Summary

微生物システム生物学のケモスタットの使用

Published: October 14, 2013
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Summary

細胞増殖速度が調節されたプロセスおよび細胞生理学の主要な決定因子である。ケモスタットを用いた連続培養は、細胞増殖およびどのようにそれらのネットワークは細胞増殖を最適化するために進化を制御する分子ネットワークの研究を促進する栄養制限することにより、細胞増殖速度の外因性の制御を可能にする。

Abstract

細胞は、外界からの信号に応答してそれらの成長速度を調節する。細胞の成長に合わせて、多様な細胞プロセス、高分子合成、代謝や細胞分裂周期に最終的には、コミットメントなど、調整する必要があります。細胞増殖の速度を制御する調節ネットワーク – 遺伝子発現および代謝を含む – ケモスタット実験的細胞増殖速度を制御する方法は、系統的にどのように成長速度に影響を与える細胞プロセスを研究する強力な手段を提供する。世代ケモスタット数百のために維持するとき、細胞増殖を制限する環境条件における微生物の適応進化を研究するために使用することができる。我々は、ケモスタット培養の原理を記載し、それらの動作を示し、それらの様々なアプリケーションの例を提供する。 20世紀半ばの発売後の廃用の期間の後、に新たにゲノムスケール手法の収束terest細胞の成長および適応進化の分子基盤の調節に生物学的研究におけるケモスタットを使用することにルネサンスを刺激されている。

Introduction

細胞の増殖は、遺伝因子と環境因子相互作用の1,2複雑なネットワークによって調節される。細胞増殖の調節多因子は、その研究にシステムレベルのアプローチを必要とする。しかし、調節された細胞成長の厳密な研究は、実験的に細胞が成長する速度を制御することの困難性により攻撃される。また、最も単純な実験で、細胞外の条件は、彼らが増殖するように細胞が継続的にその環境を変えるように、頻繁にダイナミックで複雑です。定義された、不変かつ制御された環境における細胞増殖速度の実験的な制御を可能にする細胞を培養する方法であって、これらの問題に対する解決策を、ケモスタットによって提供される。

ケモスタットを用いて連続培養する方法は、独立して1950年にモノー3とNovick&シラード4で記述されていた。もともと構想として、細胞をCONのメディアの一定体積で栽培されているtinually新しいメディアと古い培地および細胞の同時除去( 図1)の添加により希釈した。結合した常微分方程式( 図2)のセル密度(x)およびケモスタット容器中の増殖制限栄養素(単数または複数 )の濃度の変化率を記述する。重要なことに、この連立方程式は、定常状態で、細胞( すなわち 、指数増殖速度定数)の特異的増殖速度は、速度に等しいことを顕著含意を有する単一の(非ゼロの)安定した定常状態( 図3)を予測れる培養物(D)希釈する。希釈率を変えることにより、異なる成長速度でかつ栄養制限の異なる条件下での細胞の定常状態の集団を確立することが可能である。

ケモスタットを使用して、成長率の実験的制御がどのように細胞生理学の変化の理解の発展に重要であった成長5,6のレートで。しかし、微生物学的方法のかつての主力は、20世紀後半の間の分子生物学研究の爆発の際にますますあいまいになりました。今日では、微生物および多細胞生物の両方で増殖制御に関心をリニューアルし、システムレベルの解析のためのゲノム規模法の出現は、ケモスタットを使用するためのモチベーションをリニューアルしました。ここでは、細胞増殖速度の正確な制御とケモスタットを使用して一意に可能な外部環境を生かす3つのアプリケーションについて説明します。このような転写産物および代謝産物など – – 協調的な成長率で規制されている第一に、我々は、生体分子の何千もの豊富さは、どのように調査するケモスタットの使用を記載している。第二に、我々はケモスタットは、競合実験を用いて、栄養素が制約された環境では、異なる遺伝子型の間の成長率の差の正確な推定値を得るために使用することができる方法を記載している。第三に、我々はどのようにケモスタットができる記述一定の貧栄養環境下で増殖する細胞の適応進化を研究するために使用される。これらの例は、ケモスタット環境相互作用および適応進化による細胞増殖調節遺伝子のシステム·レベルの調査を可能にされる方法を例示する。

Protocol

ケモスタットを用いて連続培養の原理は、様々な実装を実現することができる。すべてのケモスタットでは、すべてのコンポーネント、2)十分に混合培養、培養容器の3)適切な通気、4)メディアのほか、文化除去の信頼できる手段の無菌性を維持するための1)の方法を持っていることが不可欠である。ここでは、簡単に代替のセットアップに適合させることができる方法を使用して、ケモ…

Representative Results

ケモスタットの主な利点は、希釈率を変化させることによって実験的に細胞の増殖速度を制御する能力である。出芽酵母、サッカロマイセス·セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)においては、細胞の形態、細胞分裂周期におけるその位相の情報である。 unbudded細胞( 図5A)の割合を測定することによって決定されるように、より高い成長速度を有する集団は、活発に分裂する細胞の…

Discussion

ケモスタットは、成長制御の定常状態での微生物の培養を可能にする。細胞は不変外部環境になり、一定の速度で継続的に成長する。これは、外部環境が連続的に変化しており、細胞増殖速度は、環境と遺伝子型の複雑な相互作用により決定されたバッチ培養法とは対照的である。したがって、バッチ培養上ケモスタット中の微生物を培養するの主な利点は、実験的に、細胞の増殖速度を制?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、ニューヨーク大学のフォームの起動の資金によってサポートされていました。我々は当初、ケモスタットとしてSixforsバイオリアクターの使用を開発し弥勒ダナムとマットブラウアーに感謝します。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Infors-HT Sixfors Chemostat Appropriate Technical Resources, Inc.    
Glass Bottle 9.5 L Fisher Scientific 02-887-1 For Media Vessel and Hosing
Pinchcock Fisher Scientific 05-867 For Media Vessel and Hosing
Stopper, Size 12, Green Neoprene Cole-Palmer EW-62991-42 For Media Vessel and Hosing
Straight Connector Cole-Palmer EW-30703-02 For Media Vessel and Hosing
General purpose ties 4 in Fisher Scientific NC9557052 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone Rubber Small Parts B000FMWTDE For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 3/8 in OD Fisher Scientific 02-587-1Q For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 7/32 in OD Fisher Scientific 02-587-1E For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/16 in OD McMaster-Carr 6100K164 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/8 in OD McMaster-Carr 6100K161 For Media Vessel and Hosing
Hook Connectors Fisher Scientific 14-66-18Q For Media Vessel and Hosing
Ratchet Clamp Cole-Palmer EW-06403-11 For Media Vessel and Hosing
Luer, Female Cole-Palmer EW-45512-34 For Media Vessel and Hosing
Luer, Male Cole-Palmer EW-45513-04 For Media Vessel and Hosing
Millipore Aervent MTGR05010 62 mm Filter, 0.2 μm Fisher Scientific MTGR05010 For Media Vessel and Hosing
PTFE Acrodisc CR 13 mm filters, 0.2 μm Fisher Scientific NC9131037 For Media Vessel and Hosing
Direct-Reading Flowtube for Air Cole-Palmer EW-32047-77 For Nitrogen Gas Setup
Direct-Reading Flowtube for Nitrogen Cole-Palmer EW-32048-63 For Nitrogen Gas Setup
Gas Proportioner Multitube Frames Cole-Palmer EW-03218-50 For Nitrogen Gas Setup
Regulator, Two-Stage Analytical Airgas Y12-N145D580 For Nitrogen Gas Setup
Hose Adaptor, Stainless Steel Airgas Y99-26450 For Nitrogen Gas Setup
Hose Male Adaptor Airgas WES544 For Nitrogen Gas Setup
Norprene Tubing US Plastics 57280 For Nitrogen Gas Setup
Tripod Base Cole-Palmer EW-03218-58 For Nitrogen Gas Setup
Valve Cartridges Cole-Palmer EW-03217-92 For Nitrogen Gas Setup
Carboy 10 L Fisher Scientific 02-963-2A For Media Preperation
Steritop Sterile Vacuum Bottle-Top Filters, 1,000 ml, PES membrane; for 45 mm neck size Fisher Scientific SCGP-T10-RE For Media Preperation
Media Bottle 100 ml, 45 mm neck size Fisher Scientific FB-800-100 For Media Preperation
calcium chloride·2H2O Fisher Scientific C79-500 Media Reagents
sodium chloride Fisher Scientific BP358-1 Media Reagents
magnesium sulfate·7H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
potassium phosphate monobasic Fisher Scientific AC424205000 Media Reagents
ammonium sulfate Fisher Scientific AC423400010 Media Reagents
potassium chloride Sigma Aldrich P9541 Media Reagents
boric acid Sigma Aldrich B6768 Media Reagents
copper sulfate·5H2O Sigma Aldrich 209198 Media Reagents
potassium iodide Sigma Aldrich 60400 Media Reagents
ferric chloride·6H2O Fisher Scientific I88-100 Media Reagents
manganese sulfate·H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
sodium molybdate·2H2O Sigma Aldrich M7634 Media Reagents
zinc sulfate·7H2O Fisher Scientific Z68-500 Media Reagents
biotin Fisher Scientific BP232-1 Media Reagents
calcium pantothenate Fisher Scientific AC24330-1000 Media Reagents
folic acid Sigma Aldrich F7876 Media Reagents
inositol (aka myo-inositol) Fisher Scientific AC12226-1000 Media Reagents
niacin (aka nicotinic acid) Sigma Aldrich N4126 Media Reagents
p-aminobenzoic acid Fisher Scientific AC14621-2500 Media Reagents
pyridoxine HCl Sigma Aldrich P9755 Media Reagents
riboflavin Sigma Aldrich R4500-25G Media Reagents
thiamine HCl Fisher Scientific BP892-100 Media Reagents
Leucine Sigma Aldrich L8000-100G Media Reagents
Uracil Sigma Aldrich U0750 Media Reagents
Dextrose Fisher Scientific DF0155-08-5 Media Reagents

Referencias

  1. Ingraham, J. L., Maaloe, O., Neidhardt, F. C. . Growth of the Bacterial Cell. , (1983).
  2. Hall, M. N., Raff, M. C., Thomas, G. . Cell Growth: Control of Cell Size. , (2004).
  3. Monod, J. La technique de culture continue, theorie et applications. Ann. Inst. Pasteur. 79, 390-410 (1950).
  4. Novick, A., Szilard, L. Description of the chemostat. Science. 112, 715-716 (1950).
  5. Kjeldgaard, N. O., Maaloe, O., Schaechter, M. The transition between different physiological states during balanced growth of Salmonella typhimurium. J. Gen. Microbiol. 19, 607-616 (1958).
  6. Maaloe, O., Kjeldgaard, N. O. Control of macromolecular synthesis. , (1966).
  7. Saldanha, A. J., Brauer, M. J., Botstein, D. Nutritional Homeostasis in Batch and Steady-State. Culture of Yeast. Mol. Biol. Cell. 15, 4089-4104 (2004).
  8. Boer, V. M., Crutchfield, C. A., Bradley, P. H., Botstein, D., Rabinowitz, J. D. Growth-limiting intracellular metabolites in yeast growing under diverse nutrient limitations. Mol. Biol. Cell. 21, 198-211 (2010).
  9. Boer, V. M., de Winde, J. H., Pronk, J. T., Piper, M. D. The genome-wide transcriptional responses of Saccharomyces cerevisiae grown on glucose in aerobic chemostat cultures limited for carbon, nitrogen, phosphorus, or sulfur. J. Biol. Chem. 278, 3265-3274 (2003).
  10. Brauer, M. J., et al. Coordination of growth rate, cell cycle, stress response, and metabolic activity in yeast. Mol. Biol. Cell. 19, 352-367 (2008).
  11. Gresham, D., et al. Adaptation to diverse nitrogen-limited environments by deletion or extrachromosomal element formation of the GAP1 locus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 18551-18556 (2010).
  12. Regenberg, B., et al. Growth-rate regulated genes have profound impact on interpretation of transcriptome profiling in Saccharomyces cerevisiae. Genome Biol. 7, R107 (2006).
  13. Castrillo, J. I., et al. Growth control of the eukaryote cell: a systems biology study in yeast. J. Biol. 6, 4 (2007).
  14. Cipollina, C., et al. Revisiting the role of yeast Sfp1 in ribosome biogenesis and cell size control: a chemostat study. Microbiology. 154, 337-346 (2008).
  15. Gresham, D., et al. System-level analysis of genes and functions affecting survival during nutrient starvation in Saccharomyces cerevisiae. Genética. 187, 299-317 (2011).
  16. Levy, S. F., Ziv, N., Siegal, M. L. Bet hedging in yeast by heterogeneous, age-correlated expression of a stress protectant. PLoS Biol. 10, e1001325 (2012).
  17. Kao, K. C., Sherlock, G. Molecular characterization of clonal interference during adaptive evolution in asexual populations of Saccharomyces cerevisiae. Nat. Genet. 40, 1499-1504 (2008).
  18. Gresham, D., et al. The repertoire and dynamics of evolutionary adaptations to controlled nutrient-limited environments in yeast. PLoS Genet. 4, e1000303 (2008).
  19. Wenger, J. W., et al. Hunger Artists: Yeast Adapted to Carbon Limitation Show Trade-Offs under Carbon Sufficiency. PLoS Genet. 7, e1002202 (2011).
  20. Dunham, M. J., et al. Characteristic genome rearrangements in experimental evolution of Saccharomyces cerevisiae. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 16144-16149 (2002).
  21. Ronen, M., Botstein, D. Transcriptional response of steady-state yeast cultures to transient perturbations in carbon source. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 389-394 (2006).
  22. Kresnowati, M. T. A. P., et al. When transcriptome meets metabolome: fast cellular responses of yeast to sudden relief of glucose limitation. Mol. Sys. Biol. 2, 49 (2006).
  23. Tu, B. P., Kudlicki, A., Rowicka, M., McKnight, S. L. Logic of the yeast metabolic cycle: temporal compartmentalization of cellular processes. Science. 310, 1152-1158 (2005).
  24. Tzur, A., Kafri, R., LeBleu, V. S., Lahav, G., Kirschner, M. W. Cell Growth and Size Homeostasis in Proliferating Animal Cells. Science. 325, 167-171 (2009).
  25. Conlon, I., Raff, M. Size control in animal development. Cell. 96, 235-244 (1999).
  26. Conlon, I. J., Dunn, G. A., Mudge, A. W., Raff, M. C. Extracellular control of cell size. Nat. Cell Biol. 3, 918-921 (2001).
  27. Fussmann, G. F., Ellner, S. P., Shertzer, K. W., Hairston, N. G. Crossing the hopf bifurcation in a live predator-prey system. Science. 290, 1358-1360 (2000).
  28. Cohen, E. P., Eagle, H. A simplified chemostat for the growth of mammalian cells: characteristics of cell growth in continuous culture. J. Exp. Med. 113, 467-474 (1961).

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Citar este artículo
Ziv, N., Brandt, N. J., Gresham, D. The Use of Chemostats in Microbial Systems Biology. J. Vis. Exp. (80), e50168, doi:10.3791/50168 (2013).

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