応には、氷冷透明化バッファーの注入と、針を安定させるための支持プラットフォームの組み込みが含まれ、心臓の操作を減らします。また、この技術で詳細には、注入されたバッファーの温度制御(37°C)があり、以前に発表されたEDTA灌流が少ないため、in vivo注入から消化までの時間が短縮されました18。心臓の操作を減少させ、したがって穿刺部位のサイズを最小化することによって、冠状動脈の徹底的かつ一定の灌流が得られる。また、二次チャンク法による消化、注入した透明化バッファー中のEDTAの量、およびpHの変更により、この技術を改良しました。ここで説明した技術は、ランゲンドルフ装置を使用する場合と比較して、信頼性が高く、効率的であり、広範なトレーニング/練習を必要としません(表1)。

Protocol

この研究で実施されたすべての手順は、NIHガイドラインに従って、オハイオ州立大学の施設動物管理および使用委員会によって承認されました。 1. 溶液調製 注:バッファー濃度については 、表2 を参照してください。 分離前(筋細胞分離の2週間前まで)灌流バッファーベース:1 Lの超高純度18.2 MΩ·cm H 2 Oに1</sub…

Representative Results

分離の成功を判断する際に調べる要素がいくつかあります。まず、心筋細胞は、 図1で単離された細胞のように、膜のブレブのない棒状でなければなりません。典型的な単離では、筋細胞の~80%が棒状になります。単離によって50%未満の棒状細胞が得られる場合、それは失敗した単離と見なされ、心筋細胞は使用されません。最後に、心筋細胞は静止している必要があり?…

Discussion

当社のランゲンドルフフリー心筋細胞分離技術の主な利点は、ランゲンドルフ装置へのカニューレ挿入を必要としないため、低酸素症と虚血時間を制限することです。心臓の除去、洗浄、吊り下げに数分かかり、筋細胞に虚血性損傷をもたらすことが多い古典的なランゲンドルフ技術の代わりに、私たちの方法には、氷冷透明化溶液を介したin vivo血液透明化が含まれます。氷冷…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、国立衛生研究所助成金R01 HL114940(Biesiadecki)、R01 AG060542(Ziolo)、およびT32 HL134616(SturgillとSalyer)によってサポートされました。

Materials

10 cc Bd Luer-Lok Syringe Fisher Sci 14-827-52
10 mL Pyrex Low-Form Beaker Cole-Palmer UX-34502-01
100 mL polypropylene cap glass media storage bottle DWK Life Sciences UX-34523-00
14 mL Round-Bottom Polypropylene Test Tubes With Cap Fisher Sci 14-959-11B
2,3-Butanedione Monoxime Sigma B0753 >98%
3 cc BD Luer-Lok Syringe Fisher Sci 14-823-435
35 mm glass bottom dishes MatTek Corporation P35G-1.0-20-C
50 mL BD Syringe without Needle Fisher Sci 13-689-8
50 mL Conical Centrifuge Tubes Cole-Palmer EW-22999-84
95% O2 5% CO2
AIMS Space Gel Heating Pad Fisher Sci 14-370-223
BD PrecisionGlide 27 G X 1/2" Hypodermic Needles Becton Dickinson 305109
Bovine Serum Albumin Sigma A3803 Heat shock fraction, lyophilized powder, essentially fatty acid free, >98%
Calcium Chloride dihydrate Sigma C7902 >99%
D-(+)-Glucose Sigma G7021 Suitable for cell culture, >99.5%
DMEM Fisher Sci 11965092
EDTA Fisher Sci AAA1071336
Falcon 100 mm TC-treated Cell Culture Dish Corning 353003
FBS R&D Systems (Bio-techne) S11195
Fisherbrand Isotemp Heated Immersion Circulators Fisher Sci 13-874-432
Hartman Mosquito Hemostatic Forceps World Precision Instruments 15921
Hausser Scientific Hy-Lite Counting Chamber Set Fisher Sci 02-671-11
HEPES Sigma H4034 >99.5%
Labeling Tape Fisher Sci 15-901-10R
Legato 100 Syringe Pump kdScientific 788100
L-glutathione Fisher Sci ICN19467980
Liberase TH Research Grade Sigma 5401135001 High thermolysin concentration
M199 Fisher Sci MT10060CV
Magnesium Chloride Invitrogen AM9530G
Mouse Laminin Corning 354232
Pen/Strep Fisher Sci
Potassium Chloride Sigma P5405 >99%
Precision Digital Reciprocating Water Bath ThermoFisher Scientific TSCIR19
Sodium Bicarbonate Sigma S5761 Suitable for cell culture
Sodium Chloride Sigma S5886 >99%
Sodium phosphate monobasic Sigma S5011 >99%
Sterile Cell Strainer 70 µm Fisher Sci 22-363-548
Student Fine Scissors Fine Science Tools 91460-11
VWR Absorbent Underpads Fisher Sci NC9481815

References

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Cite This Article
Sturgill, S. L., Salyer, L. G., Biesiadecki, B. J., Ziolo, M. T. A Simple and Effective Method to Consistently Isolate Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (189), e63056, doi:10.3791/63056 (2022).

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