Summary

Organotípicas Hippocampal Culturas Slice

Published: February 03, 2011
doi:

Summary

Nós descrevemos um método para preparar organotípicas fatias do hipocampo que pode ser facilmente adaptado a outras regiões do cérebro. Fatias de cérebro são colocadas em membranas porosas e meios de cultura está autorizado a formar uma interface. Este método preserva a arquitetura bruta do hipocampo para até duas semanas em cultura.

Abstract

O hipocampo, um componente do sistema límbico, desempenha um papel importante na memória de longo prazo e navegação espacial 1. Neurônios do hipocampo pode modificar a força de suas conexões, após breves períodos de forte ativação. Esse fenômeno, conhecido como potenciação de longa duração (LTP) pode durar horas ou dias e tornou-se o mecanismo melhor candidato para o aprendizado ea memória 2. Além disso, a anatomia bem definidos e conectividade do hipocampo 3 tornou um sistema modelo clássico para estudar a transmissão sináptica e 4 plasticidade sináptica.

Como nossa compreensão da fisiologia das sinapses do hipocampo cresceu e jogadores molecular tornou-se identificado, a necessidade de manipular proteínas sinápticas tornou-se imperativo. Organotípicas culturas hipocampais oferecer a possibilidade de manipulação genética fácil e intervenção farmacológica, mas precisa manter a organização sináptica que é fundamental para a compreensão da função sinapse em um contexto mais naturalista do que rotina métodos cultura dissociada neurônios.

Aqui apresentamos um método para preparar e cultura fatias do hipocampo que pode ser facilmente adaptado a outras regiões do cérebro. Este método permite fácil acesso às fatias para a manipulação genética usando abordagens diferentes, como infecção viral ou 5,6 Biolistics 7. Além disso, as fatias podem ser facilmente recuperados para ensaios bioquímicos 8, ou transferidos para microscópios para imagens de 9 ou 10 experimentos eletrofisiológicos.

Protocol

1. Antes de iniciar a preparação de fatias do hipocampo. Prepare o slicer tecido, colocando um pedaço de folha de teflon e montagem de uma nova lâmina. Limpe a cultura de tecidos capô (TC) com etanol 70% e definir o interior microscópio de dissecação. Esterilizar o capô, microscópio, slicer tecido e todos os instrumentos de dissecação por 15 minutos com a luz UV. Preparar seis pratos bem TC. Adicionar 750 mL da cultura de mídia fatia (SCM) por bem e colocar insere cultura de c…

Discussion

Este método é baseado no método descrito pela primeira vez por Stoppini et al. 11 e oferece uma forma rápida de fatias do hipocampo cultura. O aspecto mais importante deste protocolo é para manter fatias de estéril e por isso é fundamental para o uso adequado de técnicas estéreis e adequadamente desinfectar e esterilizar todo o material em contato com o tecido.

Fontes diferentes soros podem influenciar a qualidade das fatias. É aconselhável testar vários lotes…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo NINDS – NIH R01NS060756

Materials

Material Name Typ Company Catalogue Number Comment
Cell culture inserts   Millipore PICM03050  
6 well plates   BD Falcon 353046  
Tissue Slicer   Stoelting 51425/51415  
Microscope   Olympus SZX7-ILLD2-100  
Hippocampus dissecting tool   F.S.T 10099-15  
Large utility scissors. Perfection   F.S.T 37500-00/37000-00 Right/ Left handed  
Iris Spatula   F.S.T 10093-13  
Straight spatula   F.S.T 10094-13  
Rounded spoon micro spatula   VWR 57949-039  
Dissecting single cutting edge needle   Electron Microscopy Science 72946  
Dissecting tweezers   Dummont #2  
Small dissecting scissors   F.S.T 14060-10  
MEM Eagle medium   Cellgro 50-019 PB  
Horse serum heat inactivated   Invitrogen 26050-88  
L-Glutamine (200 mM)   Invitrogen 25030081  
CaCl2 (1 M)   Sigma C3881  
MgSO4 (1 M)   Sigma M2773  
Insulin (1 mg/ml), dissolved in HCl 0.01 N   Sigma I0516  
Ascorbic Acid, solution (25%)   Sigma A4544  
D-Glucose   Sigma G5767  
NaHCO3   Sigma S6014  
Hepes   Sigma H7523  
Sucrose   Sigma S5016  
Phenol Red Solution 0.5% in DPBS   Sigma P0290  
KCl   Sigma P3911  
MgCl2 (1 M)   Sigma M9272  

Referenzen

  1. Martin, S. J., Grimwood, P. D., Morris, R. G. Synaptic plasticity and memory: an evaluation of the hypothesis. Annu Rev Neurosci. 23, 649-711 (2000).
  2. Bliss, T. V., Collingridge, G. L., Morris, R. G. I. n. t. r. o. d. u. c. t. i. o. n. Long-term potentiation and structure of the issue. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 358, 607-611 (2003).
  3. Shepherd, G. M. . The synaptic organization of the brain. , (2004).
  4. Malinow, R., Tsien, R. W. Presynaptic enhancement shown by whole-cell recordings of long-term potentiation in hippocampal slices. Nature. 346, 177-180 (1990).
  5. Malinow, R. Introduction of green fluorescent protein (GFP) into hippocampal neurons through viral infection. Cold Spring Harb Protoc. , (2010).
  6. Shi, S., Hayashi, Y., Esteban, J. A., Malinow, R. Subunit-specific rules governing AMPA receptor trafficking to synapses in hippocampal pyramidal neurons. Cell. 105, 331-343 (2001).
  7. Woods, G., Zito, K. Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture. J Vis Exp. , (2008).
  8. Esteban, J. A. PKA phosphorylation of AMPA receptor subunits controls synaptic trafficking underlying plasticity. Nat Neurosci. 6, 136-143 (2003).
  9. Mainen, Z. F. Two-photon imaging in living brain slices. Methods. 18, 231-239 (1999).
  10. Barria, A., Malinow, R. Subunit-specific NMDA receptor trafficking to synapses. Neuron. 35, 345-353 (2002).
  11. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  12. Simoni, A. D. e., Griesinger, C. B., Edwards, F. A. Development of rat CA1 neurones in acute versus organotypic slices: role of experience in synaptic morphology and activity. J Physiol. 550, 135-147 (2003).

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Diesen Artikel zitieren
Opitz-Araya, X., Barria, A. Organotypic Hippocampal Slice Cultures. J. Vis. Exp. (48), e2462, doi:10.3791/2462 (2011).

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