I metodi per esaminare le ghiandole linfatiche e ematociti concentrati in<em> Drosophila</em> Le larve

Summary

Sistemi ematopoietiche mammiferi Drosophila e condividono molte caratteristiche comuni, rendendo Drosophila un modello genetico interessante per lo studio ematopoiesi. Qui mostriamo dissezione e montaggio del grande organo ematopoietico larvale per immunoistochimica. Descriviamo anche metodi per saggiare i vari compartimenti ematopoietici larvali tra emociti circolanti e le cellule di cristallo sessili.

Abstract

Molti paralleli esistenti tra i sistemi ematopoietiche mammiferi Drosophila e, anche se Drosophila manca il lignaggio linfoide che caratterizzano mammiferi immunità adattativa. Drosophila e mammiferi emopoiesi si verificano in spazialmente e temporalmente distinte fasi per la produzione di diverse linee cellulari del sangue. Entrambi i sistemi mantengono riserve di progenitori di cellule del sangue con il quale espandere o sostituire linee maturi. Il sistema ematopoietico permette Drosophila e mammiferi per rispondere e di adattarsi alle sfide del sistema immunitario. È importante sottolineare che i regolatori trascrizionali e vie di segnalazione che controllano la generazione, la manutenzione, e la funzione del sistema ematopoietico sono conservati dalle mosche ai mammiferi. Queste somiglianze consentono Drosophila da utilizzare per geneticamente modello di sviluppo ematopoietiche e la malattia.

Qui dettaglio test per esaminare il sistema ematopoietico di Drosophila larve. Inparticolare, si delineano i metodi per misurare il numero di cellule del sangue e la concentrazione, visualizzare una specifica stirpe maturo in vivo, ed eseguire immunoistochimica sulle cellule del sangue in circolazione e nell'organo ematopoietiche. Questi test possono rivelare cambiamenti nell'espressione genica e dei processi cellulari tra cui la segnalazione, la sopravvivenza, la proliferazione e la differenziazione e può essere utilizzato per indagare su una serie di domande riguardanti emopoiesi. In combinazione con gli strumenti genetici disponibili in Drosophila, questi test possono essere utilizzati per valutare il sistema ematopoietico su alterazioni genetiche definiti. Sebbene non specificamente qui delineato, questi saggi possono anche essere utilizzati per esaminare l'effetto di alterazioni ambientali, come infezioni o dieta, sul sistema ematopoietico.

Introduction

I complessi meccanismi che regolano i fattori di trascrizione e vie di segnalazione che coordinano lo sviluppo del sistema ematopoietico e che malfunzionamento malattie ematologiche sono ancora poco chiare. Questi fattori di trascrizione e vie di segnalazione, così come la loro regolamentazione, sono altamente conservati tra Drosophila e mammiferi emopoiesi ^1-5. Così il sistema ematopoietico Drosophila rappresenta un ottimo modello genetico per definire i meccanismi molecolari che controllano l'emopoiesi e malattie ematologiche sottostanti.

Simile a mammiferi, Drosophila generare cellule del sangue, chiamate ematociti concentrati, in spazialmente e temporalmente distinte fasi di emopoiesi. Tradizionalmente, Drosophila emopoiesi è stato pensato per essere limitato alle fasi del mesoderma embrionale e nella ghiandola linfatica larvale. Recenti studi dimostrano che emopoiesi si verifica anche in larvale clu sessilisters e nell'adulto addome ^6-8. Tutte le fasi ematopoietiche producono due tipi di ematociti concentrati mature: plasmatocytes e cellule di cristallo. Plasmatocytes sono cellule macrofagi come coinvolti nella fagocitosi, l'immunità innata, e la guarigione della ferita. celle a cristalli contengono pro-phenoloxidases necessari per melanizzazione, una reazione usato in risposte immunitarie insetti e la guarigione delle ferite. Emopoiesi larvale può generare un terzo tipo hemocyte maturo, chiamato lamellocyte, in risposta ad alcune sfide immunitario come parassitoide vespa infezione ^9,10. Lamellocytes sono grandi, cellule aderenti che funzionano, in collaborazione con plasmatocytes e le cellule di cristallo, per incapsulare e neutralizzare le uova di vespa di cui in Drosophila larve. In assenza di parassitizzazione, lamellocytes non si trovano nel wild-type larve. masse melanotic assomigliano melanized, uova vespa incapsulati; molti ceppi mutanti di Drosophila sviluppano masse melanotici in assenza di parassitizzazione. La presenza di Lamellociti e / o masse melanotici possono essere indicativi di anomalie ematopoietiche. In realtà, il fenotipo di massa melanotico è stato utilizzato per identificare i geni e meccanismi coinvolti nella emopoiesi ^11-14.

Il sistema ematopoietico larvale è il più ampiamente studiato fino ad oggi. Si compone di ematociti concentrati circolanti nel emolinfa, i cluster hemocyte sessili fantasia sotto la cuticola, e ematociti concentrati che risiedono nella ghiandola linfatica. La ghiandola linfatica è una serie di lobi bilaterali collegati al vaso dorsale. Ogni lobo principale della ghiandola linfatica è diviso in tre zone principali. La zona più esterna è conosciuta come la zona corticale e contiene maturazione hemocytes. La zona più interna viene chiamata zona midollare e comprende precursori hemocyte quiescenti. La terza zona, la segnalazione posteriori centro, è un piccolo gruppo di cellule alla base della ghiandola linfa che agiscono come una cellula simile nicchia stelo. I primi lavori stabilito funzioni critiche per Notch ^15-18 </sup>, Riccio ^19,20, JAK-STAT ¹⁸ e ali ²¹ attività per regolare lo sviluppo della ghiandola linfa larvale. Studi più recenti hanno dimostrato che BMP ^22, FGF-Ras ^23, e Hippo ^24,25 funzione di segnalazione anche all'interno della ghiandola linfatica larvale.

Quattro saggi ematopoietiche larvali qui esposti descrivono 1) misura la concentrazione hemocyte circolazione, definito come numero di cellule per unità di volume, 2) l'isolamento e il fissaggio di circolazione hemocytes per immunoistochimica, 3) la visualizzazione di cellule di cristallo in vivo, e 4) dissezione, il fissaggio e il montaggio ghiandole linfatiche per immunoistochimica. Questi test possono essere utilizzati come letture ematopoietiche per valutare le funzioni ei regolamenti dei percorsi di segnalazione nel sistema ematopoietico larvale. Mentre questi metodi sono stati utilizzati in precedenza nel campo, documentazione visiva di questi saggi ha iniziato solo recentemente ^8,26-30. Diverse pubblicazioni citate qui ci sono di aiutorisorse ful che descrivono metodi simili e marcatori ematopoietici ^26,31-33. Inoltre, Trol e Viking sono marcatori utili della membrana linfatico della ghiandola seminterrato.

Protocol

1. circolazione Concentrazione hemocyte Per ottenere larve di circa la stessa fase di sviluppo per questa analisi, limitare la raccolta delle uova da garantire che le femmine di deporre le uova per un periodo di tempo fisso di 2-6 ore. Raccogliere le larve nel sezionare pozzi piatto pieno di 1x tampone fosfato (PBS, Tabella 1). Per ogni larva, mettere 10 microlitri 1x PBS in una provetta su ghiaccio e 10 microlitri 1x PBS su un rilievo da dissezione pulito. Posizionare il …

Representative Results

Di circolazione hemocyte Concentrazione Numeri hemocyte aumentano durante lo sviluppo larvale 35. Per illustrare che questo metodo rileva le differenze nei numeri hemocyte e concentrazione, indipendentemente dalla causa biologica, abbiamo misurato concentrazioni hemocyte di ritardo e non ritardata larve. Perdita di ormone prothoracicotropic (ptth) per l'ablazione genetica dei neuroni ptth produttrici (ptth> cupo…

Discussion

Su alterazione genetica o ambientale, i quattro metodi descritti qui possono essere utilizzati singolarmente o in combinazione di analizzare i processi distinti durante emopoiesi, come la segnalazione, la sopravvivenza, la proliferazione e la differenziazione Drosophila emopoiesi è un processo dinamico.; il numero di hemocytes per animale aumenta ³⁵ e la struttura e l'espressione genica della ghiandola linfatica variazioni ³² durante lo sviluppo. Prima di eseguire questi test, quindi,…

Materials

PBS tablets	MP Biomedicals	2810305
dissecting dish	Corning	7220-85
microcentrifuge tube	Denville	C2170
silicone dissecting pad, made from Sylgard 184 kit	Krayden (distributed through Fisher)	NC9644388 (Fisher catalog number)	Made in petri dish by mixing components of Sylgard elastomer kit according to manufacturer instructions.
stereomicroscope	Morrell Instruments (Nikon distributor)	mna42000, mma36300	Nikon models SMZ1000 and SMZ645
tissue wipe	VWR	82003-820
forceps	Electron Microscopy Sciences	72700-DZ
p200 pipette	Eppendorf	3120000054
Countess Automated Cell Counter	Invitrogen	C10227
Countess cell counting chamber slides	Invitrogen	C10283
hemocytometer	Hausser Scientific	3200
trypan blue stain	Life Technologies	T10282
formaldehyde	Fisher	BP531-500
Triton	Fisher	BP151-500
Tween 20	Fisher	BP337-500
bovine serum albumin	Rocky Mountain Biologicals	BSA-BSH-01K
normal goat serum	Sigma	G9023-10ML
normal donkey serum	Sigma	D9663-10ML
200 proof ethanol	VWR	V1001
N-propyl gallate	MP Biomedicals	102747
glycerol	VWR	EM-4750
DAPI (4’,6-diamidino-2-phenylindole)	Fisher	62248
6-well plate	Corning	351146
12-well plate	Corning	351143
microscope cover glass, 22 mm square	Fisher	12-544-10
microscope cover glass, 18mm circular	Fisher	12-545-100
glass microscope slides	Fisher	22-034-980
thermal cycler	Eppendorf	E950010037	Mastercycler EP Gradient S
PCR tubes	USA Scientific	1402-2700
24-well plate	Corning	351147
disposable transfer pipet	Fisher	13-711-9AM
fluorescence microscope	Zeiss		Axio Imager.Z1