Summary

Hepatositlerin intrasplenic nakli düğümde kısmi Hepatectomy sonra. SCID fareler

Published: February 10, 2018
doi:

Summary

Kısmi hepatectomy (PHx) ve hücre transplantasyonu dalak ile NOD gerçekleştirmek için bir protokol anlatmıştık. SCID (BAŞINI SALLAMAK. CB17-Prkdcscid/J) fareler. Bu protokol için ortaya çıkarmak ve hücre intrasplenic nakli için başka bir kesi ardından karaciğer sol lob çıkarabileceğim için bir kesi yapılır.

Abstract

Kısmi hepatectomy karaciğer rejenerasyonu ve değişik patolojik koşullarda hücre dayalı tedavi etkisini incelemek için çok yönlü ve tekrarlanabilir bir yöntemdir. Kısmi hepatectomy da artan engraftment ve Transplante hücrelerin çoğalması hızlanan neovaskülarizasyon ve hücre göç doğru karaciğer tarafından kolaylaştırır. Burada, bir obez olmayan şeker hastası/şiddetli, dalak performans % 30 hepatectomy ve hücre nakli kombine immünyetmezligi başını SALLAMAK için basit bir protokol açıklayın. SCID (BAŞINI SALLAMAK. CB17-Prkdcscid/J) fare.

Bu yordam, iki küçük insizyon yapılır. Belgili tanımlık ilk kesme ortaya çıkarmak ve karaciğer sol lob çıkarabileceğim etmektir ve başka bir küçük kesi dalak hücre intrasplenic nakli için ortaya çıkarmak için yapılır. Bu yordam herhangi bir özel cerrahi beceri gerektirmez ve daha az stres ve ağrı, hızlı iyileşme ve daha iyi hayatta kalma ile 5-7 dakika içinde tamamlanabilir. Fare (transgenik C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J) yanı sıra Hepatosit hücreler kısmen hepatectomized başını SALLAMAK içinde insan kaynaklı (NeoHep) gibi ifade bir floresan yeşil protein (GFP) dan izole tetkikine nakli göstermiştir. SCID fareler.

Introduction

Şu anda, Hepatosit bütün organ nakli şiddetli karaciğer bozukluğu olan hastaları tedavi için bir alternatif olarak teklif edilir. Bu hastaların tüm organ nakli1köprü olabilir inanılıyor. Ek olarak allojenik tetkikine2, xenogenic tetkikine3 ve kök hücre4 ‘ ten türetilmiş tetkikine hayvan modellerinde da soruşturuluyor. Bu bağlamda, posta ve engraftment potansiyel alıcı transplante hücrelerinin temel hücre tedavisi için önemli bir kriter akut hepatik yetmezliği (AHF) var.

Hepatositlerin veya Hepatosit benzeri hücreler5nakli soruşturma için AHF hayvan modelinde cerrahi6 veya farmakolojik7 yordamlar, hücre nakli tarafından takip tarafından oluşturulur. Bir AHF hayvan modeli farmakolojik reaktifler, d-galactozamin8, asetaminofen9, karbon tetraklorür10, thioacetamide11, Concanavalin A12, lipopolysaccharide13 gibi birçok hepatotoxins tarafından yapmak için , vs., kullanılmıştır. Bu listeden her reaktif AHF için benzersiz bir özellik kümesi oluşturur, ancak ne yazık ki yok tek reaktif insan AHF taklit eder. Ayrıca, hepatotoxins tarafından indüklenen AHF hayvanlar kronik stres altında koyar, uzun bir zaman alır ve tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek zordur.

Öte yandan, kısmi hepatectomy (PHx) cerrahi işlem beceri bağımlı ve tekrarlanabilir sonuçlar gerekli becerileri geliştirme sonra elde etmek kolaydır. Cerrahi müdahale yalnız AHF ikna etmek için daha–dan %70 karaciğer rezeksiyonu gereklidir; Ancak, bir % 70 hepatectomy hala engraftment ve yaygın eğitim için yararlı olabilir daha az tedavi kapasitelerini karaciğer hasarı14sırasında analiz etmek için karaciğer hücrelerinde nakledilmektedir. Hepatositlerin nakli karın zarını15, kuyruk damar16, hepatik ven17veya18dalak aracılığıyla gerçekleştirilen yazı hepatectomy olmuştur. Yeniden oluşturmak daha kolay olduğu gibi şu anda, hepatik ven infüzyon ve tetkikine intrasplenic nakli tercih edilen, işlemlerdir.

Bu yazıda, bir yordam için % 30 kısmi hepatectomy düğümde anlatmıştık. SCID (BAŞINI SALLAMAK. CB17-Prkdcscid/J) içinde karaciğer sol lob eksize fareler. Bu nakli 0,2 milyon GFP ifade fare (C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J) tetkikine hem de insan kaynaklı NeoHep19 dalak içinde izler. Bu yordamı karaciğer nakledilen hücrelerinin engraftment yol açar. Bu yordam az invaziv ve en az acı veren bir teknik olacaktır.

Protocol

Bu protokol için sunulan yordamları kurumsal hayvan etik komite tarafından Ulusal Enstitüsü İmmünoloji, Yeni Delhi onaylanmış olması. IAEC #319/13. onayı seri referans numarasıdır Not: Genel cerrahi prosedürler20 ve kemirgen cerrahi21belirli iletişim kuralları üzerinde mükemmel kaynakları vardır. O hayvan ameliyatı: ilk kez, bu kapsamlı bir şekilde pratik cerrahi mankenleri üzerinde hayvanlar üzerinde çalıştı…

Representative Results

% 30 kısmi hepatectomy sonra Hepatosit nükleer silahların yayılmasına karşı: Yayılması içinde kalan hepatositlerin % 30 hepatectomy sonra karaciğer Hücre proliferasyonu avans, Ki-67 boyama immunohistokimyasal (IHC) tarafından incelenmiştir. Bir gün sonrası hepatectomy, fareler ötenazi, kalan karaciğer lobları eksize ve parafin kesitler elde. Bölümleri ile Ki-67 antikor, horseradish peroksidaz (HRP) konjuge ikincil antikor ile etiketleme tarafından takip lekeli. Di-Amino Benzidine (D…

Discussion

Kısmi hepatectomy soruşturma karaciğer rejenerasyonu için kurulan bir tekniktir ve aşırı hepatectomy AHF modeli taklit etmek için bildirilir. Hayvan AHF arasında kemirgenler, özellikle fareler, en araştırılmış modeli modellerdir. % 70 hepatectomy kadar farelerde karaciğer yaralanma modeli elde etmek için bir iyi hayatta kalma oranı25,26‘ bildirilmiştir. Ancak çıplak ve diğer immünyetmezligi fare, % 70 hepatectomy ölümcül olarak bildirilm…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu eser Bölümü Biyoteknoloji, Hindistan hükümeti Ulusal Enstitüsü İmmünoloji, Yeni Delhi için alınan çekirdek grant tarafından desteklenmiştir. Dr. Bhattacharjee’nın şu anki adresim mı bölümü Gastroenteroloji, Hepatoloji ve beslenme, Çocuk Hastanesi Los Angeles.

Materials

Gas Anesthesia System Ugo Basile; Italy 211000
Weighing machine Goldtech ; India Local Procurement
Biological safety cabinet ( Class I) Kartos international;  India Local Procurement
Hair Trimmer Panasonic ;  Japan  ER-GY10 
Straight operating scissor with sharp /sharp blades Major Surgicals; India Local Procurement
Forceps with Serrations Major Surgicals; India Local Procurement
Micro needle holders  straight & curved  Mercian ;  England  BS-13-8
1 ml insulin syringe with 30G *5/16 needles  Dispo Van; India
1 ml syringe with 26 G * 1/2 needle BD ; US  REF 303060
Nylon Threads   Mighty ; India (1-0) Local Procurement
MERSUTURES 4-0 Sterilised Surgical Needled Suture Ethicon, Johnson & Johnson, India NW 5047
TRUGUT 76 cm 4-0 absorbable surgical suture Sutures India Pvt. Ltd; India SN 5048 Sterilised Surgical Needled Suture Catgut Chromic
Cotton Buds Pure Swabs Pvt Ltd ;  India Local Procurement
Surgical Tape 3M India ; India 1530-1 Micropore Surgical Tape
Microtome Histo-Line Laboratories, Italy MRS3500
Shandon Cryotome E Cryostat Thermo Electron Corporation ; US
Confocal laser scanning microscope Carl Zeiss ; Germany  LSM 510 META
Bright Field Microscope Olympus, Japan LX51
Automated analyser Tulip, Alto Santracruz, India Screen Maaster 3000 Biochemical analyser for liver functional test
Flow Cytometer BD ; US  BD FACSverse Assesment of presence of cells post transplantation
Veet hair removal cream  Reckitt Benckiser , India
FORANE Abbott ; US isoflurane USP 99.9% 
Taxim AlKem ; India cefotaxime sodium injection
Povidone-Iodine solution  Win-Medicare;  India Betadine
Paraformaldehyde Himedia; India GRM 3660
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) Life technologies, Thermo Fisher scientific ; US 12200-036
Sucrose Sigma ; US S0389
Tissue-Tek Sakura; US 25608-930 O.C.T compound
DAPI Himedia; India MB 097
anti-Albumin goat Polyclonal Thermo Scientific,Pierce, US PA126081
anti-connexin 32/GJB1 Polyclonal abcam, UK ab64609-500
antiGFP rabbit polyclonal  Santa Cruz biotechnology; US SC 8334
Alexa Fluor 594 donkey anti-goat  Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  US A11058
Alexa Fluor 488 donkey anti-sheep  Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  US A11015
Alexa Fluor 594 chicken anti rabbit  Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  US A21442
Goat anti rabbit IgG HRP Invitrogen, Thermo Fisher Scientific; US  65-6120
anti-Ki67 antibody abcam, UK ab15580
Antigen Unmasking Solution, Citric acid base Vector laboratories, US H-3300
ProLong Diamond antifade mountant Life technologies, Thermo Fisher scientific ; US P36966
SGOT (ASAT) KIT Coral Clinical System, India
SGPT (ALAT) KIT Coral Clinical System, India
Alkaline Phosphatase Kit (DEA) Coral Clinical System, India
Hematoxylin Solution, Mayer's Sigma ; US MHS16
Eosin Y solution, alcoholic Sigma ; US HT110132
DPX Mountant  Sigma ; US 6522
Melonex (Pain Killer) Intas Pharmaceuticals Ltd; India Meloxicam injection 
DAB enhanced liquid substrate system tetrahydrochloride Sigma ; US D3939

Referenzen

  1. Nussler, A., et al. Present status and perspectives of cell-based therapies for liver diseases. J. Hepatol. 45 (1), 144-159 (2006).
  2. Ponder, K. P., et al. Mouse hepatocytes migrate to liver parenchyma and function indefinitely after intrasplenic transplantation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88 (4), 1217-1221 (1991).
  3. Kokudo, N., Horimoto, H., Ishida, K., Takahashi, S., Nozawa, M. Allogeneic hepatocyte and fetal liver transplantation and xenogeneic hepatocyte transplantation for Nagase’s analbuminemic rats. Cell Transplant. 5 (5 Suppl 1), S21-S22 (1996).
  4. Christ, B., Bruckner, S., Stock, P. Hepatic transplantation of mesenchymal stem cells in rodent animal models. Methods Mol. Biol. 698, 315-330 (2011).
  5. Fox, I. J., Roy-Chowdhury, J. Hepatocyte transplantation. J. Hepatol. 40 (6), 878-886 (2004).
  6. Glanemann, M., et al. Transplantation of monocyte-derived hepatocyte-like cells (NeoHeps) improves survival in a model of acute liver failure. Ann. Surg. 249 (1), 149-154 (2009).
  7. Rahman, T. M., Hodgson, H. J. Animal models of acute hepatic failure. Int. J. Exp. Pathol. 81 (2), 145-157 (2000).
  8. Zhang, L., et al. Granulocyte colony-stimulating factor treatment ameliorates liver injury and improves survival in rats with D-galactosamine-induced acute liver failure. Toxicol. Lett. 204 (1), 92-99 (2011).
  9. Gardner, C. R., et al. Role of nitric oxide in acetaminophen-induced hepatotoxicity in the rat. Hepatology. 27 (3), 748-754 (1998).
  10. Nardo, B., et al. Successful treatment of CCL4-induced acute liver failure with portal vein arterialization in the rat. Transplant Proc. 38 (4), 1187-1189 (2006).
  11. Sathyasaikumar, K. V., et al. Fulminant hepatic failure in rats induces oxidative stress differentially in cerebral cortex, cerebellum and pons medulla. Neurochem. Res. 32 (3), 517-524 (2007).
  12. Wu, J., et al. Laennec protects murine from concanavalin A-induced liver injury through inhibition of inflammatory reactions and hepatocyte apoptosis. Biol. Pharm. Bull. 31 (11), 2040-2044 (2008).
  13. Kaur, G., Tirkey, N., Chopra, K. Beneficial effect of hesperidin on lipopolysaccharide-induced hepatotoxicity. Toxicology. 226 (2-3), 152-160 (2006).
  14. Rupertus, K., et al. Major but not minor hepatectomy accelerates engraftment of extrahepatic tumor cells. Clin. Exp. Metastasis. 24 (1), 39-48 (2007).
  15. Selden, C., Casbard, A., Themis, M., Hodgson, H. J. Characterization of long-term survival of syngeneic hepatocytes in rat peritoneum. Cell Transplant. 12 (6), 569-578 (2003).
  16. Tang, T. H., et al. The role of donor hepatocytes and/or splenocytes pre-injection in reducing islet xenotransplantation rejection. Hepatobiliary. Pancreat. Dis. Int. 2 (3), 344-350 (2003).
  17. Goto, Y., Ohashi, K., Utoh, R., Yamamoto, M., Okano, T. Hepatocyte transplantation through the hepatic vein: a new route of cell transplantation to the liver. Cell Transplant. 20 (8), 1259-1270 (2011).
  18. Gabelein, G., et al. Intrasplenic or subperitoneal hepatocyte transplantation to increase survival after surgically induced hepatic failure?. Eur. Surg. Res. 41 (3), 253-259 (2008).
  19. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived From Chronic Hepatitis B Virus Patients’ Blood Monocytes by Upregulation of cMET Signaling. Stem Cells Transl. Med. , (2016).
  20. . . Basic surgical skills. Emergency and Essential Surgical Care (EESC) programme. , (2017).
  21. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J. Vis. Exp. (47), (2011).
  22. Lee, S. M., Schelcher, C., Demmel, M., Hauner, M., Thasler, W. E. Isolation of human hepatocytes by a two-step collagenase perfusion procedure. J. Vis. Exp. (79), (2013).
  23. Shen, L., Hillebrand, A., Wang, D. Q., Liu, M. Isolation and primary culture of rat hepatic cells. J. Vis. Exp. (64), (2012).
  24. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived from Chronic Hepatitis B Virus Patients’ Blood Monocytes by Upregulation of c-MET Signaling. Stem Cells Transl. Med. 6 (1), 174-186 (2017).
  25. Hori, T., et al. Simple and sure methodology for massive hepatectomy in the mouse. Ann. Gastroenterol. 24 (4), 307-318 (2011).
  26. Hori, T., et al. Simple and reproducible hepatectomy in the mouse using the clip technique. World J. Gastroenterol. 18 (22), 2767-2774 (2012).
  27. Vidal, I., Richert, L. The nude mouse as model for liver deficiency study and treatment xenotransplantation. Int. J. Hepatol. , 1400147 (2012).
  28. Mitchell, C., Willenbring, H. A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice. Nat. Protoc. 3 (7), 1167-1170 (2008).
  29. Ahmed, S. U., et al. Generation of subcutaneous and intrahepatic human hepatocellular carcinoma xenografts in immunodeficient mice. J. Vis. Exp. (79), e50544 (2013).
  30. Krikri, A., et al. Laparoscopic vs. open abdominal surgery in male pigs: marked differences in cortisol and catecholamine response depending on the size of surgical incision. Hormones (Athens). 12 (2), 283-291 (2013).
check_url/de/56018?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Das, B., Bhattacharjee, J., Preeti, Mishra, A., Jain, K., Iyer, S., Kesarwani, A., Sahu, P., Sinha, P., Nagarajan, P., Upadhyay, P. Intrasplenic Transplantation of Hepatocytes After Partial Hepatectomy in NOD.SCID Mice. J. Vis. Exp. (132), e56018, doi:10.3791/56018 (2018).

View Video