Summary

אין ויוו הדמיה של עכברים כתב Cx3cr1gfp/gfp עם תחומים הספקטרום טומוגרפיה אופטית קוהרנטית, סריקת לייזר Ophthalmoscopy

Published: November 11, 2017
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתאר איך ברזולוציה גבוהה טכניקות הדמיה כגון טומוגרפיה אופטית קוהרנטית בתחום ספקטרלי, סריקת לייזר ophthalmoscopy יכול להיות מנוצל מכרסמים קטנים, באמצעות מערכת פלטפורמה אופטלמולוגיות הדמיה, כדי לקבל מידע על עובי רשתית, microglial תא הפצה, בהתאמה.

Abstract

טומוגרפיה אופטית קוהרנטית בתחום ספקטרלי (SD-אוקטובר) ו לייזר סריקה ophthalmoscopy (סלו) נמצאים בשימוש נרחב אופתלמולוגיה ניסיוני. בפרוטוקול הנוכחי, עכברים המבטאים ירוק (gfp) חלבון פלואורסצנטי תחת האמרגן של Cx3cr1 (BALB/c-Cx3cr1gfp/gfp) שימשו כדי התמונה מיקרוגלייה תאים ויוו ברשתית. מיקרוגלייה מקרופאגים תושב של הרשתית, היו מעורבים מספר מחלות רשתית1,2,3,4,5,6. פרוטוקול זה מספקת גישה מפורטת לדור של B-הרשתית, עם SD-אוקטובר, הדמיה של התפלגות התא מיקרוגלייה בעכברים Cx3cr1gfp/gfp עם סלו ויוו, באמצעות מערכת פלטפורמה אופטלמולוגיות הדמיה. הפרוטוקול יכול לשמש במספר שורות העכבר הכתב. עם זאת, ישנן כמה מגבלות בפרוטוקול המוצג כאן. ראשית, סלו וגם SD-אוקטובר, כאשר נעשה שימוש במצב ברזולוציה גבוהה, איסוף הנתונים עם מפוח ברזולוציה גבוהה אבל הרזולוציה לרוחב הוא נמוך (מיקרומטר 3.5 ו- 6 מיקרומטר, בהתאמה). יתר על כן, רמת המיקוד ורוויה סלו תלויה מאוד מבחר פרמטר, יישור נכון של העין. בנוסף, באמצעות התקנים שנועדו עבור חולים אנושיים בעכברים הוא מאתגר עקב גבוה סך כל הכוח האופטי של העין העכבר לעומת העין האנושית; זה יכול להוביל לרוחב ההגדלה אי דיוקים7, אשר תלויים גם ההגדלה שהעדשה העכבר בין היתר. עם זאת, למרות הסורק צירית במצב הזה הוא תלוי הגדלה לרוחב, המדידות SD-אוקטובר צירית מדויק8.

Introduction

עיניים ניסיוני, בחינת פתולוגיה ברשתית מחושבת בדרך כלל באמצעות טכניקות היסטולוגית. עם זאת, היסטולוגיה דורש euthanization בעלי חיים, עלול לגרום שינוי במאפיינים בפועל של הרקמה. SD-אוקטובר, סלו נעשה שימוש באופן שגרתי עיניים קליניים למטרות אבחון ועל הפיקוח על מחלות רשתית מספר כגון בצקת מקולרית סוכרתית9, קדמית נוירופתיה אופטית איסכמי10או רטיניטיס פיגמנטוזה11 . SD-אוקטובר סלו טכניקות פולשני להפיק תמונות ברזולוציה גבוהה של הרשתית, אשר הם דמיינו דרך האישון מורחבים ללא התערבות נוספת בקרב אנשי עסקים ותיירים כאחד. SD-אוקטובר מספק מידע של מבנה הרשתית ועובי הרשתית על ידי איסוף נתונים backscattering כדי ליצור תמונות חתך של הרשתית, בעוד סלו אוספת נתונים זריחה כדי להפיק תמונות חדות גבוהה סטריאוסקופי של הרשתית. כיום, בשתי הטכניקות משמשות יותר ויותר ניסיוני עיניים באמצעות מכרסמים קטנים12,13,14,15 (או אפילו דג זברה16,17) ויכול לספק גם מידע כמותיים12,17,18,19,20,21.

הצטברות של אנדוגני fluorophores כמו lipofuscins או היווצרות של drusen ברשתית, ניתן לאבחן על ידי סלו כמו האות פלורסנט אוטומטית. תכונה זו הופכת סלו טכניקה יקר עבור אבחון וניטור של מחלות רשתית כמו ניוון מקולרי הקשור לגיל או רטיניטיס פיגמנטוזה22,23. עיניים ניסיוני, זריחה אוטומטי הדמיה (AF) יכול לשמש עבור זיהוי סוגי תאים מסוים בקווים העכבר הכתב. לדוגמה, עכברים משפחתית ולא משפחתית הטרוזיגוטיים עבור הביטוי של ה-gfp תחת האמרגן של Cx3cr124 הם יתרון עבור ויזואליזציה ויוו microglial תאים ברשתית נורמלי, החקירה של מיקרוגלייה/מקרופאג הדינמיקה של מחלות רשתית21. מיקרוגלייה הן המקרופאגים תושב של הרשתית, אשר לשחק תפקיד מכריע על הומאוסטזיס רקמות ותיקון רקמות על פציעה1,25,26. מיקרוגלייה הפעלת ב הרשתית דווחה פגיעה ברשתית, איסכמיה, ניוון, רומז תפקיד של תאים אלה מחלות רשתית2,3,4,5, 6.

מטרת הפרוטוקול הנוכחי היא לתאר שיטה פשוטה יחסית עבור הדמיה ברשתית ומדידה של עובי הרשתית בעזרת SD-אוקטובר ועבור ויזואליזציה של תאים מיקרוגלייה חיובי gfp באמצעות העכבר Cx3cr1gfp/gfp רשתית סלו (היידלברג Spectralis HRA + OCT מערכת). פרוטוקול זה יכול להיות מנוצל עבור מדידות הדמיה ועובי של הרשתית בריא או חולה בקווים העכבר שונים. בנוסף, ניתן לבצע ניתוחים morphometric עבור וכימות של מספרים מיקרוגלייה והפעלה מיקרוגלייה ברשתית באמצעות סלו21. מיקרוגלייה התאים קשורים עם מחלות ניווניות של מערכת העצבים המרכזית (CNS), כולל28,27,29הרשתית. כך, על ידי שילוב של שתי השיטות בשימוש בפרוטוקול הנוכחי, המתאם של מיקרוגלייה הפצה, ניוון הרשתית יכול להתבצע, אשר יכול להקל על חומרת המחלה ניטור או יעילות טיפולית גישות vivo.

Protocol

בכל ההליכים, BALB/c למבוגרים זכר ונקבה של עכברים אקספרס gfp תחת האמרגן של Cx3cr1 היו בשימוש 24. עכברים טופלו על-פי ארוו שימוש בבעלי חיים של לרפואת עיניים ומחקר חזון ואושרו בכל ההליכים מהממשלה השוויצרי על פי הוראות השוויצרי הפדראלי על צער. עכברים היו ומורדמת באמצעות זריקה תת עורי?…

Representative Results

באמצעות פרוטוקול המובאת כאן, SD-אוקטובר ואבחון סלו תמונות התקבלו Cx3cr1gfp/gfp עכברים במהלך אותה הפעלה של הדמיה. איור 3 כולל SD נציג-סריקות יחיד שהושג עם 30 מעלות או עדשה 55 ° (איור 3 א) ותמונות סלו נציג שהושג עם 55 ° או עדשה 102 °, איפה הם דמיינ?…

Discussion

המאמר הנוכחי מדגים פרוטוקול עבור הרכישה של הרשתית B והדמיה של הפצה חיובית מיקרוגלייה gfp ברשתית העכבר במהלך אותה הפעלה של הדמיה. SD-אוקטובר, סלו משמשים יותר ויותר במודלים חייתיים של מחלות רשתית לספק מידע של שינויים ברשתית מעל הזמן10,14,17,</sup…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענק של השוויצרי הקרן הלאומית למדע (SNSF; #320030_156019). המחברים קיבל תמיכה nonfinancial GmBH הנדסה היידלברג, גרמניה.

Materials

Spectralis Imaging system (HRA+OCT) Heidelberg Engineering, Germany N/A ophthalmic imaging platform system
Heidelberg Eye Explorer Heidelberg Engineering, Germany N/A Version 1.9.13.0
78D standard ophthalmic non-contact slit lamp lens Volk Optical Inc., Ohio, USA V78C
Spectralis wide angle 55° lens Heidelberg Engineering, Germany 50897-002
ultra widefield 102° lens Heidelberg Engineering, Germany 50117-001
medetomidine hydrochloride 1 mg/mL (Domitor) Provet AG, Lyssach, Switzerland Swissmedic Nr. 50'590 – ATCvet: QN05CM91 anesthetic/analgesic
ketamine 50mg/ml (Ketalar) Parke-Davis, Zurich, Switzerland 72276388 anesthetic
tropicamide 0.5% + phenylephrine HCl 2.5% (Augentropfen mix) ISPI, Bern, Switzerland N/A pupil dilation
Omnican Insulin-50 0.5 ml G30 0.3 x 12mm B. Braun Mesungen AG, Carl-Braun-Straße, Germany 9151125
hydroxypropylmethylcellulose (Methocel 2%) OmniVision, Neuhausen, Switzerland N/A
+4 dpt rigid gas permeable contact lens Quantum I, Bausch + Lomb Inc., Rochester, NY N/A Base Curve: 7.20 to 8.40 mm
Diameter: 9.00 / 9.60 / 10.20 mm
Power: -25.00 to +25.00 Diopters
balanced salt solution (BSS) Inselspital, Bern, Switzerland N/A
silicon forceps N/A N/A
atipamezole 5 mg/mL (Antisedan) Provet AG, Lyssach, Switzerland N/A α2 adrenergic receptor antagonist
GraphPad Prism 7 GraphPad Software, Inc, San Diego, CA, USA N/A statistical analysis software

Referenzen

  1. Madeira, M. H., Boia, R., Santos, P. F., Ambrosio, A. F., Santiago, A. R. Contribution of microglia-mediated neuroinflammation to retinal degenerative diseases. Mediators Inflamm. , 673090 (2015).
  2. Ng, T. F., Streilein, J. W. Light-induced migration of retinal microglia into the subretinal space. Invest Ophthalmol Vis Sci. 42 (13), 3301-3310 (2001).
  3. Langmann, T. Microglia activation in retinal degeneration. J Leukoc Biol. 81 (6), 1345-1351 (2007).
  4. Joly, S., et al. Cooperative phagocytes: resident microglia and bone marrow immigrants remove dead photoreceptors in retinal lesions. Am J Pathol. 174 (6), 2310-2323 (2009).
  5. Arroba, A. I., Alvarez-Lindo, N., van Rooijen, N., de la Rosa, E. J. Microglia-mediated IGF-I neuroprotection in the rd10 mouse model of retinitis pigmentosa. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (12), 9124-9130 (2011).
  6. Zhang, C., Lam, T. T., Tso, M. O. Heterogeneous populations of microglia/macrophages in the retina and their activation after retinal ischemia and reperfusion injury. Exp Eye Res. 81 (6), 700-709 (2005).
  7. Geng, Y., et al. Optical properties of the mouse eye. Biomed Opt Express. 2 (4), 717-738 (2011).
  8. Lozano, D. C., Twa, M. D. Development of a rat schematic eye from in vivo biometry and the correction of lateral magnification in SD-OCT imaging. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (9), 6446-6455 (2013).
  9. Vaz-Pereira, S., et al. Optical Coherence Tomography Features Of Active And Inactive Retinal Neovascularization In Proliferative Diabetic Retinopathy. Retina. 36 (6), 1132-1142 (2016).
  10. Kokona, D., Haner, N. U., Ebneter, A., Zinkernagel, M. S. Imaging of macrophage dynamics with optical coherence tomography in anterior ischemic optic neuropathy. Exp Eye Res. , (2016).
  11. Makiyama, Y., et al. Macular cone abnormalities in retinitis pigmentosa with preserved central vision using adaptive optics scanning laser ophthalmoscopy. PLoS One. 8 (11), e79447 (2013).
  12. Paques, M., et al. High resolution fundus imaging by confocal scanning laser ophthalmoscopy in the mouse. Vision Res. 46 (8-9), 1336-1345 (2006).
  13. Joshi, R., et al. Spontaneously occurring fundus findings observed using confocal scanning laser ophthalmoscopy in wild type Sprague Dawley rats. Regul Toxicol Pharmacol. 77, 160-166 (2016).
  14. Muraoka, Y., et al. Real-time imaging of rabbit retina with retinal degeneration by using spectral-domain optical coherence tomography. PLoS One. 7 (4), e36135 (2012).
  15. Fischer, M. D., et al. Noninvasive, in vivo assessment of mouse retinal structure using optical coherence tomography. PLoS One. 4 (10), e7507 (2009).
  16. Bell, B. A., et al. Retinal vasculature of adult zebrafish: in vivo imaging using confocal scanning laser ophthalmoscopy. Exp Eye Res. 129, 107-118 (2014).
  17. Bailey, T. J., Davis, D. H., Vance, J. E., Hyde, D. R. Spectral-domain optical coherence tomography as a noninvasive method to assess damaged and regenerating adult zebrafish retinas. Invest Ophthalmol Vis Sci. 53 (6), 3126-3138 (2012).
  18. Huber, G., et al. Spectral domain optical coherence tomography in mouse models of retinal degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 50 (12), 5888-5895 (2009).
  19. Dysli, C., Enzmann, V., Sznitman, R., Zinkernagel, M. S. Quantitative Analysis of Mouse Retinal Layers Using Automated Segmentation of Spectral Domain Optical Coherence Tomography Images. Transl Vis Sci Technol. 4 (4), 9 (2015).
  20. Sim, D. A., et al. A simple method for in vivo labelling of infiltrating leukocytes in the mouse retina using indocyanine green dye. Dis Model Mech. 8 (11), 1479-1487 (2015).
  21. Bosco, A., Romero, C. O., Ambati, B. K., Vetter, M. L. In vivo dynamics of retinal microglial activation during neurodegeneration: confocal ophthalmoscopic imaging and cell morphometry in mouse glaucoma. J Vis Exp. (99), e52731 (2015).
  22. Acton, J. H., Cubbidge, R. P., King, H., Galsworthy, P., Gibson, J. M. Drusen detection in retro-mode imaging by a scanning laser ophthalmoscope. Acta Ophthalmol. 89 (5), e404-e411 (2011).
  23. Greenstein, V. C., et al. Structural and functional changes associated with normal and abnormal fundus autofluorescence in patients with retinitis pigmentosa. Retina. 32 (2), 349-357 (2012).
  24. Jung, S., et al. Analysis of fractalkine receptor CX(3)CR1 function by targeted deletion and green fluorescent protein reporter gene insertion. Mol Cell Biol. 20 (11), 4106-4114 (2000).
  25. Wang, X., et al. Requirement for Microglia for the Maintenance of Synaptic Function and Integrity in the Mature Retina. J Neurosci. 36 (9), 2827-2842 (2016).
  26. Ebneter, A., Casson, R. J., Wood, J. P., Chidlow, G. Microglial activation in the visual pathway in experimental glaucoma: spatiotemporal characterization and correlation with axonal injury. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (12), 6448-6460 (2010).
  27. Ebneter, A., Kokona, D., Schneider, N., Zinkernagel, M. S. Microglia Activation and Recruitment of Circulating Macrophages During Ischemic Experimental Branch Retinal Vein Occlusion. Invest Ophthalmol Vis Sci. 58 (2), 944-953 (2017).
  28. Lin, Y. L., Potter-Baker, K. A. Using theoretical models from adult stroke recovery to improve use of non-invasive brain stimulation for children with congenital hemiparesis. J Neurophysiol. , (2017).
  29. Combadiere, C., et al. CX3CR1-dependent subretinal microglia cell accumulation is associated with cardinal features of age-related macular degeneration. J Clin Invest. 117 (10), 2920-2928 (2007).
  30. Bermudez, M. A., et al. Time course of cold cataract development in anesthetized mice. Curr Eye Res. 36 (3), 278-284 (2011).
  31. Toth, C. A., et al. A comparison of retinal morphology viewed by optical coherence tomography and by light microscopy. Arch Ophthalmol. 115 (11), 1425-1428 (1997).
  32. Ebneter, A., Kokona, D., Jovanovic, J., Zinkernagel, M. S. Dramatic Effect of Oral CSF-1R Kinase Inhibitor on Retinal Microglia Revealed by In Vivo Scanning Laser Ophthalmoscopy. Transl Vis Sci Technol. 6 (2), 10 (2017).
  33. Gabriele, M. L., et al. Reproducibility of spectral-domain optical coherence tomography total retinal thickness measurements in mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (12), 6519-6523 (2010).
  34. Nakao, S., et al. Wide-field laser ophthalmoscopy for mice: a novel evaluation system for retinal/choroidal angiogenesis in mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (8), 5288-5293 (2013).
  35. Wang, N. K., et al. Origin of fundus hyperautofluorescent spots and their role in retinal degeneration in a mouse model of Goldmann-Favre syndrome. Dis Model Mech. 6 (5), 1113-1122 (2013).
  36. Wang, N. K., et al. Cellular origin of fundus autofluorescence in patients and mice with a defective NR2E3 gene. Br J Ophthalmol. 93 (9), 1234-1240 (2009).
  37. Thanos, S. Sick photoreceptors attract activated microglia from the ganglion cell layer: a model to study the inflammatory cascades in rats with inherited retinal dystrophy. Brain Res. 588 (1), 21-28 (1992).
  38. Hughes, E. H., et al. Generation of activated sialoadhesin-positive microglia during retinal degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 44 (5), 2229-2234 (2003).
check_url/de/55984?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Kokona, D., Jovanovic, J., Ebneter, A., Zinkernagel, M. S. In Vivo Imaging of Cx3cr1gfp/gfp Reporter Mice with Spectral-domain Optical Coherence Tomography and Scanning Laser Ophthalmoscopy. J. Vis. Exp. (129), e55984, doi:10.3791/55984 (2017).

View Video