Summary

Een oncogene hepatocyte-geïnduceerde Orthotopic muis model van hepatocellulaire kanker ontstaan in de setting van leverontsteking en fibrose

Published: September 12, 2019
doi:

Summary

Hier beschrijven we de ontwikkeling van een klinisch relevant muriene model van leverkanker die de typische immuunkenmerken van hepatocellulaire kanker (HCC) recapituleren.

Abstract

De afwezigheid van een klinisch relevant diermodel dat de typische immuunkenmerken van hepatocellulaire kanker (HCC) aanpakt, heeft de verheldering van de onderliggende mechanismen en de ontwikkeling van innovatieve immunotherapeutische strategieën aanzienlijk belemmerd. Om een ideaal diermodel te ontwikkelen dat het humaan HCC samenvoert, krijgen immunocompetente mannelijke C57BL/6J-muizen eerst een koolstoftetrachloride (CCl4)-injectie om leverfibrose te induceren, waarna ze histologisch-normale oncogene hepatocyten van jonge mannen krijgen SV40 T antigeen (TAg)-transgene muizen (MTD2) door intra-splenic (ISPL) inoculatie. Androgeen gegenereerd in de ontvangende mannelijke muizen in de puberteit initieert TAg expressie onder controle van een lever-specifieke promotor. Als gevolg daarvan, de overgedragen hepatocyten worden kankercellen en vorm tumor massa’s in de setting van leverfibrose/cirrose. Dit nieuwe model bootst Human HCC initiatie en progressie na in de context van leverfibrose/cirrose en weerspiegelt de meest typische kenmerken van humaan HCC inclusief immuun disfunctie.

Introduction

Hepatocellulaire kanker (HCC) is de snelst groeiende vorm van kanker in de Verenigde Staten (VS)1,2,3. Elk jaar worden ongeveer 850.000 nieuwe gevallen gediagnosticeerd4,5 en 700.000 patiënten sterven aan deze dodelijke ziekte6,7,8,9,10 , waardoor het de op één na hoogste oorzaak van kanker-gerelateerde dood wereldwijd. Het beheer van HCC omvat chirurgische resectie, transplantatie, ablatie, chemoembolisatie of systemische therapieën, zoals sorafenib11. Vroegtijdige diagnose en behandeling met chirurgische resectie of transplantatie hebben het hoogste totale overlevingsvoordeel4. Helaas, de meerderheid van de patiënten aanwezig in een later stadium en vereisen Management met ablatie, chemoembolisatie of sorafenib12. Sorafenib, een receptor tyrosine kinase remmer (rtki), werd goedgekeurd door de Food and Drug Administration in 2008 als de enige systemische medicamenteuze therapie beschikbaar voor de behandeling van inoperabel HCC. Hoewel het medicijn alleen een bescheiden toename van de totale overleving biedt, van 7,9 tot 10,7 maanden13, voorzag het in een nieuwe therapeutische strategie die kon worden gebruikt om HCC te beheren.

Het manipuleren van het immuunsysteem om gevestigde kankers te elimineren is een snel groeiend veld in kankeronderzoek14. Immuun Checkpoint studies hebben aanzienlijk geavanceerde immunotherapeutische drug ontwikkeling in de behandeling van kanker15,16. De FDA keurde het gebruik van antilichamen (ABS) goed tegen cytotoxisch T-lymfocyten antigeen 4 (CTLA-4), geprogrammeerde celdood proteïne 1 (PD-1), en zijn ligand PD-L1 voor de behandeling van melanoom, longkanker, hoofd-en nekkanker, en blaaskanker17, 18 , 19 , 20. klinische studies met monotherapie-of combinatietherapie waarbij gebruik wordt gemaakt van één of meerdere antilichamen tegen pd-1, PD-L1 of ctla-4 voor de behandeling van Advanced HCC zijn aan de gang21,22,23, en sommige proeven hebben gunstige resultaten opgeleverd. In 2017, de FDA verleende versnelde goedkeuring voor anti-PD-1 antilichaam voor de behandeling van HCC patiënten, die resistentie tegen sorafenib zijn, maar de totale responspercentage van deze therapie is slechts 14,3%. Andere strategieën zijn niet vertaald in de klinische praktijk op dit moment24,25. Overwinnen van tumor-geïnduceerde diepgaande immuun tolerantie ter verbetering van immune Checkpoint therapie26; voorspellen van de werkzaamheid van immuuncontrolepunt therapie; preventie van immuungerelateerde ongewenste voorvallen; het optimaliseren van de toedieningsroute, dosering en frequentie; en het vinden van effectieve combinaties van therapieën27,28,29 blijven allemaal uiterst uitdagende taken.

Er zijn verschillende conventionele benaderingen gebruikt voor het induceren van HCC in muismodellen momenteel en worden gebruikt, afhankelijk van de onderzoeker specifieke onderzoek vraag30. Chemisch geïnduceerde HCC-Muismodellen met genotoxische verbindingen bootsen letsel geïnduceerde maligniteit na. Xenograft-modellen via ectopische of orthotopic implantatie van HCC-cellijnen zijn geschikt voor geneesmiddelen screening. Een aantal genetisch gemodificeerde muizen is ontwikkeld om de pathofysiologie van HCC te onderzoeken. Transgene muizen die virale genen, oncogenen en/of groeifactoren uitdrukken, maken de identificatie mogelijk van trajecten die betrokken zijn bij hepatocarcinogenese. Vanwege inherente beperkingen, deze modellen niet recapituleren de typische immuunkenmerken gezien in humaan HCC, die aanzienlijk heeft belemmerd verheldering van de onderliggende mechanismen en ontwikkeling van innovatieve immunotherapeutische strategieën14 ,15. Onlangs hebben we een klinisch relevant Murine model gecreëerd. Dit nieuwe model bootst niet alleen menselijke HCC initiatie en progressie na, maar weerspiegelt ook de meest typische kenmerken van menselijke ziekte, waaronder immuun disfunctie. We hebben de biologische en immunologische kenmerken ervan gekenmerkt. Gebruikmakend van dit nieuwe model hebben we verschillende immunotherapeutische strategieën onderzocht voor de behandeling van HCC31,32,33,34,35,36, 37. dit unieke platform stelt ons in staat om mechanismen van tumor-geïnduceerde immunotolerance te bestuderen en om proof-of-concept therapeutische strategieën te ontwikkelen voor HCC naar uiteindelijke klinische vertaling.

Protocol

Opmerking: alle procedures inclusief dierproef personen zijn goedgekeurd door de IACUC aan de Universiteit van Missouri. Alle muizen kregen humane verzorging volgens de criteria die zijn uiteengezet in de “gids voor de verzorging en het gebruik van proefdieren”. De volgende procedure voor celisolatie en inoculatie moet worden uitgevoerd in een afzuigkap. Alle performers moeten de standaard persoonlijke beschermingsmiddelen dragen voor het hanteren van de muizen en weefsels. 1. inductie van lever…

Representative Results

Oncogene hepatocyten die zijn geïsoleerd van TAg-transgene muizen (Figuur 2) werden in de lever van wild type muizen geënt door intra-milt injectie (Figuur 3). De getransplanteerde hepatocyten succesvol en betrouwbaar groeide orthotopic HCC tumoren (Figuur 4) met tumor specifieke antigeen SV40 TAg (Figuur 5) in de setting van hepatische ontsteking en fibrose (Figuur 1). <img …

Discussion

Met dit protocol hebben we een betrouwbaar en reproduceerbaar muriene model van HCC opgezet dat menselijke HCC initiatie en progressie nabootst. Klinisch, veel risicofactoren achtereenvolgens induceren leverletsel, leverfibrose, cirrose en de laatste fase van HCC. In ons protocol wordt IP-injectie van CCl4 gebruikt om eerst leverfibrose te produceren in wild type muizen, waardoor de daaropvolgende oncogene hepatocyten de tumoren vormen in de setting van leverfibrose. We ontdekten dat tumorvorming het meest suc…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk wordt ondersteund door NIH/NCI R01 CA164335-01A1 (K. F. Staveley-O’Carroll, PI) en NIH/NCI R01CA208396 (Mark Kester, Guangfu Li, Kevin F. Staveley-O’Carroll).

Materials

Anesthesia machine VETEQUIP IMPAC6 anesthesia machine for surgery
Butterfly needle BD 8122963 Needle used for liver perfusion
C57BL/6 mice Jackson Lab 000664  mice used in prototol
Carprofen CRESCENT CHEMICAL 20402 carprofen for pain release
Cell Strainer  CORNING REF 431751 Cell strainer, 70µm, for hepatocytes isolation
Centrifuge Beckman Coulter Allegra X-30R centrifuge for cell isolation
Clips  Teleflex Medical REF 523700 Titanium Clips for spleen
Microscope Zeiss Primovert  microscope for cell observation
Mtd2 mice N/A Gift from Dr. William A Held at roswell Park Cancer Institute in 2002, maintained in our lab
Needle BD REF 305109 BD precisionglide needle, 27G x 1/2 (0.4mm x 13mm)
Suture ETHICON J303H coated VICRYL suture
SV40 T Ag antibody Abcam ab16879 anti-SV40 T-antigen antibody for IHC
Syringe BD REF 309626 1 mL TB syringe for cell injection
Trypan blue SIGMA T 8154 Trypan blue solution for cell viability test
Wound clips Reflex reflex9, Part. No. 201-1000 stainless steel wound clips for wound close

Referenzen

  1. O’Connor, S., Ward, J. W. Hepatocellular carcinoma – United States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 59, 517-520 (2010).
  2. Petrick, J., Kelly, S., Altekruse, S., McGlynn, K., Rosenberg, P. Future of Hepatocellular Carcinoma Incidence in the United States Forecast Through 2030. Journal of clinical oncology: official journal of the American Society of Clinical Oncology. 34, 1787-1794 (2016).
  3. Greten, T., Lai, C., Li, G., Staveley-O’Carroll, K. Targeted and Immune-based Therapies for Hepatocellular Carcinoma. Gastroenterology. 156, 510-524 (2019).
  4. Llovet, J., Zucman-Rossi, J., Pikarsky, E., Sangro, B., Schwartz, M., Sherman, M., Gores, G. Hepatocellular Carcinoma. Nature reviews. Disease primers. 2, 16018 (2016).
  5. Ding, X., et al. Precision medicine for hepatocellular carcinoma: driver mutations and targeted therapy. Oncotarget. 8, 55715-55730 (2017).
  6. Colombo, M., Maisonneuve, P. Controlling liver cancer mortality on a global scale: still a long way to go. Journal of Hepatology. 67, 216-217 (2017).
  7. Llovet, J., Burroughs, A., Bruix, J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 362, 1907-1917 (2003).
  8. Parkin, D., Bray, F., Ferlay, J., Pisani, P. Estimating the world cancer burden: Globocan 2000. International Journal of Cancer. 94, 153-156 (2001).
  9. Thomas, M., Zhu, A. Hepocellular carcinoma: the need for progress. Journal of Clinical Oncology. 23, 2892-2899 (2005).
  10. Llovet, J., Bruix, J. Molecular targeted therapies in hepatocellular carcinoma. Hepatology. 48, 1312-1327 (2008).
  11. Bruix, J., Sherman, M. Management of hepatocellular carcinoma: an update. Hepatology. 53, 1020-1022 (2011).
  12. Pang, T., Lam, V. Surgical management of hepatocellular carcinoma. World Journal of Hepatology. 7, 245-252 (2015).
  13. Llovet, J., et al. Design and endpoints of clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of the National Cancer Institution. 100, 698-711 (2008).
  14. Mueller, K. Cancer immunology and immunotherapy. Realizing the promise. Introduction. Science. 348, 54-55 (2015).
  15. Gajewski, T., Schreiber, H., Fu, Y. Innate and adaptive immune cells in the tumor microenvironment. Nature Immunology. 14, 1014-1022 (2013).
  16. Ribas, A., Wolchok, J. Combining cancer immunotherapy and targeted therapy. Current Opinion in Immunology. 25, 291-296 (2013).
  17. Postow, M., Callahan, M., Wolchok, J. Immune checkpoint blockade in cancer therapy. Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology. 33, 1974-1982 (2015).
  18. Gao, J., et al. VISTA is an inhibitory immune checkpoint that is increased in ipilimumab therapy in patients with prostate cancer. Nature Medicine. 23, 551-555 (2017).
  19. Hahn, A., Gill, D., Pal, S., Agarwal, N. The future of immune checkpoint cancer therapy after PD-1 and CTLA-4. Immunotherapy. 9, 681-692 (2017).
  20. Remon, J., Besse, B. Immune checkpoint inhibitors in first-line therapy of advanced non-small cell lung cancer. Current Opinion in Oncology. 29, 97-104 (2017).
  21. Kudo, M. Immune checkpoint blockade in hepatocellular carcinoma: 2017 update. Liver Cancer. 6, 1-12 (2017).
  22. Kudo, M. Immune checkpoint inhibition in hepatocellular carcinoma: Basics and ongoing clinical trials. Oncology. 92, 50-62 (2017).
  23. Breous, E., Thimme, R. Potential of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 54, 830-834 (2011).
  24. Sprinzl, M., Galle, P. Facing the dawn of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 59, 9-10 (2013).
  25. Liu, D., Staveley-O’Carroll, K., Li, G. Immune-based therapy clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of Clinical Cell Immunology. 6, 376 (2015).
  26. Greten, T., Wang, X., Korangy, F. Current concepts of immune based treatments for patients with HCC: from basic science to novel treatment approaches. Gut. 64, 842-848 (2015).
  27. Koster, B., de Gruijl, T., van den Eertwegh, A. Recent developments and future challenges in immune checkpoint inhibitory cancer treatment. Current Opinion in Oncology. 27, 482-488 (2015).
  28. Johnson, D., Sullivan, R., Menzies, A. Immune checkpoint inhibitors in challenging populations. Cancer. 123, 1904-1911 (2017).
  29. Li, H., et al. Programmed cell death-1 (PD-1) checkpoint blockade in combination with an mTOR inhibitor restrains hepatocellular carcinoma growth induced by hepatoma cell-intrinsic PD-1. Hepatology. 66, 1920-1933 (2017).
  30. Heindryckx, F., Colle, I., van Vlierberghe, H. Experimental mouse models for hepatocellular carcinoma research. International Journal of Experimental Pathology. 90, 367-386 (2009).
  31. Qi, X., et al. Development of inCVAX, in situ cancer vaccine, and its immune response in mice with hepatocellular cancer. Journal of Clinical and Cellular Immunology. 7, 438 (2016).
  32. Qi, X., et al. Development of a radiofrequency ablation platform in a clinically relevant murine model of hepatocellular cancer. Cancer Biology and Therapy. 16, 1812-1819 (2015).
  33. Liu, D., et al. Sunitinib represses regulatory T cells to overcome immunotolerance in a murine model of hepatocellular cancer. Oncoimmunology. 7, 1372079 (2017).
  34. Staveley-O’Carroll, K., et al. In vivo ligation of CD40 enhances priming against the endogenous tumor antigen and promotes CD8+ T cell effector function in SV40 T antigen transgenic mice. Journal of Immunology. 171, 697-707 (2003).
  35. Avella, D., et al. Regression of established hepatocellular carcinoma is induced by chemoimmunotherapy in an orthotopic murine model. Hepatology. 55, 141-152 (2012).
  36. Li, G., et al. Successful chemoimmunotherapy against hepatocellular cancer in a novel murine model. Journal of Hepatology. 66, 75-85 (2017).
  37. Li, G., et al. Nanoliposome C6-ceramide increases the anti-tumor immune response and slows growth of liver tumors in ice. Gastroenterology. 154, 1024-1036 (2018).
  38. Held, W., et al. T antigen expression and tumorigenesis in transgenic mice containing a mouse major urinary protein/SV40 T antigen hybrid gene. EMBO Journal. 8, 183-191 (1989).
  39. Hanahan, D., Weinber, R. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Qi, X., Schepers, E., Avella, D., Kimchi, E. T., Kaifi, J. T., Staveley-O’Carroll, K. F., Li, G. An Oncogenic Hepatocyte-Induced Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Cancer Arising in the Setting of Hepatic Inflammation and Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e59368, doi:10.3791/59368 (2019).

View Video