Summary

Имплантация осмотического мини-насоса для повышения концентрации глюкозы в спинномозговой жидкости мыши

Published: April 07, 2023
doi:

Summary

В этой статье описан подробный протокол повышения концентрации глюкозы в спинномозговой жидкости (СМЖ) мышей. Этот подход может быть полезен для изучения влияния высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости на нейродегенерацию, когнитивные функции и периферический метаболизм глюкозы у мышей.

Abstract

Диабет увеличивает риск снижения когнитивных функций и ухудшает работу мозга. Является ли эта связь между высоким уровнем глюкозы и когнитивным дефицитом причинно-следственной, остается неуловимым. Более того, также неясно, опосредованы ли эти дефициты повышением уровня глюкозы в спинномозговой жидкости (СМЖ) и/или крови. Существует очень мало исследований, изучающих прямое влияние высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости на функцию центральной нервной системы (ЦНС), особенно на обучение и память, поскольку современные модели диабета недостаточно развиты для решения таких исследовательских вопросов. В этой статье описывается метод хронического повышения уровня глюкозы в спинномозговой жидкости в течение 4 недель путем непрерывного введения глюкозы в боковой желудочек с использованием осмотических мини-насосов у мышей. Протокол был подтвержден путем измерения уровня глюкозы в спинномозговой жидкости. Этот протокол повышал уровень глюкозы в спинномозговой жидкости до ~ 328 мг / дл после инфузии 50% раствора глюкозы при скорости потока 0,25 мкл / ч по сравнению с концентрацией глюкозы в спинномозговой жидкости ~ 56 мг / дл у мышей, получавших искусственную спинномозговую жидкость (ликвор). Кроме того, этот протокол не влиял на уровень глюкозы в крови. Таким образом, этот метод может быть использован для определения прямого влияния высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости на функцию мозга или конкретный нейронный путь независимо от изменений уровня глюкозы в крови. В целом, подход, описанный здесь, будет способствовать разработке животных моделей для проверки роли высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости в опосредующих особенностях болезни Альцгеймера и / или других нейродегенеративных расстройств, связанных с диабетом.

Introduction

Диабет 1 и 2 типа нарушает функцию мозга 1,2,3. Например, диабет увеличивает риск снижения когнитивных функций и нейродегенеративных расстройств, включая болезнь Альцгеймера 3,4. Кроме того, люди с диабетом имеют дефектное восприятие глюкозы в головном мозге 5,6. Этот дефект способствует патогенезу гипогликемии, связанной с неосведомленностью и недостаточным контррегуляторным ответом на гипогликемию7,8, которая может привести к летальному исходу, если ее не лечить немедленно.

Учитывая, что диабет повышает уровень глюкозы в крови, а также в спинномозговой жидкости (CSF)9, важно определить, способствует ли один или оба этих фактора нарушению функции мозга. Вопрос о том, вызывает ли диабет повреждение головного мозга из-за высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости отдельно или в сочетании с другими факторами, такими как дефицит инсулина или резистентность к инсулину, также остается открытым. Животные модели диабета 1 и 2 типа демонстрируют снижение когнитивных функций и нейродегенерацию в дополнение к нарушенному энергетическому балансу и периферическому метаболизму глюкозы10,11,12,13. Однако из этих моделей невозможно отделить селективные эффекты высокого уровня глюкозы в спинномозговой жидкости от уровня глюкозы в крови при опосредовании осложнений диабета на функцию мозга.

В этом протоколе описываются методы разработки мышиной модели гипергликорахии для проверки влияния хронически высоких уровней глюкозы в спинномозговой жидкости на функцию мозга, энергетический баланс и гомеостаз глюкозы. Мышиная модель, разработанная с помощью этого метода, представляет собой инструмент для исследований, изучающих этиологическую роль нерегулируемого гомеостаза глюкозы в нервной и поведенческой функции.

Поэтому предложенный подход будет полезен для понимания прямых эффектов повышенного уровня глюкозы в спинномозговой жидкости при различных патофизиологических состояниях.

Protocol

Все процедуры на мышах были одобрены Институциональным комитетом по уходу за животными и их использованию в Университете Рочестера и были выполнены в соответствии с рекомендациями Службы общественного здравоохранения США по гуманному уходу и использованию экспериментальных животн?…

Representative Results

Самцам мышей имплантировали канюлю, собранную в осмотической мини-помпе (рис. 1), для хронической инфузии спинномозговой жидкости или 50% раствора глюкозы в боковые желудочки (рис. 2). Спинномозговая жидкость была собрана через 10 дней после операции (<strong class…

Discussion

В этой статье представлен подробный протокол повышения уровня глюкозы в спинномозговой жидкости у мышей с помощью осмотических мини-насосов, подключенных к канюле, имплантированной в боковой желудочек. Хроническая инфузия глюкозы в мозг мыши с помощью этой процедуры будет полезна дл?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Грант Национального института здравоохранения DK124619 для KHC.

Стартовые фонды и награда за пилотные исследования, медицинский факультет Рочестерского университета, штат Нью-Йорк, в KHC.

Премия Института неврологии Дель Монте за пилотные исследования, Университет Рочестера, KHC.

Университетская исследовательская премия, офис вице-президента по исследованиям, Университет Рочестера, штат Нью-Йорк, в KHC.

МУР разработал и выполнил метод, проанализировал результаты, подготовил графики и рисунки, написал и отредактировал рукопись. KHC задумал и руководил исследованием, проанализировал результаты, написал и отредактировал рукопись. КХК является гарантом этой работы. Все авторы одобрили окончательный вариант рукописи.

Materials

0.22 µm syringe filter Membrane solutions SFPES030022S
1 mL sterile Syringe (Luer-lok tip) BD 309628
1 mL TB syringe BD 309659
100 mL Glass beaker Fisher  N/a
100% Ethanol (Koptec) DLI UN170 Use 70% dilution to clean the surgery area
50 mL conical tube Fisher  N/A
Allignment indicator KOPF 1905
Alzet brain infusion kit DURECT Kit # 3; 0008851 Cut tubing in the kit to 1 inch length
Alzet osmotic pump DURECT 2004 Flow rate 0.25 µL/h
Anesthesia system Kent Scientific SomnoSuite
Betadine solution Avrio Health N/A
CaCl2 . 2H2O Fisher  C79-500
Cannula holder KOPF 1966
Centering scope KOPF 1915
Dental Cement Liquid Lang Dental REF1404
Dental cement Powder Lang Dental REF1220-C
D-glucose   Sigma G8270
Electric drill KOPF 1911 While drilling a hole avoid rupturing dura mater
Eye lubricant (Optixcare) CLC Medica N/A
Glass Bead sterilizer (Germinator 500) VWR 101326-488 Place instruments in sterile water to let them cool before surgery
Glucose Assay Kit Cayman chemical 10009582
H2O2 Sigma H1009-500ml Apply 3% H2O2 on skull surface to make the cranial sutures visible.
Hair Clipper WAHL N/A
heating pad Heatpax 19520483
Hemostat N/A N/A
Isoflurane (Fluriso) Zoetis NDC1385-046-60
KCl VWR 0395-500g
Magnetic stand WPI M1
Magnifying desk lamp Brightech LightView Pro Flex 2
Metal Spatula N/A N/A
MgCl2 . 6H2O Fisher  BP214-500
Micromanipulator (Right handed) WPI M3301R
Micromanipulator with digital display KOPF 1940
Na2HPO4 . 7H2O Fisher  S373-500
NaCl Sigma S7653-5Kg
NaH2PO4 . H2O Fisher  S369-500
Neosporin Johnson & Johnson N/A Apply topical oinment to prevent infection
Parafilm Bemis DM-999
Rimadyl (Carprofen) 50mg/ml Zoetis N/A 5 mg/kg, subcutaneous, for analgesia
Scalpel N/A N/A
Stereotaxic allignment system KOPF 1900
Sterile 27 gauge needle BD 305109
Sterile cotton tip applicators (Solon) AMD Medicom 56200
Sterile nylon sutures (5.0) Oasis MV-661 Use non-absorable suture for closing the wound
Sterile sharp scissors  N/A N/A
Sterile surgical blades VWR 55411-050
Surgical gloves (Nitrile) Ammex N/A Change gloves if there is suspision of contamination
Tray N/A N/A

Referenzen

  1. Moheet, A., Mangia, S., Seaquist, E. R. Impact of diabetes on cognitive function and brain structure. Annals of the New York Academy of Sciences. 1353, 60-71 (2015).
  2. Takeda, S., et al. Diabetes-accelerated memory dysfunction via cerebrovascular inflammation and Abeta deposition in an Alzheimer mouse model with diabetes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (15), 7036-7041 (2010).
  3. Arvanitakis, Z., Wilson, R. S., Bienias, J. L., Evans, D. A., Bennett, D. A. Diabetes mellitus and risk of Alzheimer disease and decline in cognitive function. Archives of Neurology. 61 (5), 661-666 (2004).
  4. Zilliox, L. A., Chadrasekaran, K., Kwan, J. Y., Russell, J. W. Diabetes and cognitive impairment. Current Diabetes Reports. 16 (9), 87 (2016).
  5. Reno, C. M., Litvin, M., Clark, A. L., Fisher, S. J. Defective counterregulation and hypoglycemia unawareness in diabetes: mechanisms and emerging treatments. Endocrinology and Metabolism Clinics of North America. 42 (1), 15-38 (2013).
  6. Cryer, P. E., Davis, S. N., Shamoon, H. Hypoglycemia in diabetes. Diabetes Care. 26 (6), 1902-1912 (2003).
  7. Hwang, J. J., et al. Hypoglycemia unawareness in type 1 diabetes suppresses brain responses to hypoglycemia. The Journal of Clinical Investigation. 128 (4), 1485-1495 (2018).
  8. Cryer, P. E., Gerich, J. E. Glucose counterregulation, hypoglycemia, and intensive insulin therapy in diabetes mellitus. The New England Journal of Medicine. 313 (4), 232-241 (1985).
  9. Tigchelaar, C., et al. Elevated cerebrospinal fluid glucose levels and diabetes mellitus are associated with activation of the neurotoxic polyol pathway. Diabetologia. 65 (7), 1098-1107 (2022).
  10. Zheng, H., et al. Cognitive decline in type 2 diabetic db/db mice may be associated with brain region-specific metabolic disorders. Biochimica et Biophysica Acta. Molecular Basis of Disease. 1863 (1), 266-273 (2017).
  11. Ernst, A., et al. Diabetic db/db mice exhibit central nervous system and peripheral molecular alterations as seen in neurological disorders. Translational Psychiatry. 3 (5), 263 (2013).
  12. Wang, Y., Yang, Y., Liu, Y., Guo, A., Zhang, Y. Cognitive impairments in type 1 diabetes mellitus model mice are associated with synaptic protein disorders. Neuroscience Letters. 777, 136587 (2022).
  13. Jolivalt, C. G., et al. Type 1 diabetes exaggerates features of Alzheimer’s disease in APP transgenic mice. Experimental Neurology. 223 (2), 422-431 (2010).
  14. Paxinos, G., Franklin, K. B. J. . Paxinos and Franklin’s The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2019).
  15. Vinik, A. I., Maser, R. E., Mitchell, B. D., Freeman, R. Diabetic autonomic neuropathy. Diabetes Care. 26 (5), 1553-1579 (2003).
  16. Furman, B. L. Streptozotocin-induced diabetic models in mice and rats. Current Protocols. 1 (4), 78 (2021).
  17. Grieb, P. Intracerebroventricular streptozotocin injections as a model of Alzheimer’s disease: in search of a relevant mechanism. Molecular Neurobiology. 53 (3), 1741-1752 (2016).
  18. Kealy, J., et al. Acute inflammation alters brain energy metabolism in mice and humans: role in suppressed spontaneous activity, impaired cognition, and delirium. The Journal of Neuroscience. 40 (29), 5681-5696 (2020).
  19. Dougherty, J. M., Roth, R. M. Cerebral spinal fluid. Emergency Medicine Clinics of North America. 4 (2), 281-297 (1986).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Raza, M. U., Chhabra, K. H. Osmotic Minipump Implantation for Increasing Glucose Concentration in Mouse Cerebrospinal Fluid. J. Vis. Exp. (194), e65169, doi:10.3791/65169 (2023).

View Video