Summary

Live Imaging и анализ мышечных сокращений в дрозофилы эмбриона

Published: July 09, 2019
doi:

Summary

Здесь мы представляем метод записи эмбриональных мышечных сокращений в эмбрионах Дрозофилы в неинвазивной и подробно-ориентированной манере.

Abstract

Скоординированные сокращения мышц являются одной из форм ритмического поведения видели рано во время развития в дрозофилы эмбрионов. Нейронные сенсорные цепи обратной связи необходимы для контроля такого поведения. Неспособность произвести ритмическую картину сокращений может свидетельствовать о неврологических аномалиях. Ранее мы обнаружили, что дефекты в белке O-mannosylation, постпереводной модификации белка, влияют на аксон морфологии сенсорных нейронов и привести к ненормальным скоординированных сокращений мышц в эмбрионах. Здесь мы представляем относительно простой метод для записи и анализа структуры перистальтических сокращений мышц путем живой визуализации эмбрионов поздней стадии до точки вылупления, который мы использовали для характеристики фенотипа белка сокращения мышц O-mannosyltransferase мутантов. Данные, полученные из этих записей, могут быть использованы для анализа волн сокращения мышц, включая частоту, направление распространения и относительную амплитуду мышечных сокращений на разных сегментах тела. Мы также изучили осанку тела и воспользовались флуоресцентным маркером, выраженным специально в мышцах, чтобы точно определить положение среднего эмбриона. Аналогичный подход также может быть использован для изучения различных других моделей поведения во время разработки, таких как катание эмбрионов и вылупление.

Introduction

Перистальтический сокращения мышц является ритмическое моторное поведение, аналогичное ходьбе и плаванию у людей1,2,3. Эмбриональные сокращения мышц видели в Дрозофилы поздней стадии эмбрионов представляют собой пример такого поведения. Дрозофила является отличной моделью организма для изучения различных процессов развития, потому что эмбриональное развитие в дрозофиле хорошо характеризуется, относительно короткий, и легко контролировать. Общая цель нашего метода заключается в тщательной записи и анализе волнообразных моделей сокращения и расслабления эмбриональных мышц. Мы использовали простой, неинвазивный подход, который предлагает детальную визуализацию, запись и анализ мышечных сокращений. Этот метод также может быть потенциально использован для изучения других процессов in vivo, таких как эмбриональный прокат, наблюдаемый в эмбрионах на поздних стадиях эмбрионов непосредственно перед вылуплянием. В предыдущих исследованиях, эмбриональные сокращения мышц в основном были проанализированы с точки зрения частоты и направления1,2. Для того, чтобы оценить относительную степень сокращений, как они прогрессируют вдоль оси тела в передней или задней направлении, мы использовали эмбрионы, выражающие GFP специально в мышцах. Этот анализ предоставляет более количественный способ анализа мышечных сокращений и выявить, как осанка тела в эмбрионах поддерживается во время серии перистальтических волн мышечных сокращений.

Перистальтические сокращения мышц контролируются центральным генератором шаблона (CPG) схемами и связи между нейронами периферической нервной системы (PNS), центральной нервной системы (ЦНС), и мышц 4,5. Неспособность производить нормальные перистальтические сокращения мышц может привести к дефектам, таким как неспособность люк2 и ненормальные личиночного движения6 и может свидетельствовать о неврологических аномалий. Live изображения перистальтических волн сокращения мышц и подробный анализ фенотипов сокращения может помочь выявить патогенные механизмы, связанные с генетическими дефектами, влияющими на мышцы и нейронные цепи, участвующие в передвижении. Недавно мы использовали этот подход для исследования механизмов, которые приводят к осаде тела торсионфеи фенотипа protein Omannosyltransferase (POMT) мутантов7.

Белок O-mannosylation (POM) является особым типом постпереводной модификации, где манноза сахар добавляется в сыворотки или трионин остатки секреторных белков пути8,9. Генетические дефекты в POM вызывают врожденные мышечные дистрофии (CMD) у людей10,11,12. Мы исследовали возбудительные механизмы этих заболеваний с использованием дрозофилы в качестве модели системы. Мы обнаружили, что эмбрионы с мутациями в протеине Drosophila O-mannosyltransferase генов POMT1 и POMT2 (также известной о вращающемся животе (rt) и витой (tw)) показывают смещение (“вращение”) сегментов тела, что приводит к аномальной осанке тела7. Интересно, что этот дефект совпал с стадией развития, когда перистальтические сокращения мышц становятся заметными7.

Поскольку аномальная осанка тела в poM мутантэмбрионов возникает, когда мускулатура и эпидермис уже сформированы и перистальтические волны скоординированных мышечных сокращений начали, мы предположили, что ненормальная осанка тела может быть результатом аномальной мышцы сокращения, а не дефект в мышцах или / и эпидермис морфологии7. CMDs может быть связано с аномальными сокращениями мышц и дефектами осанки13, и, таким образом, анализ осанки фенотипа у мутантов Drosophila POMT может выяснить патологические механизмы, связанные с мышечной дистрофией . Для того, чтобы исследовать связь между осанкой тела фенотипом мутантов Drosophila POMT и возможными отклонениями в перистальтических волнах мышечных сокращений, мы решили детально проанализировать мышечные сокращения с помощью живого подход к визуализации.

Наш анализ перистальтических волн сокращения эмбрионов Дрозофилы выявил два различных режима сокращения, обозначенных как волны типа 1 и типа 2. Тип 1 волны простые волны, распространяющиеся от передней до задней или наоборот. Тип 2 волны двухфазных волн, которые инициируют на передней части, размножаются на полпути в задней направлении, на мгновение остановить, образуя временное статическое сокращение, а затем, во время второй фазы, прокатилась перистальтического сокращения, которое распространяется вперед от заднего конца. Эмбрионы дикого типа обычно генерируют серию сокращений, которая состоит примерно из 75% волн типа 1 и 25%. В отличие от этого, эмбрионы мутантов POMT генерируют волны типа 1 и типа 2 на примерно равных относительных частотах.

Наш подход может предоставить подробную информацию для количественного анализа мышечных сокращений и эмбриона прокатки7. Этот подход может быть также адаптирован для анализа других моделей поведения, связанных с мышечными сокращениями, таких как вылупление и ползание.

Protocol

1. Подготовка Подготовка летать клетке, сделав около 50 отверстий в 100 мл потенциала трехугловой пластиковый стакан с помощью горячей 25 G иглы (см. Таблица материалов). Приготовьте 60 мм х 15 мм петри блюда с яблочным соком-агаром (3% агара и 30% яблочного сока). Подготов?…

Representative Results

Нормальные перистальтические сокращения мышц показаны в WT (дикий тип, Кантон-S) эмбриона в фильме 1. Средняя частота перистальтических волн мышечных сокращений в нашем анализе составила 47 сокращений в час, а средняя амплитуда была на 60% выше базового уровня для эмбрион…

Discussion

Наш метод обеспечивает количественный способ анализа важных поведения эмбрионов во время развития, таких как перистальтические волны сокращения мышц, включая периодичность волн, амплитуду и рисунок, а также волновое воздействие на подвижность эмбриона и осанку. Это может быть полезн?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Проект был частично поддержан Национальными институтами здравоохранения гранты RO1 NS099409, NS075534, и CONACYT 2012-037 (S) в Вице-президент.

Materials

Digital camera Hamamatsu CMOS ORCA-Flash 4.0 C13440-20CU With different emission filters
Forceps FST Dumont 11254-20 Tip Dimensions 0.05 mm x 0.01 mm
LED X-cite BDX (Excelitas) XLED1
Microscope Carl Ziess Examiner D1 491405-0005-000 Epiflourescence with time lapse
Needle BD  305767 25 G x 1-1/2 in
Paintbrush Contemporary crafts Any paintbrush will work
Petri dishes VWR 25384-164 60 mm x 15 mm
Software HCImage Live
Thread Zap Wax pen Thread Zap II (by BeadSmith)(Amazon) TZ1300 Burner Tool
Tricorner plastic beaker VWR 25384-152 100 mL

Referenzen

  1. Pereanu, W., Spindler, S., Im, E., Buu, N., Hartenstein, V. The emergence of patterned movement during late embryogenesis of Drosophila. Developmental Neurobiology. 67, 1669-1685 (2007).
  2. Suster, M. L., Bate, M. Embryonic assembly of a central pattern generator without sensory input. Nature. 416, 174-178 (2002).
  3. Crisp, S., Evers, J. F., Fiala, A., Bate, M. The development of motor coordination in Drosophila embryos. Development. 135, 3707-3717 (2008).
  4. Song, W., Onishi, M., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Peripheral multidendritic sensory neurons are necessary for rhythmic locomotion behavior in Drosophila larvae. Proceedings of National Academy of Science of the United States of America. 104, 5199-5204 (2007).
  5. Hughes, C. L., Thomas, J. B. A sensory feedback circuit coordinates muscle activity in Drosophila. Molecular and Cellular Neuroscience. 35, 383-396 (2007).
  6. Gorczyca, D. A., et al. Identification of Ppk26, a DEG/ENaC channel functioning with Ppk1 in a mutually dependent manner to guide locomotion behavior in Drosophila. Cell Reports. 9, 1446-1458 (2014).
  7. Baker, R., Nakamura, N., Chandel, I., et al. Protein O-Mannosyltransferases affect sensory axon wiring and dynamic chirality of body posture in the Drosophila embryo. Journal of Neuroscience. 38 (7), 1850-1865 (2018).
  8. Nakamura, N., Lyalin, D., Panin, V. M. Protein O-mannosylation in animal development and physiology: From human Disorders to Drosophila phenotypes. Seminars in Cell & Developmental Biology. 21, 622-630 (2010).
  9. Lyalin, D., et al. The twisted gene encodes Drosophila protein O-mannosyltransferase 2 and genetically interacts with the rotated abdomen gene encoding Drosophila protein O-mannosyltransferase 1. Genetik. 172, 343-353 (2006).
  10. Beltrán-Valero de Bernabe, D., et al. Mutations in the O-Mannosyltransferase gene POMT1 give rise to the severe neuronal migration disorder Walker-Warburg Syndrome. American Journal of Human Genetics. 71, 1033-1043 (2002).
  11. Reeuwijk, J., et al. POMT2 mutations cause alpha-dystroglycan hypoglycosylation and Walker-Warburg syndrome. Journal of Medical Genetics. 42, 907-912 (2005).
  12. Jaeken, J., Matthijs, G. Congenital disorders of glycosylation: A rapidly expanding disease family. Annual Reviews of Genomics and Human Genetics. 8, 261-278 (2007).
  13. Leyten, Q. H., Gabreels, F. J., Renier, W. O., ter Laak, H. J. Congenital muscular dystrophy: a review of the literature. Clinical and Neurological Neurosurgery. 98 (4), 267-280 (1996).
  14. Roberts, D. B., Hames, B. D. Drosophila: A Practical Approach. 2nd ed. The Practical Approach Series. , 389 (1998).
  15. Heckscher, E. S., et al. Even-Skipped+ interneurons are core components of a sensorimotor circuit that maintains left-right symmetric muscle contraction amplitude. Neuron. 88, 314-329 (2015).
  16. Penjweini, R., et al. Long-term monitoring of live cell proliferation in presence of PVP-Hypericin: a new strategy using ms pulses of LED and the fluorescent dye CFSE. J. Microscopy. 245, 100-108 (2011).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Chandel, I., Baker, R., Nakamura, N., Panin, V. Live Imaging and Analysis of Muscle Contractions in Drosophila Embryo. J. Vis. Exp. (149), e59404, doi:10.3791/59404 (2019).

View Video