Summary

Murine 골 수 유래 수지상 세포와 대 식 세포에 형광 성 융해 단백질의 표정

Published: October 30, 2018
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Summary

이 문서에서는, 우리는 murine 골에 형광 성 융해 단백질의 표정에 대 한 자세한 프로토콜 파생 수지상 세포와 대 식 세포 제공 합니다. 메서드를 기반으로 골 수의 변환에 창시자 retroviral 구문 뒤에 대 식 세포로 분화 및 수지상 세포 생체 외에서.

Abstract

수지상 세포와 대 식 세포는 병원 체에 대 한 방어의 첫 번째 라인을 형성 하는 중요 한 세포 이다. 그들은 또한 적합 한 면역 반응의 개시에 중요 한 역할을 재생합니다. 이러한 세포와 실험 작업은 오히려 도전적 이다. 그들의 풍부한 장기와 조직에 상대적으로 낮습니다. 결과적으로, 그들은 큰 숫자에서 고립 될 수 없습니다. 그들은 또한 transfect cDNA 구문으로 어렵다입니다. Murine 모델에서 이러한 문제는 골 수 세포에 대 한 M-CSF 또는 수지상 세포에 대 한 GM-CSF의 창시자에서 생체 외에서 분화에 의해 부분적으로 극복할 수 있습니다. 이 방법에서는, 아주 몇몇 동물에서 이러한 셀의 대용량을 얻을 수입니다. 또한, 골 창시자 retroviral 벡터 들고 이전에 파생 하는 골 수 수지상 세포와 대 식 세포로의 분화 재배의 초기 단계 동안에 cDNA 구문으로 불리고 있습니다. 따라서, 이러한 셀에 다양 한 cDNA 구문 표현 하 retroviral 변환 뒤에 체 외에서 분화를 사용할 수 있습니다. 라이브 셀 이미징 형광 단백질, 탠덤 담긴 위하여 분석, 구조-기능 분석, 대 한의 포함 하 여 이러한 셀에 수행할 수 있는 실험의 범위를 확장 하는 실질적으로 소성 단백질을 표현 하는 능력 모니터링 바이오 센서와 다른 많은 세포질 기능. 이 문서에서는, 우리 붙일 태그가 단백질 코딩 벡터와 retroviral 변환 파생 murine 골 수 수지상 세포와 대 식 세포에 대 한 상세한 프로토콜을 설명 합니다. 두 어댑터 단백질, OPAL1 및 PSTPIP2, 예를에 우리 cytometry에 현미경의 실용적인 응용 프로그램을 보여 줍니다. 우리는 또한 장점 및이 방법의 한계를 설명.

Introduction

골수성 세포는 병원 체에 대 한 우리의 방어 메커니즘의 필수적인 부분을 나타냅니다. 그들은 죽어가는 세포 뿐 아니라 미생물, 빠르게 제거 수 있습니다. 또한, 그들은 또한 관련 규제 조직 개발 및 수리 및 항상성1,2,3를 유지. 모든 골수성 세포는 골 수에서 일반적인 골수성 창시자에서 차별화. 많은 기능 및 형태학 상으로 가지 하위 집합으로 그들의 차별화는 cytokines와 그들의 다양 한 조합4제어 대부분입니다. 가장 집중적으로 공부 골수성 세포 하위 집합 neutrophilic granulocytes, 대 식 세포와 수지상 세포를 포함합니다. 이러한 인구 중 결함 잠재적으로 생명을 위협 문제 원인의 인간과 쥐,12,3,5, 의 면역 체계의 심각한 장애를 일으킬 6.

Neutrophilic granulocytes, 달리 수지상 세포와 대 식 세포는 조직 거주 세포 그리고 면역 기관에 그들의 풍부는 상대적으로 낮은. 그 결과, 분리와 기본 수지상 세포와이 세포의 많은 수를 요구 하는 실험에 대 한 세포의 정화 이며 비싼 종종 불가능. 이 문제를 해결 하려면 프로토콜 동종 대 식 세포 나 수지상 세포 생체 외의 다량을 얻기 위해 개발 되었습니다. Cytokines의 존재 murine 골 수 세포의 분화를 기반으로하는 이러한 접근: 대 식 세포 그리고 granulocyte-대 식 세포 콜로 니 자극 인자 (GM-CSF) 또는 Flt3 리간드에 대 한 대 식 세포 콜로 니 자극 요소 (M-CSF) 수지상 세포7,8,9,10,,1112. 이 메서드에 의해 생성 된 셀 일반적으로 문학에서 골 수 유래 세포 (BMDMs) 및 골 수 유래 수지상 세포 (BMDCs)으로 설명 합니다. 그들은 주 대 식 세포 또는 해당 셀 라인 보다 수지상 세포와 더 많은 생리 적 속성을 있다. 또 다른 주요 장점은 유전자 이러한 세포 형태를 얻기의 가능성 수정 마우스13입니다. 야생-타입 셀 간의 비교 연구 하 고 유전자 변형된 생쥐에서 파생 된 세포는 유전자의 잠복 소설 기능 또는 관심사의 단백질에 대 한 중요 한.

살아있는 세포에 있는 단백질의 subcellular 지 방화의 분석 vivo에서관심사의 단백질에 형광 라벨의 결합을 필요합니다. 이것은 가장 일반적으로 유전자 인코딩된 퓨전 구문 형광 단백질을 (종종 짧은 링커)을 통해 결합 하는 분석 된 단백질의 구성으로 표현 하 여 달성 (., 녹색 형광 단백질 (GFP))14,15 , 16. 수지상 세포 나 대 식 세포에 붙일 태그가 단백질의 식을 도전 이다. 이 세포는 일반적으로 표준 transfection 절차에 의해 transfect 어렵다 고 효율성 매우 낮은 경향이. 또한,는 transfection는 일시적, 그것은 세포 스트레스를 생성 하 고 달성된 강도의 형광 현미경 검사 법17에 대 한 충분 한 되지 않을 수도 있습니다. Transgene 식 retroviral 골 조상 세포의 감염의 충분 한 수준으로 이러한 셀의 합리적인 부분을 얻기 위해 벡터와 BMDMs 또는 BMDCs에 그들의 후속 차별화 되고있다 매우 효율적 접근입니다. 그것은 그들의 원래 세포 환경 안정 된 상태에서 또는 먹어서, 면역학 시 냅 스 형성 또는 마이그레이션 같은 면역 반응에 대 한 중요 한 프로세스 동안 골수성 근원의 단백질의 분석에 대 한 허용 했다. 여기, 우리 파생 murine 골 수 세포와 수지상 세포에 붙일 태그가 단백질의 안정적인 식 수 있는 프로토콜을 설명 합니다.

Protocol

여기에 설명 된 모든 방법은 복지의 실험 동물에 분자 유전학 연구소의 전문가 위원회에 의해 및 체코 공화국의 과학 아카데미에 의해 승인 되었습니다가지고. 1. 시 약 준비 염화 염화 칼륨 (ACK) 버퍼를 준비 합니다. DdH2O의 500 mL를 NH4Cl의 4.145 g 및 0.5 g KHCO3 를 추가 다음 0.5 M ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA) 100 µ L을 추가 하 고 필터를 소독. P…

Representative Results

신호 어댑터 단백질은 어떤 효소 활동 없이 일반적으로 작은 단백질. 그들은 다양 한 상호 도메인을 소유 또는21tyrosine kinases, 가수분해, 유비퀴틴 ligases 등 신호 변환에 관련 된 주제, 다른 단백질 바인딩 중재. 이 프로토콜의 기능의 데모에 대 한 PSTPIP2 및 OPAL1 골수성 세포 어댑터 선정 됐다. PSTPIP2 잘 특징이 단백질 염증 반응을22의 규칙?…

Discussion

대상 셀에 관심사의 단백질의 표정은 다양 한 생물 학적 연구에에서 중요 한 단계. 차별화 된 대 식 세포와 수지상 세포는 표준 transfection retroviral 변환 기법에 의해 transfect 어렵다. 이러한 소성 cDNAs의 식을 수 있도록 중요 한 단계는 골 수 창시자, 그들은 이미 원하는 구문을 수행할 때 차별화 뒤 retroviral 변환으로 이러한 차별화 된 세포의 transfection를 무시 셀 유형입니다. 이 방법의 성공적인 사용?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품으로 체코 과학 재단 (GACR) (프로젝트 번호 16-07425S)에 의해 찰스 대학 부여 기관 (GAUK) (프로젝트 번호 923116) 및 기관 자금에서 연구소의 분자 유전학, 체코의 과학 아카데미에 의해 지원 되었다 공화국 (RVO 68378050)입니다.

Materials

DMEM Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 15028
Fetal bovine serum (FBS) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 10270 For media suplementation
KHCO3 Lachema, Brno, Czech Republic N/A
NH4Cl Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) A9434
Penicillin BB Pharma AS, Prague, Czech Republic N/A PENICILIN G 1,0 DRASELNÁ SOL' BIOTIKA
Streptomycin Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) S9137 Streptomycin sulfate salt powder
Gentamicin Dr. Kulich Pharma, Hradec Králové, Czech Republic N/A
Polyethylenimine, linear, MW 25,000 Polyscience, Warrington, PA, USA 23966
Polybrene Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) H9268
EDTA Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) E5134
PBS Prepared in-house by media facility of IMG ASCR, Prague, Czech Republic N/A
APC anti-mouse/human CD11b Antibody, clone M1/70 BioLegend (San Diego, CA, USA) 101212 flow cytometry analysis
PE anti-mouse F4/80 Antibody, clone BM8 BioLegend (San Diego, CA, USA) 123110 flow cytometry analysis
APC anti-mouse CD11c Antibody, clone N418 BioLegend (San Diego, CA, USA) 117310 flow cytometry analysis
M-CSF PeproTech (Rocky Hill, NJ, USA) 315-02
GM-CSF PeproTech (Rocky Hill, NJ, USA) 315-03
Hoechst 33258 Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA H1398 flow cytometry analysis use at 1-2 µg/ml

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Diesen Artikel zitieren
Kralova, J., Glatzova, D., Borna, S., Brdicka, T. Expression of Fluorescent Fusion Proteins in Murine Bone Marrow-derived Dendritic Cells and Macrophages. J. Vis. Exp. (140), e58081, doi:10.3791/58081 (2018).

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