Summary

オープングローブ損傷と治療性能を追跡するための前セグメント臓器培養プラットフォーム

Published: August 25, 2021
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Summary

オープングローブの目の怪我は、農村部や軍事関連のシナリオで数日間治療を受けず、失明を引き起こします。治療は視力の損失を最小限に抑えるために必要とされる。ここでは、臓器文化のオープングローブ傷害モデルについて詳しく説明します。このモデルを用いて、これらの傷害を安定させる潜在的な治療は適切に評価することができる。

Abstract

オープングローブの怪我は視力の結果が悪く、しばしば視力が永久的に失われます。これは、農村部の環境における傷害と医療介入と、眼科ケアが容易に利用できない軍事医療アプリケーションとの間の延長遅延によるものです。未治療の傷害は、眼が水密シールを失った後に感染しやすいだけでなく、眼内低血圧による組織の生存率の喪失である。開いた地球の傷害を一時的に封止する治療薬は、適切に発達すれば、眼内圧を回復し、適切な眼科ケアが可能になるまで感染を防ぐことができるかもしれない。製品開発を容易にするために、ここで詳述される、損傷後の少なくとも72時間の治療性能を追跡するための前セグメント臓器培養オープングローブ傷害プラットフォームの使用である。豚前セグメント組織は、カスタム設計の臓器培養皿で維持され、生理学的眼圧で保持することができる。穿刺傷害は、軍関連の傷害サイズと同様に、直径4.5mmまでの損傷サイズを発生させることができる空気動力システムで作成することができます。眼内圧の喪失は、損傷後72時間で観察され、眼の水密シールの適切な傷害誘導および喪失を確認する。治療性能は、傷害誘導後の眼への適用によって追跡され、その後、複数の日の眼圧を追跡することができる。また、前部損傷モデルは、透明性の評価、眼力学、角膜上皮の健康、組織の生存率などの前部系統生理学を機能的および生物学的に追跡するために広く使用されている方法に適用可能である。全体として、ここで説明する方法は、眼科ケアが容易に利用できないときに一時的に開いた地球の傷害を密封するための生体材料治療薬の開発に向けた必要な次のステップである。

Introduction

オープングローブ(OG)傷害は、治療を受けていないか、または少なくとも傷害後に安定した視力の永久的な損失をもたらす可能性があります 1.しかし、農村部や軍事シナリオの戦場など、眼科介入へのアクセスが容易に利用できない遠隔地では、遅延が蔓延しています。治療が容易に利用できない場合、現在の治療基準は、医療介入が可能になるまで、硬質シールドで目を保護することです。軍事医療では、この遅延は現在24時間までですが、空気の避難が不可能な都市環境での戦闘活動では、今後72時間まで増加すると予想される2,3,4。これらの遅延は、眼科介入へのアクセスが制限されている農村部の遠隔地の民間アプリケーションではさらに長くなる可能性があります5,6.未治療のOG傷害は、眼の水密シールが損なわれることによる感染および眼圧(IOP)の喪失に対して非常に脆弱である7,8。IOPの喪失は組織の生存率に影響を与える可能性があり、傷害と治療の間の遅延が長すぎる場合に視力を回復させる可能性は低い医療介入を行う 9.

眼科の専門家に到達するまでのOG傷害をシールするための容易に適用可能な治療薬の開発を可能にするために、ベンチトップOG傷害モデルは、以前に開発された10、11。このモデルでは、IOPが圧力トランスデューサによって捕捉されている間、豚の目全体に高速傷害が生じた。治療は、OG傷害部位12をシールする能力を評価するために適用することができる。しかし、このモデルはブタの目全体を使用するので、患者が専門ケアに達するまで治療部位を安定させなければならない72時間の可能なウィンドウ全体で長期的なパフォーマンスを追跡する方法を持たない即時治療性能を評価することができます。その結果、前セグメント臓器培養(ASOC)OG傷害モデルが開発され、長期治療性能13を追跡するためのプラットフォームとして本プロトコルに詳述された。

ASOCは、角膜などの前部セグメントの血管組織を維持するために広く用いられている技術であり、複数週の後核化14、15、16、17である。前部セグメントは、生理学的流量で流体を浸透させ、骨膜メッシュワーク流出領域を保存することによって生理学的IOP下で維持され、IOPを調節する組織を、ASOCセットアップ18、19中に行。ASOCプラットフォームは、組織を生理学的に維持し、空気圧駆動装置を用いてOG傷害を誘発し、治療を適用し、傷害後少なくとも72時間の損傷安定化を追跡する

ここでは、このプロトコルは ASOC プラットフォームを使用するためのステップ バイ ステップの方法論を提供します。まず、ASOC プラットフォームのセットアップ方法と製造方法について説明します。次に、プロトコルは、前部セグメントを無菌的に解剖し、骨膜メッシュワークを維持し、続いてカスタムメイドの臓器培養皿に前部セグメント組織を設定する方法を詳述する。その後、オープングローブ傷害を作成し、傷害の直後に治療を適用する方法を詳述する。最後に、このプロトコルは、眼の機能的、機械的、生物学的特性を評価し、損傷がどの程度安定しているかを評価するこの方法で使用できる特性評価パラメータの概要を提供します。全体的に見て、このモデルは、開いた地球の損傷を安定させ、治療するための製品開発を加速し、傷害後の視力の悪い予後を改善するために非常に必要なプラットフォームを提供する。

Protocol

このプロトコルを実行する前に、研究や訓練で動物を使用するための法的および倫理的要件があることに注意してください。生きた動物が眼組織の供給源として使用される場合は、始める前に、地元の倫理または法的機関(IACUCまたは倫理委員会など)の承認を求めてください。動物の使用承認を得る際に何か質問がある場合は、続行しないでください。我々は以前に、生後死後24時間以内に得?…

Representative Results

光学コヘレンス断層撮影(OCT)を介して撮影された画像は、OG傷害目のために示され、成功した傷害誘導がどのように見えるかを説明します。 図3 は、損傷直後および72時間後にAS組織を負傷させたコントロールおよびOGの画像を示す。2 つのビュー:損傷部位を通る断面画像とトップダウン最大強度投影(MIP)を表示して、画像の表面積を視覚化します。コントロール目は角膜?…

Discussion

ASOC OG傷害プラットフォームには、方法論を使用する際に成功する可能性を高めるために強調すべき重要なステップがあります。まず、前部セグメントの解剖の間、骨膜メッシュワークを維持することは不可欠ですが、正しく行うことは困難です。もしTMが破壊された場合、眼は生理学的圧力を維持せず、実験的使用の適格性基準を満たさない。適切な解剖が得られるまで、追加の無菌技術の?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この資料は、一時的な角膜修復取得プログラム(米国陸軍医療マテリエル開発庁)との機関間協定(#19-1006-IM)を通じて米国国防総省が支援する作業に基づいています。

Materials

10-32 Polycarbonate straight plug, male threaded pipe connector McMaster-Carr 51525K431
10-32 Socket cap screw, ½" McMaster-Carr 92196A269
10 mL syringe BD 302995
20 mL syringe BD 302830
Anti-Anti Gibco 15240-096
Ball-End L key McMaster-Carr 5020A25
Betadine Fisher Scientific NC1696484
BD Intramedic PE 160 Tubing Fisher Scientific 14-170-12E
Cotton swabs Puritan 25-8061WC
DMEM media ATCC 30-2002
FBS ATCC 30-2020
Fine forceps World Precision Instruments 15914
Gauze Covidien 8044
Gentamicin Gibco 15710-064
Glutamax Gibco 35050-061
High temperature silicone O-ring, 2 mm wide, 4 mm ID McMaster-Carr 5233T47
Large forceps World Precision Instruments 500365
Large surgical scissors World Precision Instruments 503261
Medium toothed forceps World Precision Instruments 501217
Nail (puncture object) McMaster-Carr 97808A503
Nylon syringe filters Fisher 09-719C
PBS Gibco 10010-023
Petri dish (100 mm) Fisher FB0875713
Polycarbonate, three-way, stopcock with male luer lock Fisher NC9593742
Razor blade Fisher 12-640
Stainless steel 18 G 90 degree angle dispensing needle McMaster-Carr 75165A81
Stainless steel 18 G straight ½'’ dispensing needle McMaster-Carr 75165A675
Sterile 100 mL beakers with lids VWR 15704-092
Vannas scissors World Precision Instruments WP5070

Referenzen

  1. Hilber, D., Mitchener, T. A., Stout, J., Hatch, B., Canham-Chervak, M. Eye injury surveillance in the US Department of Defense, 1996-2005. American Journal of Preventive Medicine. 38, 78-85 (2010).
  2. Linde, A. S., McGinnis, L. J., Thompson, D. M. Multi-Battle domain-perspective in military medical simulation trauma training. Journal of Trauma & Treatment. 06 (04), (2017).
  3. Riesberg, J., Powell, D., Loos, P. The loss of the golden hour. Special Warfare. , 49-51 (2017).
  4. Townsend, S., Lasher, W. . The US Army in Multi-Domain Operations 2028. (525-3-1), (2018).
  5. Blanch, R. J., Bishop, J., Javidi, H., Murray, P. I. Effect of time to primary repair on final visual outcome after open globe injury. The British Journal of Ophthalmology. 103 (10), 1491-1494 (2019).
  6. Lesniak, S. P., et al. Characteristics and outcomes of delayed open globe repair. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (14), 4954 (2012).
  7. Loporchio, D., Mukkamala, L., Gorukanti, K., Zarbin, M., Langer, P., Bhagat, N. Intraocular foreign bodies: A review. Survey of Ophthalmology. 61 (5), 582-596 (2016).
  8. Jonas, J. B., Budde, W. M. Early versus late removal of retained intraocular foreign bodies. Retina. 19 (3), 193-197 (1999).
  9. Watson, P. G., Jovanovik-Pandova, L. Prolonged ocular hypotension: would ciliary tissue transplantation help. Eye. 23 (10), 1916-1925 (2009).
  10. Snider, E. J., et al. Development and characterization of a benchtop corneal puncture injury model. Scientific Reports. 10 (1), 4218 (2020).
  11. Snider, E. J., et al. An open-globe porcine injury platform for assessing therapeutics and characterizing biological effects. Current Protocols in Toxicology. 86 (1), 98 (2020).
  12. Snider, E. J., Cornell, L. E., Gross, B., Zamora, D. O., Boice, E. N. Assessment of commercial off-the-shelf tissue adhesives for sealing military relevant corneal perforation injuries. Military Medicine. , (2021).
  13. Snider, E. J., Boice, E. N., Butler, J. J., Gross, B., Zamora, D. O. Characterization of an anterior segment organ culture model for open globe injuries. Scientific Reports. 11 (1), 8546 (2021).
  14. Erickson-Lamy, K., Rohen, J. W., Grant, W. M. Outflow facility studies in the perfused human ocular anterior segment. Experimental Eye Research. 52 (6), 723-731 (1991).
  15. Johnson, D. H., Tschumper, R. C. The effect of organ culture on human trabecular meshwork. Experimental Eye Research. 49 (1), 113-127 (1989).
  16. Johnson, D. H., Tschumper, R. C. Human trabecular meshwork organ culture. A new method. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 28 (6), 945-953 (1987).
  17. Snider, E. J., et al. Improving stem cell delivery to the trabecular meshwork using magnetic nanoparticles. Scientific Reports. 8 (1), 12251 (2018).
  18. Llobet, A., Gasull, X., Gual, A. Understanding trabecular meshwork physiology: a key to the control of intraocular pressure. Physiology. 18 (5), 205-209 (2003).
  19. Goel, M., Picciani, R. G., Lee, R. K., Bhattacharya, S. K. Aqueous humor dynamics: A review. The Open Ophthalmology Journal. 4, 52-59 (2010).
  20. Snider, E. J., et al. Development of a porcine organ-culture glaucoma model mimicking trabecular meshwork damage. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 62 (3), 18 (2021).
  21. Ren, H., Wilson, G. Apoptosis in the corneal epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 37 (6), 1017-1025 (1996).
  22. Komuro, A., Hodge, D. O., Gores, G. J., Bourne, W. M. Cell death during corneal storage at 4°C. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 40 (12), 2827-2832 (1999).
  23. Crespo-Moral, M., García-Posadas, L., López-García, A., Diebold, Y. Histological and immunohistochemical characterization of the porcine ocular surface. PLOS One. 15 (1), e0227732 (2020).
  24. Wilson, S. E., Medeiros, C. S., Santhiago, M. R. Pathophysiology of corneal scarring in persistent epithelial defects after prk and other corneal injuries. Journal of Refractive Surgery. 34 (1), 59-64 (2018).
  25. Auw-Haedrich, C., et al. Immunohistochemical expression of epithelial cell markers in corneas with congenital aniridia and ocular cicatrizing pemphigoid. Acta Ophthalmologica. 89 (1), 47-53 (2011).
  26. Lyngholm, M., et al. Immunohistochemical markers for corneal stem cells in the early developing human eye. Experimental Eye Research. 87 (2), 115-121 (2008).
  27. Bandamwar, K. L., Papas, E. B., Garrett, Q. Fluorescein staining and physiological state of corneal epithelial cells. Contact Lens & Anterior Eye: The Journal of the British Contact Lens Association. 37 (3), 213-223 (2014).
  28. Bandamwar, K. L., Garrett, Q., Papas, E. B. Sodium fluorescein staining of the corneal epithelium: What does it mean at a cellular level. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (14), 6496 (2011).
  29. Sherwood, J. M., Reina-Torres, E., Bertrand, J. A., Rowe, B., Overby, D. R. Measurement of outflow facility using iPerfusion. PLoS One. 11 (3), (2016).
  30. Weichel, E. D., Colyer, M. H., Ludlow, S. E., Bower, K. S., Eiseman, A. S. Combat ocular trauma visual outcomes during operations iraqi and enduring freedom. Ophthalmology. 115 (12), 2235-2245 (2008).
  31. Colyer, M. H., et al. Delayed intraocular foreign body removal without endophthalmitis during Operations Iraqi Freedom and Enduring Freedom. Ophthalmology. 114 (8), 1439-1447 (2007).
  32. Geggel, H. S., Maza, C. E. Anterior stromal puncture with the Nd:YAG laser. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 31 (8), 1555-1559 (1990).
  33. Matthews, A., et al. Indentation and needle insertion properties of the human eye. Eye. 28 (7), 880-887 (2014).
  34. Rau, A., et al. The mechanics of corneal deformation and rupture for penetrating injury in the human eye. Injury. 49 (2), 230-235 (2018).
  35. Agrawal, R., Ho, S. W., Teoh, S. Pre-operative variables affecting final vision outcome with a critical review of ocular trauma classification for posterior open globe (zone III) injury. Indian Journal of Ophthalmology. 61 (10), 541 (2013).
  36. Knyazer, B., et al. Prognostic factors in posterior open globe injuries (zone-III injuries). Clinical & Experimental Ophthalmology. 36 (9), 836-841 (2008).
  37. Tan, J., et al. C3 Transferase-Expressing scAAV2 Transduces Ocular Anterior Segment Tissues and Lowers Intraocular Pressure in Mouse and Monkey. Molecular Therapy – Methods & Clinical Development. 17, 143-155 (2020).
  38. Bhattacharya, S. K., Gabelt, B. T., Ruiz, J., Picciani, R., Kaufman, P. L. Cochlin Expression in Anterior Segment Organ Culture Models after TGFβ2 Treatment. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (2), 551-559 (2009).
  39. Zhu, W., Godwin, C. R., Cheng, L., Scheetz, T. E., Kuehn, M. H. Transplantation of iPSC-TM stimulates division of trabecular meshwork cells in human eyes. Scientific Reports. 10 (1), 2905 (2020).
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Diesen Artikel zitieren
Boice, E. N., Snider, E. J. Anterior Segment Organ Culture Platform for Tracking Open Globe Injuries and Therapeutic Performance. J. Vis. Exp. (174), e62649, doi:10.3791/62649 (2021).

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